一種檢測毒死蜱的酶聯免疫試劑盒及其檢測方法
【技術領域】
[0001]本發明涉及獸藥殘留檢測技術領域,特別是檢測大米中毒死蜱的酶聯免疫試劑盒。
【背景技術】
[0002]近些年來,科學家不斷發現一些來源于環境中的化學物質能夠模擬內分泌激素功能從而引起生物體內分泌系統紊亂,稱其為環境激素或環境荷爾蒙。環境激素已成為繼臭氧層、地球氣候變暖之后全球的第三大環境問題,成為環境科學研究領域中的熱門課題。美國環境保護局給出的環境激素的定義,是指一類干擾體內與生物體的正常行為及與生殖、發育相關的正常激素的合成、貯存、分泌、體內運輸、結合及清除等過程的外源性化合物。
[0003]環境激素是環境中的激素類似物,它能通過與激素受體結合,干擾生物體正常的生理代謝、內分泌和生殖機能,引起種種負面的生物學效應。環境激素通過環境介質和食物鏈進入人體或動物體內,干擾其內分泌系統和生殖功能系統,影響后代的生存和繁衍。因此安全問題受到高度重視。國標中規定小麥中最大殘留限量為0.5 mg/kg。
[0004]酶聯免疫吸附法是一種準確、可靠、快速、特異的檢測方法,適合于大批樣品的快速篩選,近年來已廣泛應用于食品安全檢測行業。本發明旨在建立一種檢測毒死蜱的酶聯免疫試劑盒及其檢測方法。
【發明內容】
[0005]為了克服色譜法的不足,本發明提供一種檢測毒死蜱的酶聯免疫試劑盒及其檢測方法。該方法靈敏、準確、快速,操作簡便、特異性強,適用于大批樣品的快速檢測。
[0006]本發明檢測毒死蜱的酶聯免疫試劑盒,包括酶標板、毒死蜱標準品、毒死蜱抗體工作液、毒死蜱酶標二抗工作液、底物液A、底物液B、終止液、濃縮稀釋液和濃縮洗滌液。
[0007]本發明檢測毒死蜱的酶聯免疫試劑盒的制備,包括以下步驟:酶標板的制備、毒死蜱標準品的制備、毒死蜱抗體工作液的制備、毒死蜱酶標二抗工作液的制備、底物液A的制備、底物液B的制備、終止液的制備、濃縮稀釋液的制備和濃縮洗滌液的制備。
[0008]其進一步特征在于:所述的酶標板經由毒死蜱抗原包被制備,具體步驟是將毒死蜱半抗原與載體蛋白牛血清白蛋白(BSA)偶聯得到包被抗原,用0.05 mol/L pH 9.6的碳酸鹽(CBS)緩沖液作為包被液,將毒死蜱包被抗原稀釋成1:40000比例,100 μ L/孔,37°C避光孵育2 h,取出酶標板甩掉板內液體,加入經稀釋的濃縮洗滌液300 μ L/孔,洗板2次,30 s/次,然后加入0.5%牛血清白蛋白(BSA)封閉液,150 μ L/孔,37°C放置1.5 h,甩掉封閉液直接拍干,拍干后的酶標板放置恒溫間(25°C)晾干,抽檢合格后將酶標板真空密封于4°C條件下保存。
[0009]毒死蝶標準品濃度分別為O mg/kg、0.lmg/kg、0.3 mg/kg、0.9 mg/kg、2.7 mg/kg、8.1 mg/kg。
[0010]所述毒死蜱抗體工作液是采用毒死蜱人工抗原免疫小鼠得到單克隆抗體,用抗體稀釋液稀釋成1:60000比例制備。
[0011]所述毒死蜱酶標二抗工作液由酶標二抗加稀釋液稀釋成1:2000比例,所述底物液A為含有0.5 mmol/L的過氧化氣脲的梓檬酸-磷酸氣二鈉緩沖溶液,所述底物液B為四甲基聯苯二胺的乙醇溶液,所述終止液為2 mol/L的硫酸,所述濃縮稀釋液是10倍濃縮稀釋液,為0.1 mol/L的PBS,pH值范圍7.0-7.5之間,所述濃縮洗滌液是10倍濃縮洗滌液,為含 0.5% 吐溫-20,0.1 mol/L 的 PBST,pH 值范圍 7.0-7.5 之間。
[0012]檢測毒死蜱的酶聯免疫試劑盒及其檢測方法,基于抗原抗體的間接競爭酶聯免疫反應原理,該方法包括以下步驟:
(1)預處理待測樣品,即將待測試的樣品處理為液體樣品,或者用有機溶劑提取待測樣品,并將其復溶于樣品稀釋液中;
(2)將所需試劑從冷藏環境中取出,置于室溫(20?25°C)平衡30min以上,注意每種液體試劑使用前均須搖勻;
(3)取包被有毒死蜱抗原的酶標板,加標準品/樣本50μ L/孔到對應的微孔中,加入毒死蜱酶標二抗工作液,50 μ L/孔,然后加入毒死蜱抗體工作液,50 μ L/孔,輕輕振蕩混勻,用蓋板膜蓋板后置室溫25 °C避光環境中反應30 min ;
(4)小心揭開蓋板膜,將孔內液體甩干,用洗滌工作液260μ L/孔,充分洗滌4~5次,每次間隔10 S,用吸水紙拍干(拍干后未被清除的氣泡可用未使用過的槍頭戳破);
(5)加入底物液A50 μ L/孔,底物液B 50 μ L/孔,輕輕振蕩混勻,用蓋板膜蓋板后置25°C避光環境中反應15?20 min ;
(6)加入終止液50μ L/孔,輕輕振蕩混勻,設定酶標儀于450 nm處或雙波長450/630nm檢測,測定每孔吸光度值(請在5 min內讀完數據);
(7)以的標準品濃度(ppb)的對數為橫坐標,標準品百分吸光度值為縱坐標,繪制標準曲線,對照標準曲線計算樣品中毒死蜱的含量。
[0013]其中,所述待測樣品用以下方法進行預處理:
a.研磨代表性樣品(使50%的樣品可以通過一個20目的濾網);
b.稱量5g研磨過濾后的樣品加入50 mL離心管中,加入3 g氯化鈉,10 mL水和20mL正己烷-丙酮溶液(體積比為2:1);
c.在密封的容器里混合,震蕩渦旋Imin;
d.室溫離心4000r/min以上,1min;取離心后的上清液或過濾后的濾液I mL,50 ~60
°C水浴氮氣吹干;
e.加入標準品稀釋液ImL并充分混勻,4000 r/min離心5 min或用定量分析濾紙過濾,取離心后的上清或過濾后的濾液進行分析。
[0014]本發明檢測毒死蜱的酶聯免疫試劑盒及其檢測方法的測定原理:樣品中的毒死蜱與酶標板上固定的抗原特異性競爭抗體,加入酶標二抗,與抗體反應,通過酶催化顯色劑顯色,根據顯色的深淺來判斷樣品中毒死蜱的含量。如果樣品中的毒死蜱含量少,顯色深;反之,則顯色淺。本發明的試劑盒檢測方法操作簡便,檢測靈敏、準確、快速,適用于大批量樣品的快速檢測。
【具體實施方式】
[0015]毒死蜱蛋白質偶聯物的制備:
采用琥珀酸酐法得到帶羧基的毒死蜱半抗原衍生物,之后取0.05 mmol與載體蛋白BSA按10:1的結合比混合在0.05 mol/L pH 9.6的碳酸鹽緩沖液(CBS)中,然后加入0.15mmol碳二亞胺,攪拌置室溫反應24 h,最后于0.2 mol/L pH 7.6的PBS緩沖液中透析兩天,除去未反應的半抗原,將得到的蛋白質偶聯物溶液于_20°C保存備用。
[0016]毒死蜱抗體的制備:
選用健康成年純種BALA/C小鼠,取與蛋白質偶聯制備的免疫抗原50μ g與等量完全弗氏佐劑混合采用腹腔注射進行初次免疫,之后每隔3周用相同劑量免疫抗原加等量不完全弗氏佐劑采用腹腔注射進行二次、三次免疫,每次免疫6天后尾靜脈采血測定抗血清效價至一定滴度后,用相同劑量不加佐劑進行末次免疫,3天后取脾制備脾細胞懸浮液與骨髓瘤細胞進行細胞融合,篩選出所需要的雜交瘤細胞系進行克隆化,選擇處于對數生長期的雜交瘤細胞進行凍存,用于腹水制備,先腹腔注射0.5 ml液體石蠟于BALB/C鼠致敏,2周后腹腔注射IXlO6個雜交瘤細胞,接種細胞7-10天后可產生腹水,待腹水盡可能多時用注射器抽取腹水,反復收集數次,4000 rpm離心15 min,收集上清,采用辛酸-硫酸銨法純化腹水對單克隆抗體進行純化,冷凍干燥得凍干粉后于-20 °C保存備用。
[0017]制備包被有毒死蜱包被抗原的酶標板:
包被抗原是將毒死蜱半抗原與載體蛋白牛血清白蛋白(BSA)偶聯得到的,用0.05mol/L pH 9.6的碳酸鹽(CBS)緩沖液作為包被液,將毒死蜱抗原稀釋成1:40000比例,100?/孔,37 °C放置2 h,取出酶標板甩掉板內液體,用稀釋后的濃縮洗滌液300 μ?/孔,洗板2次,30 s/次,然后加入0.5%牛血清白蛋白(BSA)封閉,150 μ?7孔,37°C放置1.5 h,棄去封閉液,拍干后的酶標板放置恒溫間(25°C)晾干,抽檢合格后將酶標板真空密封后置4°C下保存。
[0018]毒死蝶標準品配制濃度分別為O mg/kg、0.lmg/kg、0.3 mg/kg、0.9 mg/kg、2.7 mg/kg、8.1 mg/kg。
[0019]毒死蜱抗體工作