本發明涉及離子濃度響應的DNA結構元件,具體涉及了以DNA三角形折紙結構和DNA四邊形折紙結構為元件,并且這兩種DNA結構皆具備可逆的離子響應功能。本發明屬于納米生物材料領域。
背景技術:
DNA折紙結構的組成為一根很長的DNA單鏈和很多短的DNA單鏈。每一條短鏈都看成是幾小段,分別與那一根長鏈的某個部位互補。當把長鏈和短鏈按照一樣的比例置于溶液之中再復性,每一條短鏈就會像訂書釘似的把長鏈的幾個部位拉到一起,于是這個長鏈的構型就發生了變化。如果對每一條短鏈所配對的位置都有針對性地設計,最終這條長鏈就會被折疊而成為一個設定的圖形,成為DNA折紙結構。
DNA折紙結構由于其結構精確可控,易于修飾,具備良好的生物相容性,而受到了廣泛的關注。近年來研究發現DNA雙螺旋具有導電性,pH響應性等特殊性質,從而為其生物芯片以及納米器件的研發方面開辟了新的可能。傳統的電子元器件由于其本身的局限性,如尺寸大小、微觀結構設計和生物相容性等問題,限制了其最終的發展。DNA結構元件相比之下具備天然的優勢,DNA雙螺旋可以通過堿基互補配對原則將結構尺寸精度控制在埃量級(10-10),其3’、5’端易于修飾各種化學基團,同時其良好的生物相容性更是其他材料無可比擬的。
本發明制備了2種離子濃度響應的DNA結構元件。通過改變離子濃度的大小,DNA折紙結構發生可逆的形狀變化。這一性質可以應用于未來的電子元件領域,尤其是人工植入或可穿戴器件;生化芯片研制;納米器件開發等領域。
技術實現要素:
為克服現有技術的不足,本發明提出了一種離子濃度響應的DNA結構元件及制備和應用。2種離子濃度響應的DNA二維折紙結構,該結構在溶液離子濃度變化時,可以隨之發生可逆的結構變化。
本發明的方法具體為:
一種離子濃度響應的DNA結構元件的制備方法,其特征在于,包括以下步驟:
(1)DNA三角形折紙結構的合成
將208條訂書釘鏈等量地溶解到MilliQ水中,使每條鏈的最終濃度為200nM,將M13mp18 單鏈DNA,100nM,與混好的208條短鏈,200nM,以摩爾濃度比1:10的比例混合在1×TAE-Mg2+溶液中,三羥甲基氨基甲烷(Tris), 40mM;醋酸, 20Mm; 乙二胺四乙酸(EDTA), 2 Mm; 醋酸鎂, 12.5mM;pH 8.0,其中M13mp18 單鏈DNA的最終濃度為5 nM,短鏈最終濃度為50nM;將混好的溶液放入PCR儀中, 設定反應程度95℃持續3分鐘,然后緩慢降溫至4℃,降溫速率為0.2℃/10s;
(2)DNA四邊形折紙結構的合成
將合成矩形折紙結構用的訂書釘鏈等量地溶解到MilliQ水中,使每條鏈的最終濃度為200nM;之后的合成方法同步驟(1)中三角形折紙結構的合成方法;
(3)改變離子濃度并用原子力顯微鏡觀察DNA結構變化
1)1×離子濃度
用1×TAE-Mg2+溶液將制備好的DNA折紙溶液稀釋10倍,取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,并用氮氣吹干;將制備好的樣品放在原子力顯微鏡(Moltimode Nanoscope VII, eeco)下觀察;
2)1/10×離子濃度
將制備好的DNA折紙結構用MilliQ水稀釋至濃度為0.5nM,此時TAE-Mg2+溶液的離子濃度變小,靜置10分鐘;取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,并用氮氣吹干,將制備好的樣品放在原子力顯微鏡下觀察;
3)恢復的1×離子濃度
再向步驟2)的溶液中加入10×TAE-Mg2+溶液,使得溶液離子濃度變為原濃度1 ×TAE-Mg2+,靜置10分鐘;取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,用氮氣吹干,將制備好的樣品放在原子力顯微鏡下觀察。
步驟(1)所述訂書釘單鏈DNA的核苷酸序列為2010年2月17日發表在J. AM. CHEM.SOC.第132卷,第3248-3249頁的題為Gold nanoparticle self-similar chain structure organized by DNA origami的論文的Supporting online information中的S11-S16頁所記載的從A01至Loop的DNA序列。
步驟(2)所述訂書釘單鏈DNA的核苷酸序列為為2012年3月13日發表在J. AM. CHEM.SOC.第134卷,第5516-5519頁的題為Inter-enzyme substrate diffusion for an enzyme cascade organized on spatially addressable DNA nanostructures的論文的Supporting online information中的S25-S28頁所記載的從13至226的DNA序列。
一種離子濃度響應的DNA結構元件,其特征在于,根據上述任一所述方法制備得到。
一種離子濃度響應的DNA結構元件的應用。
本發明的優點在于:本發明提出了2種離子濃度響應的DNA二維折紙結構,該結構在溶液離子濃度變化時,可以隨之發生可逆的結構變化;該DNA結構元件結構精確可控,易于修飾,具備良好的生物相容性;本發明中的制備方法簡單,可操作性強,能進一步滿足生物芯片以及納米器件的制作需求。
附圖說明
圖1為DNA三角形結構離子濃度為1×TAE-Mg2+時的原子力顯微鏡表征圖;
圖2為DNA三角形結構離子濃度為1/10×TAE-Mg2+時的原子力顯微鏡表征圖;
圖3為DNA三角形結構離子濃度由1/10×TAE-Mg2+恢復為1×TAE-Mg2+時的原子力顯微鏡表征圖;
圖4為DNA四邊形結構離子濃度為1×TAE-Mg2+時的原子力顯微鏡表征圖;
圖5為DNA四邊形結構離子濃度為1/10×TAE-Mg2+時的原子力顯微鏡表征圖;
圖6為DNA四邊形結構離子濃度由1/10×TAE-Mg2+恢復為1×TAE-Mg2+時的原子力顯微鏡表征圖。
具體實施方式
以下通過具體的實施例對本發明的技術方案作進一步描述。以下的實施例是對本發明的進一步說明,而不限制本發明的范圍。
實施例1
1、DNA三角形折紙結構的合成
將208條訂書釘鏈等量地溶解到MilliQ水中,使每條鏈的最終濃度為200nM。將M13mp18 單鏈DNA(100nM)與混好的208條短鏈(200nM)以摩爾濃度比1:10的比例混合在1×TAE-Mg2+溶液中(三羥甲基氨基甲烷(Tris), 40mM;醋酸, 20Mm;乙二胺四乙酸(EDTA), 2 Mm;醋酸鎂, 12.5mM;pH 8.0),其中M13mp18 單鏈DNA的最終濃度為5 nM,短鏈最終濃度為50nM。將混好的溶液放入PCR儀中, 設定反應程度95℃持續3分鐘,然后緩慢降溫至4℃,降溫速率為0.2℃/10s。
2、改變離子濃度并用原子力顯微鏡觀察DNA三角形結構的變化
(1)1×離子濃度
用1×TAE-Mg2+溶液將制備好的DNA三角折紙溶液稀釋10倍,取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,并用氮氣吹干。將制備好的樣品放在原子力顯微鏡(Moltimode Nanoscope VII, eeco)下觀察;
(2)1/10×離子濃度
將制備好的DNA三角形折紙結構用MilliQ水稀釋十倍至濃度為0.5nM,此時TAE-Mg2+溶液的離子濃度變小,靜置10分鐘。取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,并用氮氣吹干。將制備好的樣品放在原子力顯微鏡下觀察;
(3)恢復的1×離子濃度
再向步驟(2)的溶液中加入10×TAE-Mg2+溶液,使得溶液離子濃度變為原濃度1 ×TAE-Mg2+,靜置10分鐘。取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,用氮氣吹干。將制備好的樣品放在原子力顯微鏡下觀察。
實施例2
1、DNA三角形折紙結構的合成
將合成矩形折紙結構用的訂書釘鏈等量地溶解到MilliQ水中,使每條鏈的最終濃度為200nM。將M13mp18 單鏈DNA(100nM)與混好的訂書釘短鏈(200nM)以摩爾濃度比1:10的比例混合在1×TAE-Mg2+溶液中(三羥甲基氨基甲烷(Tris), 40mM;醋酸, 20Mm;乙二胺四乙酸(EDTA), 2 Mm;醋酸鎂, 12.5mM;pH 8.0),其中M13mp18 單鏈DNA的最終濃度為5 nM,短鏈最終濃度為50nM。將混好的溶液放入PCR儀中, 設定反應程度95℃持續3分鐘,然后緩慢降溫至4℃,降溫速率為0.2℃/10s。
2、改變離子濃度并用原子力顯微鏡觀察DNA四邊形結構的變化
(1)1×離子濃度
用1×TAE-Mg2+溶液將制備好的DNA四邊形折紙溶液稀釋10倍,取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,并用氮氣吹干。將制備好的樣品放在原子力顯微鏡(Moltimode Nanoscope VII, eeco)下觀察;
(2)1/10×離子濃度
將制備好的DNA四邊形折紙結構用MilliQ水稀釋10倍至濃度為0.5nM,此時TAE-Mg2+溶液的離子濃度變小,靜置10分鐘。取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,并用氮氣吹干。將制備好的樣品放在原子力顯微鏡下觀察;
(3)恢復的1×離子濃度
再向步驟(2)的溶液中加入10×TAE-Mg2+溶液,使得溶液離子濃度變為原濃度1 ×TAE-Mg2+,靜置10分鐘。取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,用氮氣吹干。將制備好的樣品放在原子力顯微鏡下觀察。
實施例3
1、DNA三角形折紙結構的合成
將208條訂書釘鏈等量地溶解到MilliQ水中,使每條鏈的最終濃度為200nM。將M13mp18 單鏈DNA(100nM)與混好的208條短鏈(200nM)以摩爾濃度比1:10的比例混合在1×TAE-Mg2+溶液中(三羥甲基氨基甲烷(Tris), 40mM;醋酸, 20Mm;乙二胺四乙酸(EDTA), 2 Mm;醋酸鎂, 12.5mM;pH 8.0),其中M13mp18 單鏈DNA的最終濃度為5 nM,短鏈最終濃度為50nM。將混好的溶液放入PCR儀中, 設定反應程度95℃持續3分鐘,然后緩慢降溫至4℃,降溫速率為0.2℃/10s。。
2、改變離子濃度并用原子力顯微鏡觀察DNA三角形結構的變化
(1)1×離子濃度
用1×TAE-Mg2+溶液將制備好的DNA三角折紙溶液稀釋10倍,取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,并用氮氣吹干。將制備好的樣品放在原子力顯微鏡(Moltimode Nanoscope VII, eeco)下觀察;
(2)1/10×離子濃度
將制備好的DNA三角形折紙結構用MilliQ水稀釋十倍至濃度為0.5nM,此時TAE-Mg2+溶液的離子濃度變小,靜置1小時。取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,并用氮氣吹干。將制備好的樣品放在原子力顯微鏡下觀察;
(3)恢復的1×離子濃度
再向步驟(2)的溶液中加入10×TAE-Mg2+溶液,使得溶液離子濃度變為原濃度1 ×TAE-Mg2+,靜置10分鐘。取3ul滴在新解離的云母片上,靜置5分鐘,用氮氣吹干。將制備好的樣品放在原子力顯微鏡下觀察。