本發明涉及一種雅致放射毛霉羧肽酶Y基因及其應用,屬于生物技術領域。
背景技術:
羧肽酶Y(carboxypeptidase Y,CPY)是絲氨酸類蛋白酶,活性中心由絲氨酸、天門冬氨酸和組氨酸(Ser-Asp-His)組成,它可以水解肽鏈C末端氨基酸殘基形成游離的氨基酸,其廣泛的存在于細菌,真菌,植物與動物中。CPY具有很寬的底物譜,可以水解任何的羧基末端氨基酸,特別是對大部分其他羧肽酶來說難以水解的脯氨酸等殘基,因此它可以應用于多肽的測序和質譜分析。
羧肽酶Y因其可以切割多肽C末端任意氨基酸的水解特性而被廣泛應用,而不同來源的羧肽酶Y的酶學性質并不相同,目前已被報道的CPY主要來源于釀酒酵母、畢赤酵母與裂殖酵母等,其中釀酒酵母來源的CPY被研究的最為清楚。
雅致放射毛霉(Actinomucor elegans)是腐乳發酵生產的主要菌種之一,擁有非常豐富且高活性的胞外蛋白酶系,CPY也在其中,具有非常大的工業應用潛力。
技術實現要素:
本發明首先提供了一種編碼羧肽酶Y的基因cpy,是以腐乳工業生產用菌雅致放射毛霉為出發菌株,分離其總RNA,反轉錄獲得羧肽酶Y的cDNA,通過RACE獲得基因全長信息。該cpy基因全長1557bp,如SEQ ID NO.1所示,編碼518aa。成熟酶具有水解肽鏈C末端的氨基酸,使其變為游離氨基酸的功能。
本發明還將獲得的基因與載體pPIC9K連接,構建重組表達載體pPIC9K-procpy,轉化畢赤酵母,培養所得重組畢赤酵母,經過誘導后成功表達該基因,得到羧肽酶Y的酶原。將表達的酶原經過體外激活、純化后測定酶活,結果表明SEQ ID NO.1所示基因表達的羧肽酶具有高催化活性的功能。
本發明所提供的羧肽酶Y在酸性條件下具有較高酶活,可以應用于蛋白水解液的脫苦,還可以用于多肽的測序和質譜分析。
附圖說明
圖1為cpy基因的的電泳圖;M,標準Marker;1,CPY基因全長。
圖2為重組酵母菌的分泌表達的羧肽酶的純化結果;M,標準蛋白;0,攜帶pPIC9K的P.pastoris GS115發酵上清;1,重組菌發酵上清;2,純化的proCPY;3,純化的CPY。
圖3為L-Tyr標樣的HPLC圖,出峰時間為3.4min。
圖4 CPY催化反應過程中底物N-CBZ-Phe-Tyr的HPLC圖。
圖5 CPY催化反應過程中產物的HPLC圖,出峰時間為3.4min。
具體實施方式
HPLC測定酶的活性:
取5μl激活純化的CPY加入到1ml 2mmol/L N-CBZ-Phe-Tyr中,在37℃與pH6.0下反應10min,反應所得產物L-Tyr用HPLC進行檢測。色譜柱為DIKMAC18(5μm,4.6×250mm);流動相A為含55mmol/L醋酸鈉的水,流動相B為含55mmol/L醋酸鈉體積比1:2:2的水、甲醇與乙腈的混合物,pH都為7.2,線性洗脫梯度B的體積百分比為40%-70%,洗脫15min。紫外檢測波長338nm,柱溫40℃。所測得的產物峰面積換算為標準產物濃度,從而計算酶活。酶活定義:在25℃、pH 6.0磷酸鈉緩沖液下,每分鐘轉化N-CBZ-Phe-Tyr生成1μmol L-Tyr所需的酶量為1U。
實施例1 cpy基因的獲得
提取雅致放射毛霉總RNA,以RNA為模版制備RACE-Ready cDNA,以5'–RACE-Ready cDNA為模板,以簡并引物進行PCR擴增,對目的產物進行膠回收后測序,獲得約500bp的基因信息,通過NCBI庫信息比對發現其為CPY部分序列。由獲得的CPY部分序列設計RACE的特異性引物,進一步PCR獲得cpy的序列。
A.elegans PEP001來源的羧肽酶Y的基因全長1557bp,如SEQ ID NO.1所示,編碼518aa。
實施例2 cpy基因的表達
SingnalP預測結構表明AeCPY蛋白N端含有23個氨基酸的N端信號肽序列,最優剪切位點位于第23和第24位氨基酸之間。Expasy中的ProtParam預測proCPY的理論分子量與等電點分別為58.8kD與5.5。根據信號肽預測結果,設計引物擴增編碼proCPY的基因。
上游引物:pPproCPY-F(5'–GGAATTCGAACCAGCCATGTTTCAGCAGCA–3')
下游引物:pPproCPY-R(5'–TAAACTATGCGGCCGCCTAATGATGATGATGATGATGGTTGAGTTCACCACGAACCC ATT–3')。
將PCR擴增得到的procpy基因用EcoR I和Not I限制性內切酶雙酶切后連接到用同樣限制性內切酶酶切的質粒載體pPIC9K上,構建的質粒pPIC9K-procpy轉化到Escherichia coli JM109中,在含有氨芐青霉素抗性的LB固體培養基平板上挑選陽性重組子,測序驗證。
將質粒pPIC9K-procpy用Sac I線性化,設置電轉參數:1500v,400Ω,4-6ms,電轉畢赤酵母。將轉化子在MD平板上篩選,挑選陽性重組子并用MD與MM平板鑒定轉化子是否為Mut+基因型。用G418濃度分別為0.25,0.5,0.75,2.0,3.0,4.0mg/mL的YPD平板篩選高拷貝轉化子。
將重組質粒pET-22b(+)-procpy轉化到Escherichia coli Rosetta(DE3)中,挑選單菌落至5mL含50mg/L氨芐青霉素的LB液體培養基中,37℃、200r/min培養10h后,取1mL培養物至100mL含50mg/L氨芐青霉素的2×YT培養基中,在37℃、200r/min培養至菌體的OD600為0.8時加入IPTG至終濃度為0.4mmol/L,20℃誘導12h后離心收集菌體。重組菌株經誘導表達后,表達產物幾乎全部都是包涵體。這與之前報導的利用大腸桿菌表達釀酒酵母proCPY的結果相類似。
將畢赤酵母轉化子單菌落至100ml BMGY中,30℃、200r/min培養至OD600約20左右,6,000×g離心5min收集菌體轉入100ml BMMY中。30℃、200r/min下每隔24h加入1%的甲醇進行誘導,誘導144h,離心收集發酵上清。將收集的發酵上清,用30ku孔徑的超濾管將發酵上清蛋白濃縮溶于100mM Tris/HCl(pH 7.5)中。用適量trypsin在37℃下處理1h后,加入胰蛋白酶抑制劑,可以獲得較高活性的重組蛋白CPY。激活后的蛋白溶液,用30ku孔徑的超濾管將緩沖液更換為結合緩沖液(20mM磷酸鈉,500mM氯化鈉,20mM咪唑,pH 7.4),濃縮并除去部分雜蛋白。用His Trap FF crude,1mL鎳柱對粗酶液進行純化,用含150mmol/L咪唑的洗脫緩沖液洗脫目的蛋白,進行SDS-PAGE鑒定(圖2)。
取5μl激活純化的CPY加入到1ml 2mmol/L N-CBZ-Phe-Tyr中,在37℃與pH6.0下反應10min,反應所得產物L-Tyr用HPLC進行檢測。色譜柱為DIKMAC18(5μm,4.6×250mm);流動相A為含55mmol/L醋酸鈉的水,流動相B為含55mmol/L醋酸鈉體積比1:2:2的水、甲醇與乙腈的混合物,pH都為7.2,線性洗脫梯度B的體積百分比為40%-70%,洗脫15min。紫外檢測波長338nm,柱溫40℃。所測得的產物峰面積換算為標準產物濃度,從而計算酶活。L-Tyr標樣、底物N-CBZ-Phe-Tyr與反應產物HPLC圖如圖3-5所示,酶活為157.20±1.80U/mg(p<0.01)。
雖然本發明已以較佳實施例公開如上,但其并非用以限定本發明,任何熟悉此技術的人,在不脫離本發明的精神和范圍內,都可做各種的改動與修飾,因此本發明的保護范圍應該以權利要求書所界定的為準。
SEQUENCE LISTING
<110> 江南大學
<120> 一種雅致放射毛霉羧肽酶Y基因及其應用
<160> 3
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 1557
<212> DNA
<213> 雅致放射毛霉PEP001
<400> 1
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ggctatgccg aaccagccat gtttcagcag caaggagcta ttgcagattt tggcgaaaag 120
gcctgggaca acgtgcagca cgtagtccat gatgctgctg ataaggtcca cagcgctacg 180
gataaattca agcaaatttt aagccatggc gctgatactt taaccacctt tacccaccct 240
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<213> 人工序列
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