一種快速檢測維生素d的試紙條的制作方法
【專利摘要】本發明公開了一種快速檢測維生素D的試紙條,包括不吸水的支撐板,所述支撐板上依次設置有樣品墊、結合墊、層析膜和吸收墊,所述結合墊上包被有標記物標記的維生素D與載體蛋白的偶聯物,所述層析膜為硝酸纖維素膜,層析膜上設置有質控C線和檢測T線,所述檢測T線位于結合墊和質控C線之間,檢測T線上包被有維生素D特異性抗體,質控C線上包被有能夠與載體蛋白結合的特異性抗體。本發明的試紙條使用方便,操作簡單,檢測速度快,容易普及到基層醫療單位使用,滿足市場需求,能夠填補國內外市場空白,試紙條結果判斷容易,用符號表示,擺脫了維生素D檢測對設備、儀器以及人員的特殊要求。
【專利說明】-種快速檢測維生素 D的試紙條
【技術領域】
[0001] 本發明屬于生物檢測【技術領域】,具體涉及一種快速檢測維生素 D的試紙條。
【背景技術】
[0002] 維生素 D在調節人體內鈣代謝、維持肌肉骨骼和免疫系統的健康和穩定、預防部 分惡性腫瘤發生有著不可或缺的作用。聯合國衛生組織統計數據顯示,全球大約90%人口 患有維生素 D不足之癥。由于維生素 D的分子特性(高度親脂性)使其分離提純難度增 力口,檢測條件要求高,限制了維生素 D檢測在臨床的推廣應用,也限制了我們獲得更多的有 關維生素 D的信息。到目前為止,已經報道并被臨床接受的人血清維生素 D檢測方法有試 劑盒檢測以及儀器檢測兩類。
[0003] 一、儀器檢測。1)直接檢測法(Direct Detection Methodology)。這類方法中最 著名的是液相色譜分析法(HPLC)以及后來改進了的液相色譜-質譜聯用分析法(LC/MS)。 2)自動分析檢測儀(Automated Instrumentation Methodology)。儀器檢測其優點是精確 度高,缺點是儀器投資大,樣品必須有機溶劑提取并純化,分析人員需要經過專業培訓,并 且分析過程中有機溶劑消耗大,不利于環境保護。目前直接分析法多局限于研究型實驗室 使用。
[0004] 美國的 Nichols Institute Diagnostics 公司,DiaSorin 公司以及德國 Roche Diagnostics公司分別宣布其研發出血清維生素 D自動檢測儀器。應用此類自動分析儀, 血清樣品不需要任何前期處理即可直接進行檢測。此類儀器檢測的原理是化學熒光分析技 術。其優點是儀器自動完成樣品的分離,提取,檢測,數據整理,結果判斷等步驟。樣品的檢 測周期約一個半小時。其缺點是自動分析儀價格尤其昂貴,限制了其的推廣使用。
[0005] 二、試劑盒檢測,按作用原理又分為以下幾種:
[0006] 1)競爭性蛋白結合分析法(CPBA)
[0007] 2)放射免疫分析法(RIA)
[0008] 3)酶聯免疫吸附法(ELISA)
[0009] 目前已有的試劑盒檢測分析方法基本上均使用免疫反應板,通過直接或間接酶聯 免疫反應檢測樣品中維生素 D含量。在這些檢測方法中,絕大多數需要進行樣品的有機溶 劑提取,一些方法中反應物有同位素標記,易造成環境有機溶劑以及放射性物質污染,且檢 測必須由專業人員在實驗室通過儀器操作完成。平均檢測過程在100分鐘左右。
[0010] 由上述分析可以看出,目前已有的維生素 D檢測方法,無論儀器檢測或酶聯免疫 反應板檢測,其均存在著儀器設備投資高,檢測人員要求高,檢測過程中有機溶劑或放射性 物質污染等問題,使得維生素 D檢測普及受到限制,這也造成臨床用藥缺少檢驗指標支持, 用藥帶有極大的盲目性,甚至給患者身體帶來更多的危害。為此,開發一種操作簡便、快速、 價格低、適合基層推廣使用的血清維生素 D檢測方法是未來的發展趨勢,也是臨床工作者 和廣大患者的迫切要求。
[0011] 側向層流免疫分析技術興起在上世紀90年代,在近10年有了長足的發展,已經被 廣泛應用于快速檢測診斷領域。而維生素 D的檢測由于樣品提純過程復雜,樣品不穩定,標 準參照物難得等等原因,一直未能在臨床廣泛開展。
【發明內容】
[0012] 本發明所要解決的技術問題在于針對上述現有技術的不足,提供一種快速檢測維 生素 D的試紙條。該試紙條是基于競爭性免疫結合原理,采用側向層析法檢測維生素 D濃 度,其檢測方法簡單、結果易于判斷、檢測成本低廉,適合在基層醫院、診所以及體檢中心等 單位使用,對于降低維生素 D檢測成本、普及人體維生素 D檢測、減少臨床盲目用藥具有重 要意義。
[0013] 為解決上述技術問題,本發明采用的技術方案是:一種快速檢測維生素 D的試紙 條,包括不吸水的支撐板,所述支撐板上依次設置有樣品墊、結合墊、層析膜和吸收墊,其特 征在于,所述結合墊上包被有標記物標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物,所述層析膜為 硝酸纖維素膜,層析膜上設置有質控C線和檢測T線,所述檢測T線位于結合墊和質控C線 之間,檢測T線上包被有維生素 D特異性抗體,質控C線上包被有能夠與載體蛋白結合的特 異性抗體。
[0014] 上述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,所述標記物為膠體金顆粒。
[0015] 上述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,所述載體蛋白為牛血清白蛋白,能夠與 載體蛋白結合的特異性抗體為BSA免疫球蛋白。
[0016] 上述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,所述載體蛋白為雞卵清白蛋白,能夠與 載體蛋白結合的特異性抗體為兔抗雞卵清白蛋白。
[0017] 上述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,所述維生素 D為25-羥基維生素 D3或 25-羥基維生素 D2。
[0018] 上述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,所述檢測T線和質控C線之間的距離為 lcm〇
[0019] 上述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,所述維生素 D特異性抗體為鼠抗維生素 D單克隆抗體,維生素 D特異性抗體的包被量為2 μ L,包被濃度為0. 25mg/mL?5mg/mL。
[0020] 上述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,所述能夠與載體蛋白結合的特異性抗體 的包被量為2 μ L,包被濃度為0· lmg/mL?1. Omg/mL。
[0021] 上述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,所述標記物標記的維生素 D與載體蛋白 的偶聯物的制備方法包括以下步驟:
[0022] 步驟一、將lmg?10mg維生素 D溶解于100 μ L有機溶劑中,然后在攪拌條件下 向10mL濃度為0. lmg/mL?5mg/mL的載體蛋白溶液中逐滴加入溶解后的維生素 D,再逐滴 加入體積百分比濃度為50%的戊二醛水溶液至溶液中戊二醛的體積百分比濃度為1 %? 3%,攪拌5min?20min后移至4°C下攪拌反應16h?18h,反應后的反應液用PBS緩沖溶 液在4°C下透析8h,透析過程中換液2?3次,透析物離心后取上清液,最后將上清液用 0. 45 μ m濾膜過濾,得到維生素 D與載體蛋白的偶聯物,-20°C保存備用;
[0023] 步驟二、向標記物溶液中加入步驟一中所述維生素 D與載體蛋白的偶聯物至溶液 中維生素 D的終濃度為10 μ g/mL?1000 μ g/mL,攪拌5min后加入BSA溶液至BSA的質量 體積百分濃度為〇. 1 %?1 %,在4°C下避光攪拌反應30min后加入聚乙二醇溶液至聚乙二 醇的質量體積百分濃度為0. 1 %?1 %,繼續反應5min后離心,棄去上清,將沉淀復溶后得 到標記物標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物。
[0024] 上述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,步驟一中所述有機溶劑為正己烷、乙腈、 二甲基亞砜或1,4-二氧六環。
[0025] 本發明與現有技術相比具有以下優點:
[0026] 1、本發明的快速檢測維生素 D的試紙條是基于競爭性免疫結合原理,采用側向層 析法檢測維生素 D濃度,其檢測方法簡單、結果易于判斷、檢測成本低廉,適合在基層醫院、 診所以及體檢中心等單位使用,對于降低維生素 D檢測成本、普及人體維生素 D檢測、減少 臨床盲目用藥具有重要意義。
[0027] 2、本發明的試紙條使用方便,操作簡單,檢測速度快,容易普及到基層醫療單位使 用,滿足市場需求,能夠填補國內外市場空白。
[0028] 3、本發明的試紙條結果判斷容易,用符號表示,擺脫了維生素 D檢測對設備、儀器 以及人員的特殊要求。
[0029] 4、本發明的試紙條不僅可采用膠體金顆粒作為標記物,還可采用熒光化學物質、 染色劑、乳膠顆粒、酶或磁性顆粒作為標記物,按照常規方法進行維生素 D與載體蛋白的偶 聯物的標記。
[0030] 下面結合附圖和實施例,對本發明的技術方案作進一步的詳細描述。
【專利附圖】
【附圖說明】
[0031] 圖1為本發明試紙條的結構示意圖。
[0032] 附圖標記說明:
[0033] 1-支撐板;2-樣品墊;3-結合墊;
[0034] 4一層析膜;5-檢測T線;6-質控C線;
[0035] 7-吸收墊。
【具體實施方式】
[0036] 實施例1標記物標記的維生素 D (25-羥基維生素 D3)與載體蛋白的偶聯物的制備
[0037] 步驟一、將 lmg 維生素 D (25〇HD33_HS,購于 Toronto Research Chemicals 公司)溶 解于100 μ L有機溶劑(正己烷、乙腈、二甲基亞砜或1,4-二氧六環)中,然后在攪拌條件 下向10mL濃度為0. lmg/mL的載體蛋白(牛血清白蛋白BSA,或雞卵清白蛋白0VA)溶液中 逐滴加入溶解后的維生素 D,再逐滴加入體積百分比濃度為50%的戊二醛水溶液至溶液中 戊二醛的體積百分比濃度為1%,攪拌5min后移至4°C下攪拌反應16h,反應后的反應液用 PBS緩沖溶液在4°C下透析8h,透析過程中換液2?3次,透析物離心后取上清液,最后將上 清液用〇. 45 μ m濾膜過濾,得到維生素 D與載體蛋白的偶聯物,-20°C保存備用;
[0038] 步驟二、向40nm膠體金溶液(0D1. 0,購于上海杰一生物公司)中加入步驟一中所 述維生素 D與載體蛋白的偶聯物至溶液中維生素 D的終濃度為10 μ g/mL,攪拌5min后加入 BSA溶液至BSA的終濃度(質量體積百分濃度)為0· 1 % (即100mL溶液中含0· lg BSA), 在4°C下避光攪拌反應30min后加入聚乙二醇溶液至聚乙二醇的終濃度(質量體積百分濃 度)為0. 1% (S卩100mL溶液中含0. lg聚乙二醇),繼續反應5min后離心,棄去上清,將沉 淀復溶后得到標記物膠體金標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物(含維生素 D30ng/mL? 40ng/mL)〇
[0039] 實施例2標記物標記的維生素 D (25-羥基維生素 D2)與載體蛋白的偶聯物的制備
[0040] 步驟一、將 5mg 維生素 D (25〇HD2,購于 Toronto Research Chemicals 公司)溶解 于100 μ L有機溶劑(正己烷、乙腈、二甲基亞砜或1,4-二氧六環)中,然后在攪拌條件下 向10mL濃度為2mg/mL的載體蛋白(牛血清白蛋白BSA,或雞卵清白蛋白0VA)溶液中逐滴 加入溶解后的維生素 D,再逐滴加入體積百分比濃度為50%的戊二醛水溶液至溶液中戊二 醛的體積百分比濃度為2%,攪拌10min后移至4°C下攪拌反應17h,反應后的反應液用PBS 緩沖溶液在4°C下透析8h,透析過程中換液2?3次,透析物離心后取上清液,最后將上清 液用0. 45 μ m濾膜過濾,得到維生素 D與載體蛋白的偶聯物,-20°C保存備用;
[0041] 步驟二、向40nm膠體金溶液(0D1. 0,購于上海杰一生物公司)中加入步驟一中所 述維生素 D與載體蛋白的偶聯物至溶液中維生素 D的終濃度為100 μ g/mL,攪拌5min后加 入BSA溶液至BSA的終濃度(質量體積百分濃度)為0. 5%,在4°C下避光攪拌反應30min 后加入聚乙二醇溶液至聚乙二醇的終濃度(質量體積百分濃度)為0. 5%,繼續反應5min 后離心,棄去上清,將沉淀復溶后得到標記物膠體金標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物 (含維生素 D30ng/mL ?40ng/mL)。
[0042] 實施例3標記物標記的維生素 D (25-羥基維生素 D3)與載體蛋白的偶聯物的制備
[0043] 步驟一、將 10mg 維生素 D (25〇HD3,購于 Toronto Research Chemicals 公司)溶解 于100 μ L有機溶劑(正己烷、乙腈、二甲基亞砜或1,4-二氧六環)中,然后在攪拌條件下 向10mL濃度為5mg/mL的載體蛋白(牛血清白蛋白BSA,或雞卵清白蛋白0VA)溶液中逐滴 加入溶解后的維生素 D,再逐滴加入體積百分比濃度為50%的戊二醛水溶液至溶液中戊二 醛的體積百分比濃度為3%,攪拌20min后移至4°C下攪拌反應18h,反應后的反應液用PBS 緩沖溶液在4°C下透析8h,透析過程中換液2?3次,透析物離心后取上清液,最后將上清 液用0. 45 μ m濾膜過濾,得到維生素 D與載體蛋白的偶聯物,-20°C保存備用;
[0044] 步驟二、向40nm膠體金溶液(購于上海杰一生物公司)中加入步驟一中所述維 生素 D與載體蛋白的偶聯物至溶液中維生素 D的終濃度為1000 μ g/mL,攪拌5min后加入 BSA溶液至BSA的終濃度(質量體積百分濃度)為1. 0%,在4°C下避光攪拌反應30min后 加入聚乙二醇溶液至聚乙二醇的終濃度(質量體積百分濃度)為1. 0%,繼續反應5min后 離心,棄去上清,將沉淀復溶后得到膠體金標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物(含維生素 D30ng/mL ?40ng/mL)。
[0045] 實施例4維生素 D單克隆抗體的制備
[0046] 以實施例1、實施例2或實施例3的步驟一中制備的維生素 D與載體蛋白的偶聯物 作為免疫原,按50 μ g/只?200 μ g/只的劑量免疫Balb/c小鼠,使其產生抗血清;約6-8 周后取小鼠脾細胞與SP2/0骨髓瘤細胞融合得到雜交瘤細胞;所得雜交瘤細胞應用25-輕 基維生素 D3包被的免疫反應板,經過酶聯免疫反應篩選得到穩定分泌抗25-羥基維生素 D3的單克隆抗體的細胞株,篩選得到的細胞株經過克隆復選,復選采用25-羥基維生素 D2 包被的免疫反應板,得到穩定分泌抗25-羥基維生素 D的單克隆抗體的細胞株;在DMEM 培養液中擴增培養細胞,細胞培養上清液經過離心,濃縮,經G蛋白(GE Healthcare Life Sciences)層析柱純化,得到純化后的鼠抗維生素 D單克隆抗體,-20°C保存備用。
[0047] 實施例5膠體金標記維生素 D結合墊的制備
[0048] 將玻纖膜(Ahlstrom8964)剪成5mm寬的長條,將剪好的玻纖膜置于平坦干凈的玻 璃板上,將實施例1、實施例2或實施例3制備的膠體金標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯 物用稀釋液稀釋1. 5倍,然后按每試紙條20 μ L?50 μ L的量均勻地加在玻纖膜上,使玻纖 膜均勻浸透,在37°C烘干(60分鐘),防潮避光保存備用,所述稀釋液為含有蔗糖、Tween-20 和PEG20000的四硼酸鈉溶液,稀釋液中四硼酸鈉的濃度為2mM?20mM,每100mL稀釋液中 含有 0· 5g ?10g 蔗糖,0· lmL ?lmL Tween-20 和 0· 5g ?5g PEG20000。
[0049] 實施例6層析膜的制備
[0050] 層析膜選醋酸纖維素膜(millipore HF13502),裁成30mm寬的條形;檢測T線5上 包被鼠抗維生素 D單克隆抗體,包被濃度0· 25mg/mL?5mg/mL(優選0· 25mg/mL、0. 5mg/mL、 lmg/mL、2mg/mL、3mg/mL、4mg/mL或5mg/mL),按2 μ L/試紙條抗體量制備,當采用的載體蛋 白為牛血清白蛋白時,質控C線6上包被BSA免疫球蛋白(購于上海瑞齊生物技術有限公 司),包被濃度為 〇· lmg/mL ?1. Omg/mL (優選 0· lmg/mL、0. 3mg/mL、0. 5mg/mL、0. 8mg/mL 或 1. Omg/mL),按2 μ L/試紙條的抗體量制備,當采用的載體蛋白為雞卵清白蛋白時,質控C線 6 上包被兔抗 0VA,包被濃度為 0. lmg/mL ?1. 0mg/mL (優選 0. lmg/mL、0. 3mg/mL、0. 5mg/mL、 0. 8mg/mL或1. Omg/mL),按2 μ L/試紙條的抗體量制備,將裁好的醋酸纖維素膜固定于干凈 的有機玻璃板上,應用劃膜儀(上海杰一生物科技公司)制備檢測T線5以及質控C線6, 檢測T線5與質控C線6間距lcm ;將制備好的層析膜在室溫下真空干燥1小時,密封避光 防潮保存。
[0051] 實施例7組裝試紙條
[0052] 試紙條支撐板1購于上海杰一生物科技公司,支撐板1長7. 8cm,寬5mm ;將實施例 6制備的層析膜裁成寬5mm,長3cm的層析膜4,使檢測T線位于層析膜4的中央;樣品墊2 尺寸5mmX2. 3cm,吸收墊7尺寸5mmX2. 0cm ;按圖1所示,將樣品墊2、結合墊3、層析膜4 和吸收墊7依次粘貼于支撐板1上,樣品墊2和結合墊3之間、結合墊3和層析膜4之間以 及層析膜4和吸收墊7之間均有1_?2_的重疊,得到快速檢測維生素 D的試紙條,2°C? 8°C的環境中避光防潮儲存,有效期12個月。
[0053] 實施例8試紙條的應用
[0054] 標準濃度樣品制備:按照實施例1、實施例2或實施例3中步驟一的方法制備 25-羥基維生素 D與BSA的偶聯物;HPLC檢測偶聯物中25-羥基維生素 D的濃度;通過離 心濃縮(Millipore Amicon centrifugal filter)得到標準樣品,并使用BSA濃度為lmg/mL 的PBS溶液稀釋標準樣品,得到維生素 D濃度分別為:0ng/mL、10ng/mL、20ng/mL、25ng/mL、 30ng/mL、35ng/mL、40ng/mL、60ng/mL 和 80ng/mL 的標準濃度樣品,其中 0ng/mL 樣品為 BSA 濃度lmg/mL的PBS溶液。
[0055] 標準濃度樣品檢測:取20 μ L的標準濃度樣品加入樣品墊靠近結合墊的區域;將 150 μ L檢測劑逐滴加入樣品墊靠近試紙條末端的部位,10?15分鐘后觀察結果;所述檢 測試劑為含有蔗糖、Tween-20和PEG20000的四硼酸鈉溶液,檢測試劑中四硼酸鈉的濃度為 2mM?20mM,每100mL檢測試劑中含有0. 5g?10g鹿糖,0. lmL?lmL Tween-20和0. 5g? 5gPEG20000〇
[0056] 本發明試紙條的檢測原理為:待檢測樣品與檢測試劑混合液由毛細管引力引導沿 試紙條向反應膜擴散,混合液經過結合墊時,結合墊所包被的膠體金標記的維生素 D與載 體蛋白的偶聯物被釋放并隨混合液沿反應膜擴散;待檢測樣品中的維生素 D與結合墊釋放 的膠體金標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物競爭與檢測T線包被的維生素 D單克隆抗體 結合;若待檢樣品中維生素 D的含量高于所設定的檢測閾值,則檢測T線包被的抗體的結合 位點由樣品維生素 D完全封閉,阻止膠體金標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物與之結合, 檢測T線不顯色,而膠體金標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物可與質控C線包被的能夠 與載體蛋白結合的特異性抗體相結合,質控C線顯色;若待檢測樣品液中維生素 D含量低于 所設檢測閾值,則檢測T線包被的抗體的結合位點不能被完全封閉,進而膠體金標記的維 生素 D與載體蛋白的偶聯物與層析膜上維生素 D抗體結合,檢測T線顯色,同時質控C線抗 體也可與膠體金標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物結合,質控C線顯色;若質控區不顯 不,則試紙條失效。
[0057] 結果判斷:
[0058] 陰性:檢測T線不顯色,質控C線顯出條帶,判斷為陰性,用表示,代表所檢樣 品維生素 D含量超過所設檢測閾值(維生素 D含量充足);
[0059] 陽性:檢測T線和質控C線均顯示出條帶,判斷為陽性,用" + "表示,代表所檢樣品 中維生素 D含量低于所設檢測閾值(維生素 D含量不足);
[0060] 無效:當質控C線不顯色,則判斷為無效試紙條。
[0061] 標準濃度樣品檢測結果見表1。
[0062] 表1標準濃度維生素 D樣品檢測結果
[0063]
【權利要求】
1. 一種快速檢測維生素 D的試紙條,包括不吸水的支撐板(1),所述支撐板⑴上依次 設置有樣品墊(2)、結合墊(3)、層析膜(4)和吸收墊(7),其特征在于,所述結合墊(3)上包 被有標記物標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物,所述層析膜(4)為硝酸纖維素膜,層析膜 (4) 上設置有質控C線(6)和檢測T線(5),所述檢測T線(5)位于結合墊(3)和質控C線 (6)之間,檢測T線(5)上包被有維生素 D特異性抗體,質控C線(6)上包被有能夠與載體 蛋白結合的特異性抗體。
2. 根據權利要求1所述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,其特征在于,所述標記物為 膠體金顆粒。
3. 根據權利要求1所述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,其特征在于,所述載體蛋白 為牛血清白蛋白,能夠與載體蛋白結合的特異性抗體為BSA免疫球蛋白。
4. 根據權利要求1所述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,其特征在于,所述載體蛋白 為雞卵清白蛋白,能夠與載體蛋白結合的特異性抗體為兔抗雞卵清白蛋白。
5. 根據權利要求1所述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,其特征在于,所述維生素 D 為25-輕基維生素 D3或25-輕基維生素 D2。
6. 根據權利要求1所述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,其特征在于,所述檢測T線 (5) 和質控C線(6)之間的距離為lcm。
7. 根據權利要求1所述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,其特征在于,所述維生素 D 特異性抗體為鼠抗維生素 D單克隆抗體,維生素 D特異性抗體的包被量為2 μ L,包被濃度為 0· 25mg/mL ?5mg/mL〇
8. 根據權利要求1所述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,其特征在于,所述能夠與載 體蛋白結合的特異性抗體的包被量為2 μ L,包被濃度為0. lmg/mL?1. Omg/mL。
9. 根據權利要求1所述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,其特征在于,所述標記物標 記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物的制備方法包括以下步驟: 步驟一、將lmg?10mg維生素 D溶解于100 μ L有機溶劑中,然后在攪拌條件下向10mL 濃度為〇. lmg/mL?5mg/mL的載體蛋白溶液中逐滴加入溶解后的維生素 D,再逐滴加入體積 百分比濃度為50%的戊二醛水溶液至溶液中戊二醛的體積百分比濃度為1%?3%,攪拌 5min?20min后移至4°C下攪拌反應16h?18h,反應后的反應液用PBS緩沖溶液在4°C下 透析8h,透析過程中換液2?3次,透析物離心后取上清液,最后將上清液用0. 45 μ m濾膜 過濾,得到維生素 D與載體蛋白的偶聯物,-20°C保存備用; 步驟二、向標記物溶液中加入步驟一中所述維生素 D與載體蛋白的偶聯物至溶液中維 生素 D的終濃度為10 μ g/mL?1000 μ g/mL,攪拌5min后加入BSA溶液至BSA的質量體積 百分濃度為〇. 1%?1%,在4°C下避光攪拌反應30min后加入聚乙二醇溶液至聚乙二醇的 質量體積百分濃度為〇. 1 %?1 %,繼續反應5min后離心,棄去上清,將沉淀復溶后得到標 記物標記的維生素 D與載體蛋白的偶聯物。
10. 根據權利要求9所述的一種快速檢測維生素 D的試紙條,其特征在于,步驟一中所 述有機溶劑為正己烷、乙腈、二甲基亞砜或1,4-二氧六環。
【文檔編號】G01N33/531GK104062440SQ201410308883
【公開日】2014年9月24日 申請日期:2014年6月30日 優先權日:2014年6月30日
【發明者】韓雅君 申請人:韓雅君