一種催化效率提高的n-乙酰谷氨酸激酶突變體的制作方法

            文檔序號:10483744閱讀:503來源:國知局
            一種催化效率提高的n-乙酰谷氨酸激酶突變體的制作方法
            【專利摘要】本發明公開了一種催化效率提高的N?乙酰谷氨酸激酶突變體,屬于生物工程領域。將來源于鈍齒棒桿菌(Corynebacterium crenatum SYPA5?5)的N?乙酰谷氨酸激酶的基因進行定點突變,使其編碼的氨基酸序列在第74位由異亮氨酸I突變為纈氨酸V。本發明所述的N?乙酰谷氨酸激酶突變體的催化效率(Kcat/Km)由野生型的513mM?1min?1提高到843mM?1min?1,是突變之前的1.64倍,并且此突變體的熱穩定性也有所提高。本發明所得N?乙酰谷氨酸激酶突變體更有利于精氨酸的生產需求,為高效合成L?精氨酸奠定了基礎。
            【專利說明】
            -種催化效率提高的N-乙醜谷氨酸激酶突變體
            技術領域
            [0001] 本發明設及一種催化效率提高的N-乙酷谷氨酸激酶突變體,屬于生物工程技術領 域。
            【背景技術】
            [0002] k精氨酸是一種堿性半必須氨基酸,它具有多種生理功能。它是合成胞漿蛋白和 核蛋白的必需氨基酸;作為唯一的氨來源參與肌酸的合成;作為尿素循環的重要中間體,在 肝臟中扮演著排除多余氨的角色,防止氨過量積累而引起中毒;它還具有調節人體免疫力 的功能,可抑制腫瘤生長、促進受傷組織愈合等。并且,精氨酸是一氧化氮、尿素、鳥氨酸及 肌下胺的直接前體,是合成肌肉素的重要原素,且被用作聚胺、瓜氨酸及谷氨酷胺的合成。 因此,k精氨酸在醫藥、食品及化工領域方面具有重要而廣泛的應用。
            [0003] N-乙酷谷氨酸激酶(N-acetyl glutamate kinase)簡稱熱61(,是心精氨酸合成途 徑的第二個酶和關鍵限速酶,同時它受終產物k精氨酸的反饋抑制。在ATP的作用下,它催 化N-乙酷谷氨酸的A-COO-憐酸化從而生成心精氨酸合成的中間體N-乙酷谷氨酸憐酸。
            [0004] k精氨酸生產方法有水解法和發酵法。水解法存在操作費時,收率和產量低,成本 高等問題,并且存在嚴重的污染而不適合大規模的生產。因此,實現發酵法生產心精氨酸成 為國內外氨基酸工業的一個十分迫切的問題。目前,用來產心精氨酸的微生物菌株主要是 谷氨酸棒桿菌與純齒棒桿菌,為提高精氨酸產量,研究者們利用DNA重組技術結合代謝工程 技術調控合成精氨酸的代謝途徑,運使得精氨酸的產量大有提高。為進一步提高生產量研 究者漸漸開始將研究重點轉向心精氨酸限速酶一一N-乙酷谷氨酸激酶(NAGK),通過克隆N-乙酷谷氨酸激酶基因并導入其它菌株來表達,W及運用定點突變技術獲得解除精氨酸對其 的反饋抑制,從而來提高發酵產k精氨酸的能力。然而,雖然通過克隆N-乙酷谷氨酸激酶基 因(a巧B)并導入其它菌株獲得了NAGK的過量表達,但是NAGK的比酶活并不高即NAGK的催化 活性較弱,且熱穩定性不好即在37°C下NAGK的半衰期為3611,而心精氨酸的發酵周期是96h。 因此,在保持N-乙酷谷氨酸激酶過量表達的基礎上,提高其催化效率與熱穩定性成為工業 生產的迫切需要。
            [0005] 因此,本發明公開了一種催化效率提高的N-乙酷谷氨酸激酶突變體,將來源于純 齒棒桿菌(Corynebacterium crenatum SYPA5-5)的N-乙酷谷氨酸激酶的基因進行定點突 變,使其編碼的氨基酸序列在第74位由異亮氨酸I突變為鄉氨酸V。本發明所述的N-乙酷谷 氨酸激酶突變體口 4VNAGK的催化效率(843mM-imin-i)相對于突變之前(513mM-imin-i)提高了 1.64倍,并且此突變體的熱穩定性也有所提高。本發明所得N-乙酷谷氨酸激酶突變體更有 利于精氨酸的生產需求,為高效合成k精氨酸奠定了基礎。

            【發明內容】

            [0006] 本發明要解決的問題是提供一種催化效率提高的N-乙酷谷氨酸激酶突變體 (NAGK)。將來源于純齒棒桿菌(Corynebacterium crenatum SYPA5-5)的N-乙酷谷氨酸激酶 第74位的異亮氨酸I進行定點突變,將含突變后基因的重組質粒轉化進入E.COli化21進行 表達,蛋白純化后得到催化效率提高的N-乙酷谷氨酸激酶突變體。
            [0007] 編碼所述突變后N-乙酷谷氨酸激酶的核巧酸序列如SEQ ID NO. 1所示所示。
            [0008] 所述突變是將第74位的異亮氨酸突變為鄉氨酸V。
            [0009] 獲得所述突變體的方法,是W祀T28a-argB質粒(一種高產k精氨酸的純齒棒桿菌 SYPA5-5)為模版,設計引物,通過重疊延伸PCR進行定點突變得到含有突變后基因的重組質 粒祀T28a-a巧Bmv,將其分別轉化至E. COl i化21進行表達,獲得突變體口4VNAGK獲得所述突 變體的方法,具體地是:
            [0010] (1)突變表達載體的構建
            [0011] 通過分析N-乙酷谷氨酸激酶的3D結構W及同源序列的比對,確定74位的異亮氨酸 I為目的突變為點,設計突變實驗,將該位點的異亮氨酸突變為鄉氨酸VdW祀T28a-argB質 粒為模版,設計引物,通過重疊延伸PCR進行定點突變得到的突變基因 argBmvW及載體 祀T28a分別用EcoRI與Sail核酸內切酶進行雙酶切后于16°C連接;然后將連接產物直接轉 化到E. COl i JM109菌株,提取重組質粒進行測序。
            [0012] (2)含突變體的基因工程菌的獲得
            [OOU] 制備E.coli化2UDE3)感受態,將測序正確的重組質粒祀T28a-argBi74v轉化到感 受態E.COIi化21細胞中,篩選轉化子。
            [0014] (3)N-乙酷谷氨酸激酶活力測定
            [0015] 酶活測定方法:3血反應液中含595mmol/L Tris-肥Kp冊.0),20mmol/L N-乙酷谷 氨酸,20mmol/L MgCl2,20mmol/L ATP二鋼鹽,149mmol/L NH20H ?肥I及適量粗酶液。于37°C 反應化后,加入ImL反應終止液(l.Omol/L肥I含5%化CI3 ?細20,4%S氯乙酸)終止反應。 離屯、,取上清測定N-乙酷谷氨酸氧目虧酸的光吸收值A540。
            [0016] 酶活力單位定義為1個國際單位化)等于每分鐘內生成Uimol產物N-乙酷谷氨酸氧 月虧酸所需要的酶量。
            [0017] (4)野生型和突變體的酶活與動力學常熟的測定
            [0018] 將重組E. COli化21培養后破細胞,取上清即為粗酶液,將野生酶和突變酶經Ni柱 純化后測定酶活力與蛋白濃度得到比酶活,通過改變底物N-乙酷谷氨酸(NAG)的濃度W及 運用雙倒數法測得Km,Vm與Kcat的值。
            【具體實施方式】
            [0019] 實施例1突變表達質粒的構建及重組E.COli化21菌株的獲得
            [0020] 根據Coirnebacterium crenatum SYPA5-5的ar濁基因序列,設計N-乙酷谷氨酸激 酶編碼基因的兩頭引物,再根據待突變的氨基酸位點來設計PCR點突變中間引物:
            [0021 ]利用重疊延伸PCR體外擴增獲得突變基因。
            [0022] 用于定點突變的引物為:
            [0023] Par濁 F:5'-CGCGAATTCATGAATGACTTGATCAAAG-3'(EcoRI)
            [0024] Par濁 R:5 '-CGCGTCGACTTACAGTTCCCCATCCTTG-3 '(SalI)
            [00巧]Par濁I74V Fm: 5,-CGGTGGTGGACCTCAGGTTTCTGAGATGC-3 '
            [00%] Par濁I74V Rm: 5 '-GCATCTCAGAAACCTGAGGTCCACCACCG-3 '
            [0027]提取純齒棒桿菌桿菌SYPA5-5基因組為模板;
            [002引 PCR反應條件:95 °C預變性5min,95 °C變性30s,58°C退火30s,72°C延伸60s,30個循 環;72°C延伸5min,。將所得突變基因片段與克隆載體祀T-2&1分別用EcoRI與Sail核酸內切 酶進行雙酶切,膠回收后將兩者混合,加入T4連接酶,于16°C過夜連接,轉化至E. COli JM109,經過氨節青霉素抗性平板篩選,挑取陽性轉化子,進行雙酶切驗證,將重組質粒命名 為祀T28a-a巧Bmv并送至上海生物工程公司測序。
            [00巧]將測序正確的重組質粒再轉化至E.COli BL2UDE3)感受態細胞,獲得重組E.COli 化21菌株
            [0030] 實施例2突變體N-乙酷谷氨酸激酶的表達及Ni-NTA純化
            [0031] 取凍管保藏的重組子接種至含卡那霉素 (終濃度為50iig/mL)的LB培養基中,37°C 振蕩培養過夜,按1 %接種量轉接,37 °C培養至OD約0.6-0.8,加人IPTG至終濃度為1mmol/L, 16°C過夜誘導表達。將過夜誘導表達的菌液于1000化/min,4°C離屯、15min,收集菌體,用 TriS-肥I (抑8.0)緩沖液懸浮菌體,超聲波破碎細胞,然后經0.45皿濾膜過濾,選用表達載 體祀T-2姑中含有細i S-Tag,過Ni-NTA純化NAGK,將獲得純的NAGK酶蛋白經SDS-PAGE分析, 檢測到一條分子量約為36kDa的特異性條帶,純的NAGK酶用于蛋白濃度與酶活的測定,得到 比酶活。
            [0032] 實施例3野生酶和突變酶的催化常數比較
            [0033] 將上一步得到的純酶液進行酶促反應:酶促反應總體積為3mL,含595mmol/L Tris-HCUp 服.0),20mmol/L N-乙酷谷氨酸,20mmol/L MgCl2,20mmol/L ATP 二鋼鹽, 149mmol/L N出OH ? HCI及適量粗酶液;于37°C反應化后,加入ImL反應終止液(l.Omol/L 肥I含5%化Cl3 ?細20,4%S氯乙酸)終止反應;離屯、,取上清測定N-乙酷谷氨酸氧目虧酸的光 吸收值A540。通過改變底物N-乙酷谷氨酸(NAG)的濃度W及運用雙倒數法測得Km,Vm與Kcat 的值。得到的結果如表1所示:N-乙酷谷氨酸激酶突變體I74VNAGK催化效率化cat/Km)由野生 型的513mM-Vin-i提高到843mM-Vin-i,因此突變體酶的催化效率更高,更利于精氨酸的合 成。
            [0034] 實施例4野生型和突變體的熱穩定性比較
            [0035] 為了測定野生酶和突變酶對溫度的耐受性,將已經純化的酶于37°C水浴不同的時 間后按上述方法測殘余酶活力,考察其熱穩定性。將未經37°C水浴的酶活設為100%,得到 酶的熱穩定性曲線。結果如表1所示:N-乙酷谷氨酸激酶突變體口 4VNAGK的熱穩定性比野生 型(CgNAGK)的也有所提高。野生酶的半衰期是36h,突變體口 4VNAGK的半衰期是52h。
            [0036] 本發明所述的突變突變體口 4VNAGK的催化效率相比突變之前有了明顯的提高,提 高了 1.64倍,結果表明,在關鍵位點突變氨基酸,可W獲得優于野生型的突變體,運種策略 可W廣泛應用于酶學性質的改進。
            [0037] 表1野生型和突變體的動力學參數及其半衰期 [00;3 引
            【主權項】
            1. 一種催化效率提高的N-乙酰谷氨酸激酶突變體,其特征在于,將鈍齒棒桿菌來源的 N-乙酰谷氨酸激酶第74位的異亮氨酸I突變為纈氨酸V。2. 權利要求1所述突變體的編碼基因,其特征在于:其核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。3. 權利要求1所述突變體的應用,其特征在于,將權利要求2所述的基因導入鈍齒棒桿 菌中,用于改善精氨酸的合成效率;但不限于應用于改善精氨酸的合成。
            【文檔編號】C12N15/54GK105838689SQ201610285765
            【公開日】2016年8月10日
            【申請日】2016年5月3日
            【發明人】饒志明, 徐美娟, 張景景, 楊套偉, 張顯, 葛小勛
            【申請人】江南大學
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