本發明屬于獸用醫藥生物技術領域，具體涉及一種豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清的制備方法。
背景技術：
豬傳染性胃腸炎（transmissible gastroenteritis of swine，TGE）是由豬傳染性胃腸炎病毒（TGEV）引起豬的一種高度接觸性消化道傳染病，以嘔吐、水樣腹瀉和脫水為特征。OIE將其列為B類動物疫病.。豬傳染性胃腸炎對首次感染的豬群造成的危害尤為明顯。在短期內能引起各種年齡的豬100%發病，病勢依日齡而異，日齡越小，病情愈重，死亡率也愈高，2周齡內的仔豬死亡率達90-100%。康復仔豬發育不良，生長遲緩，在疫區的豬群中，患病仔豬較少，但斷奶仔豬有時死亡率達50%。而豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清是目前主要應用于鑒別、檢驗、診斷的蛋白類物質，此免疫球蛋白（抗體）是一種能攻擊異己物質（抗原）并促進嗜中性粒細胞和巨噬細胞吞噬免疫球蛋白——抗原復合物的蛋白質，因此它們在清除細菌和病毒中起著重要作用。
技術實現要素：
本發明的目的在于提供一種用兔或豚鼠制備豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清的方法。
為實現上述目的，本發明采用如下技術方案：
一種豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清的制備方法，包括以下步驟：
1) 篩選豬傳染性胃腸炎病毒抗原抗體陰性的動物作為實驗動物，對每只實驗動物進行免疫接種：
用豬傳染性胃腸炎病毒抗原進行基礎免疫：對每只實驗動物皮下或肌肉注射0.5-2mL豬傳染性胃腸炎病毒抗原進行基礎免疫；
用豬傳染性胃腸炎病毒滅活疫苗進行3-5次免疫：基礎免疫7--10天后對每只實驗動物進行皮下或肌肉注射豬傳染性胃腸炎病毒滅活疫苗進行3-5次免疫接種，每次免疫接種的時間間隔為7-10天，第1次接種量為1-3頭份，以后每次接種量比上一次增加2-3頭份或者做倍增接種；
2）最后一次免疫后28-42天，無菌采集實驗動物血清，以細胞中和抗體效價檢測法檢測，確認血清抗體為陽性且細胞中和抗體效價在1：512以上，即收獲豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清。收集的豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清經過輻照、過濾后抽樣做無菌檢驗、支原體檢驗、外源病毒檢驗等步驟，將無細菌、霉菌、支原體、外源病毒污染的免疫動物血清進行分裝、凍干后，再次抽樣檢驗，確認無污染的陽性血清凍存備用。
所述實驗動物為小鼠、豚鼠或兔。作為實驗用的動物，首先采集其血清檢測，驗證其均不具有豬傳染性胃腸炎病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬瘟病毒、豬細小病毒、豬Ⅱ型圓環病毒、豬偽狂犬病毒、口蹄疫病毒等的抗原、抗體。
所述步驟1）的免疫為多點免疫，所述多點免疫為2點、3點或4點免疫。
所述步驟2) 無菌采集實驗動物血清的具體操作為：采集實驗動物血液，在室溫下靜置0.5-2h，然后在2-8℃冷藏1-2h，在3000-3500r/min離心10-15min，在無菌環境下分離血清。
本發明所述中和抗體效價的測定方法如下：
S1： 將采集的實驗動物血清在56℃下滅活30min，然后用維持液對血清做倍比稀釋，得到不同稀釋度的血清，每個稀釋度的血清分別與豬傳染性胃腸炎病毒抗原于37℃環境下中和60min以上，得到中和液；
S2：用細胞板培養ST細胞，當ST細胞生長24小時以上，細胞密度達到致密單層時，棄去培養液，取0.1mL上述中和液接種于細胞板上，每個稀釋度的血清中和液分別接種6孔細胞，同時設不中和的病毒陽性對照細胞6孔和接種維持液的陰性對照細胞6孔；
S3：將細胞板置于37℃的CO2培養箱中培養120h，并每天觀察細胞病變情況，以細胞不產生病變的最高稀釋度為陽性血清的中和抗體效價。
所述步驟S1的維持液為DMEM維持液。
所述步驟S1的豬傳染性胃腸炎病毒抗原的濃度為200TCID50/0.1mL。
所述步驟S1的倍比稀釋，稀釋至血清與維持液的比例1:512以上。
所述步驟S1每個稀釋度的血清與豬傳染性胃腸炎病毒抗原等量混合。
所述細胞板為96孔細胞板。
本發明采用以上技術方案，首先用豬傳染性胃腸炎病毒抗原對實驗用動物進行基礎免疫，再用豬傳染性胃腸炎病毒滅活疫苗對實驗用動物進行3-5次免疫，而后無菌采集動物血清，以細胞中和抗體效價檢測法檢測，確認血清抗體為陽性且細胞中和抗體效價在1：512以上，即收獲豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清。本發明首次免疫采用豬傳染性胃腸炎病毒抗原，接下來的3-5次免疫采用豬傳染性胃腸炎病毒滅活疫苗，其中活抗原是為了加強細胞免疫，滅活疫苗是為了更好地提高抗體水平。
本發明所涉及的陽性血清是利用豬傳染性胃腸炎病毒和實驗動物兔、豚鼠，按照一定免疫程序免疫接種制備高免血清作為樣品，通過對實驗動物采血分離血清，血清經過輻照、過濾、檢驗、分裝、凍干等工藝過程，并最終用于鑒別、檢驗和診斷過程中。本發明方法不僅降低了成本，也減小了用豬制備陽性血清因同源動物而引起的同源其他外源病毒污染的風險，為豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清的制備提供了新的思路。
具體實施方式
本發明的實驗動物為豚鼠或兔。選用的豚鼠為350-400g、符合國家規定的清潔級實驗動物，選用的兔為2.25--3.0Kg、符合國家規定的清潔級實驗動物。作為實驗用的動物，首先采集其血清檢測，驗證其均不具有豬傳染性胃腸炎病毒、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬瘟病毒、豬細小病毒、豬Ⅱ型圓環病毒、豬偽狂犬病毒、口蹄疫病毒等的抗原、抗體。
本發明豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清的制備方法，包括以下步驟：
1) 預實驗：
篩選豬傳染性胃腸炎病毒抗原抗體陰性的動物作為實驗動物，對每只實驗動物進行免疫接種：
用豬傳染性胃腸炎病毒抗原進行基礎免疫：對每只實驗動物皮下或肌肉注射0.5-2mL豬傳染性胃腸炎病毒抗原進行基礎免疫；
用豬傳染性胃腸炎病毒滅活疫苗進行3-5次免疫：基礎免疫7--10天后對每只實驗動物進行皮下或肌肉注射豬傳染性胃腸炎病毒滅活疫苗進行3-5次免疫接種，每次免疫接種的時間間隔為7-10天，第1次接種量為1-3頭份，以后每次接種量比上一次增加2-3頭份或者做倍增接種；
所述免疫為2點、3點或4點免疫；
最后1次免疫后每隔4-7天采血一次，用細胞中和抗體效價檢測法，做相對定量的檢測（血清做1:128、1:256、1:512、1:1024......等對倍的稀釋），以確定細胞中和抗體效價測定在1:512以上的收獲血清時間，為最后1次免疫后的28-42天；
2）正式試驗：
重復以上對實驗動物的免疫程序，并全部采集最后1次免疫后28--42天的免疫動物血清（具體操作為：最后一次免疫后28-42天，無菌采集實驗動物血液，在室溫下靜置0.5-2h，然后在2-8℃冷藏1-2h，在3000-3500r/min離心10-15min，在無菌環境下分離血清），以細胞中和抗體效價檢測法檢測，確認血清抗體為陽性且細胞中和抗體效價在1：512以上，即收獲豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清。收集的豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清經過輻照、過濾后抽樣做無菌檢驗、支原體檢驗、外源病毒檢驗等步驟，將無細菌、霉菌、支原體、外源病毒污染的免疫動物血清進行分裝、凍干后，再次抽樣檢驗，確認無污染的陽性血清凍存備用。
其中，中和抗體效價的測定方法如下：
S1： 將采集的實驗動物血清在56℃下滅活30min，然后用DMEM維持液對血清做倍比稀釋（稀釋至血清與維持液的比例1:512以上），得到不同稀釋度的血清，每個稀釋度的血清分別與濃度為200TCID50/0.1mL的豬傳染性胃腸炎病毒抗原等量混合，于37℃環境下中和60min以上，得到中和液；
S2：用96孔細胞板培養ST細胞，當ST細胞生長24小時以上，細胞密度達到致密單層時，棄去培養液，取0.1mL上述中和液接種于細胞板上，每個稀釋度的血清中和液分別接種6孔細胞，同時設不中和的病毒陽性對照細胞6孔和接種維持液的陰性對照細胞6孔；
S3：將細胞板置于37℃的CO2培養箱中培養120h，并每天觀察細胞病變情況，以細胞不產生病變的最高稀釋度為陽性血清的中和抗體效價。
實施例1
一種豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清的制備方法，包括以下步驟：
1) 選用350-400g豚鼠，并且其為符合國家規定的清潔級實驗動物，同時滿足豬傳染性胃腸炎病毒抗原抗體陰性，然后用TGEV活毒抗原0.5mL對豚鼠進行首免，10天后再用TGEV滅活疫苗對豚鼠進行5次免疫，第一次1頭份，第2--5次接種量均比前次增加2頭份，免疫時間間隔7天；
2) 最后一次免疫后33-35天，無菌采集豚鼠血清，將收集到的血清在56℃下滅活30min，然后用DMEM維持液對血清做倍比稀釋（血清做1:512、1:1024、1:2048、1:4096......等倍比稀釋），每個稀釋度的血清分別與濃度為200TCID50/0.1mL的TGEV抗原等量混合，于37℃環境下中和60min以上，得到中和液；
3) 用細胞板培養ST細胞，當生長24-小時以上，密度達到致密單層時，棄去培養液，取0.1mL上述中和液接種于細胞板上，每個稀釋度的血清中和液分別接種6孔細胞，同時設不中和的病毒陽性對照細胞6孔和接種維持液的陰性對照細胞6孔；
4) 將細胞板置37℃的CO2培養箱中培養120h，并每天觀察細胞病變情況，以細胞不產生病變的最高稀釋度為陽性血清的中和抗體效價，收集該中和抗體效價的血清即為豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清。
實施例2
一種豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清的制備方法，包括以下步驟：
1) 選用350-400g豚鼠，并且其為符合國家規定的清潔級實驗動物，同時滿足豬傳染性胃腸炎病毒抗原抗體陰性，然后用TGEV活毒抗原0.6ml對豚鼠進行首免，10天后再用TGEV滅活疫苗對豚鼠進行3次免疫，第一次2頭份，第2、3次接種量均比前次增加3頭份，免疫時間間隔9天；
2) 最后一次免疫后36-38天，無菌采集豚鼠血清，將收集到的血清在56℃下滅活30min，然后用DMEM維持液對血清做倍比稀釋（血清做1:512、1:1024、1:2048、1:4096......等倍比稀釋），每個稀釋度的血清分別與TGEV抗原于37℃環境下中和60min以上，得到中和液；
3) 用細胞板培養ST細胞，當生長近48小時，密度達到致密單層時，棄去培養液，取0.2mL上述中和液接種于細胞板上，每個稀釋度的血清中和液分別接種6孔細胞，同時設不中和的病毒陽性對照細胞6孔和接種維持液的陰性對照細胞6孔；
4) 置37℃的CO2培養箱中培養120h，并每天觀察細胞病變情況，以細胞不產生病變的最高稀釋度為陽性血清的中和抗體效價，收集該中和抗體效價的血清即為豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清。
實施例3
1)選用2.25-3.0kg的兔，并且其為符合國家規定的清潔級實驗動物，同時滿足豬傳染性胃腸炎病毒抗原抗體陰性，TGEV活毒抗原0.8ml對兔進行首免，10天后再用TGEV滅活疫苗對兔進行4次免疫，第一次3頭份，第2--4次接種量分別為6、10、15頭份，免疫時間間隔10天；
2) 最后一次免疫后32-33天，無菌采集兔血清，將收集到的血清在56℃下滅活30min，然后用DMEM維持液對血清做倍比稀釋（血清做1:512、1:1024、1:2048、1:4096......等倍比稀釋），每個稀釋度的血清分別與TGEV抗原于37℃環境下中和60min以上，得到中和液；
3) 用細胞板培養ST細胞，當生長36小時以上，密度達到致密單層時，棄去培養液，取0.2mL上述中和液接種于細胞板上，每個稀釋度的血清中和液分別接種6孔細胞，同時設不中和的病毒陽性對照細胞6孔和接種維持液的陰性對照細胞6孔；
4) 置37℃的CO2培養箱中培養120h，并每天觀察細胞病變情況，以細胞不產生病變的最高稀釋度為陽性血清的中和抗體效價，收集該中和抗體效價的血清即為豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清。
實施例4
1) 選用2.25-3.0kg的兔，并且其為符合國家規定的清潔級實驗動物，同時滿足豬傳染性胃腸炎病毒抗原抗體陰性，然后用TGEV活毒抗原0.7ml對兔進行首免，10天后再用TGEV滅活疫苗對兔進行5次免疫，第一次2頭份，第2--5次接種量分別為5、8、11、15頭份，免疫時間間隔8天；
2) 最后一次免疫后34-36天，無菌采集兔血清，將收集到的血清在56℃下滅活30min，然后用DMEM維持液對血清做倍比稀釋（血清做1:512、1:1024、1:2048、1:4096......等倍比稀釋），每個稀釋度的血清分別與TGEV抗原于37℃環境下中和60min以上，得到中和液；
3) 用細胞板培養ST細胞，當生長36-48小時，密度達到致密單層時，棄去培養液，取0.2mL上述中和液接種于細胞板上，每個稀釋度的血清中和液分別接種6孔細胞，同時設不中和的病毒陽性對照細胞6孔和接種維持液的陰性對照細胞6孔；
4) 置37℃的CO2培養箱中培養120h，并每天觀察細胞病變情況，以細胞不產生病變的最高稀釋度為陽性血清的中和抗體效價，收集該中和抗體效價的血清即為豬傳染性胃腸炎病毒陽性血清。