專利名稱：：包裝容器用塑料片的制作方法
技術領域：
：本發明涉及一種用于將生魚肉類等收納物包裝在容器中以長時間保存的包裝容器用塑料片。
背景技術：
：遠洋漁業捕獲的或在遠方飼養的金槍魚、鰹魚等大型魚類在捕獲或飼養這些魚的捕魚船上或在飼養地被除去內臟等后，將完整的或切割成塊的魚在低溫下冷凍，并以冷凍魚體的狀態保管/運輸到消費地。一方面，以生鮮魚肉的狀態保管/運輸到消費地的情況下，如專利文獻1、專利文獻2中所述，以往，在氧氣透過率低的塑料膜制造的袋子的袋內處于減壓狀態下，將完整的或切割成塊的魚肉等裝入袋內，并密封包裝后，將該包裝袋、或同樣包裝的多個包裝袋收納在發泡苯乙烯制的容器等中，并用冰等冷卻劑使其處于低溫狀態。但是，以往內包裝使用氣體屏蔽性塑料膜制造的袋子，而作為外包裝使用發泡苯乙烯制的容器等，并以生鮮魚肉的狀態保管/運輸的方法，不能抑制生魚肉上包裝前殘留的、或包裝后附著的細菌等微生物的繁殖，因此此外，用真空包裝機將塑料膜制的袋內進行脫氣時，由于包裝體內減壓，例如促進了水滴從生金槍魚塊流出，這成為促進新細菌產生的原因。生肉類等的情況下也會產生同樣的現象。專利文獻1:日本特開2000-335599號7>沖艮專利文獻2:日本特開2006-14630號公沖艮
發明內容發明要解決的問題于是，本發明的目的在于改良以往的包裝容器用塑料膜或片，提供一種包裝容器用塑料片，例如在以生鮮魚肉的狀態保管/運輸的情況下，該包裝容器用塑料片可降低包裝前殘留在生魚肉類等收納物上或包裝后附著在生魚肉類等收納物上的微生物的活性，同時還抑制該微生物的繁殖。解決問題的方法為了解決上述問題，權利要求1的發明涉及一種包裝容器用塑料片，其包含二層結構的塑料片，該二層結構的塑料片是將作為內層的含有抗氧化劑和抗菌劑的聚乙烯膜和作為外層的高氣體屏蔽性的聚乙烯醇膜疊層而成的。關于權利要求2的發明，其中，上述聚乙烯膜含有抗氧化劑和抗菌劑，且抗氧化劑和抗菌劑的總含量相對于每100重量份聚乙烯膜為120重量份。關于權利要求3的發明，其中，上述二層結構塑料片中的聚乙烯膜的厚度為50200孩i米、聚乙烯醇膜的厚度為1230微米。權利要求4的發明涉及一種包裝容器用塑料片，其包含三層結構的塑料片，該三層結構的塑料片是將作為內層的含有抗氧化劑和抗菌劑的聚乙烯膜、作為中間層的高氣體屏蔽性的聚乙烯醇膜、和作為外層的聚丙烯膜疊層而成的。關于權利要求5的發明，其中，上述聚乙烯膜含有抗氧化劑和抗菌劑，且抗氧化劑和抗菌劑的總含量相對于每100重量份聚乙烯膜為120重量份。關于權利要求6的發明，其中，上述三層結構塑料片中聚乙烯膜的厚度為50200微米、聚乙烯醇膜的厚度為1230微米、聚丙烯膜的厚度為1550微米。關于權利要求7的發明，其中，上述聚乙烯膜還含有防腐劑。權利要求8的發明涉及一種包裝容器，其用上述包裝容器用塑料片制成袋子，并在其周邊的一部分設有能開封的開口部，且使該開口部形成為通過拉鎖(:777于一)可進行密封，而在無收納物收納時該袋成為扁平且薄的可折疊狀態。發明的效果按照本發明，由于與生魚肉類等收納物接觸的二層結構塑料片的內層使用含有抗氧化劑的聚乙烯膜，則可通過滲出到內層的內面上的部分抗氧化劑的抗氧化作用，來抑制由包裝前殘留在收納物上的二氧化碳等衍生的4氧等的產生，例如，可顯著降低需氧性細菌的活性，其結果可增強抗菌作用。另外，由于含有抗菌劑，通過滲出到內層的內面上的部分抗氧化劑和抗菌劑的協同效果，則可抑制包裝后附著在收納物上的細菌等微生物的繁此外，由于聚乙烯膜具有較好的透明度，故可以從外部看到收納物的新鮮程度的狀況。而且，由于聚乙烯膜具有良好的水分隔離特性，故不用擔心從收納物自然滲出的水滴、其它水分透過內層釋放到外部。本發明的第1實施方式涉及二層結構塑料片。由于在二層結構塑料片的外層使用高氣體屏蔽性的聚乙烯醇膜，則氣體屏蔽性和透明度優異，于是在因收納物發生腐敗而產生氣體的情況下，不用擔心該氣體透過外層釋放到外部、或外部的空氣等透過外層侵入內層，而且可以由外層的外部看到收納物的新鮮程度的狀況。由于使用的聚乙烯膜中，相對于每100重量份聚乙烯膜(表示作為膜原料的聚乙烯樹脂100重量份。以下相同)含有合計總含量為120重量份的抗氧化劑和抗菌劑，可在不影響聚乙烯膜特性的條件下在短時間內殺滅附著在收納物上的微生物，從而可以進一步防止收納物發生腐敗。當使用抗菌劑和抗氧化劑的含有比例即抗菌劑抗氧化劑在1/1001:100范圍的聚乙烯膜時，抗氧化劑和抗菌劑能發揮協同效果。通常，使用抗菌劑和抗氧化劑的含有比例在1:1/101:10范圍的聚乙烯膜時，可以均衡地發揮抗氧化作用和抗菌作用，可以得到不限于收納魚肉類等收納物種類的高通用性包裝容器用塑料片，因此優選。通過在外層使用氧氣透過率為1.0cc/m2d.atm以下的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜，則可進一步降低因收納物發生腐敗而產生的氣體透過外層釋放到外部、或外部的空氣等透過外層侵入內層的可能性，從而可以顯著降低需氧性微生物的活性，并可進一步抑制其繁殖。尤其優選使用氧氣透過率為0.50.7cc/m2.d.atm的高氣體屏蔽性的聚乙蜂醇膜。在二層結構塑料片中，由于聚乙烯膜厚度為50200微米、聚乙烯醇膜厚度為1230微米，因此可均衡地發揮含有抗氧化劑和抑菌劑的聚乙烯膜具有的抑制微生物繁殖的效果和聚乙烯醇膜具有的氣體屏蔽效果，從而可得到通用性高的包裝容器用塑料片。本發明的第2實施方式涉及三層結構塑料片。該包裝容器用塑料片包含三層結構塑料片，所述三層結構塑料片是將作為內層的含有抗氧化劑和抗菌劑的聚乙歸膜、作為中間層的高氣體屏蔽性的聚乙烯醇膜、和作為外層的聚丙烯膜疊層而成的，由于聚丙烯膜具有良好的機械強度、透明度，且著色性優異，對于來自外層外部的沖擊的耐受性強、可長時間使用、并可在外部表面進行印刷，而且可以從外層的外部目視收納物的新鮮程度的狀況。因此，用該三層結構塑料片進行制袋而成的包裝容器，通過實現其自身外部包裝的作用，則可以兼具外包裝的功能。而且，通過聚丙烯膜的水分隔離特性，可以防止外部的濕氣透過外層到達中間層的聚乙烯醇膜。由此，可以避免中間層的聚乙烯醇膜因濕氣影響而導致的氣體屏蔽效果的喪失。由于三層結構塑料片中聚丙烯膜的厚度為15~50微米，故能夠均衡地發揮抑制附著在收納物上的微生物繁殖的效果、氣體屏蔽效果、耐沖擊效果和耐用效果，還可以進一步得到通用性高的包裝容器用塑料片。在二層及三層結構塑料片中，與收納物接觸的內層聚乙烯膜中還可含有防腐劑。這樣，滲出到內層的內面上的部分防腐劑可防止微生物的侵入、發育、增殖，通過抗氧化劑和抗菌劑與防腐劑的協同效果，可以防止生魚肉類等商品價值尤其體現在新鮮程度上的收納物發生腐敗。由于使用相對于每100重量份聚乙烯膜(表示作為膜原料的聚乙烯樹脂100重量份。以下相同)含有總含量120重量份的抗氧化劑、抗菌劑及防腐劑的聚乙烯膜，則可以在不損壞聚乙烯膜特性的條件下得到能保持新鮮度地長時間保存收納物的包裝容器用塑料片。使用抗氧化劑和抗菌劑的總含量與防腐劑含量的含有比率在1:1/101:10范圍的聚乙烯膜時，可以發揮抗氧化劑和抗菌劑與防腐劑的協同效果。通常，使用將上述含有比率在1:1/51:5范圍的聚乙烯膜時，由于抗氧化劑和抗菌劑與防腐劑的協同效果增強，由此可均衡地發揮抗氧化作用、抗菌作用和防腐作用，從而可以得到適用于生魚肉類等商品價值尤其體現在新鮮程度上的收納物、且通用性高的包裝容器用塑料片，因此優選。本發明涉及的包裝容器是將上述包裝容器用塑料片制成袋子，并在其在周邊的一部分設有能開封的開口部，該開口部通過密封件可進行密封，該包裝容器在無收納物收納時形成為扁平且薄的可折疊狀態，因此在長時間保存收納物的過程中，可形成密封袋，可抑制收納物發生腐敗和產生難聞的氣味，并能阻止由收納物產生的水分、氣體等泄露到外部，還可從外部肉眼觀察到收納物，而且便于預先將多個收納物收納保存儲備起來以備使用，從而可以使收納物的收納處理更為容易。為本發明的第1實施方式的截面圖。為本發明的第2實施方式的截面圖。為用本發明的第2實施方式的三層結構片材進行制袋而成的包裝容器的立體圖。為示出在1(TC^(TC下生金槍魚中的細菌活菌數測定結果的圖。為示出硫化氫的透過量測定結果的圖。為示出腐敗成分的透過量測定結果的圖。為示出生金槍魚中的K值測定結果的圖。符號說明1本發明的第1實施方式的包裝容器用塑料片2、12聚乙烯膜3、13聚乙烯醇膜5抗氧化劑、抗菌劑11本發明的第2實施方式的包裝容器用塑料片14聚丙烯膜6本發明的包裝容器7袋主體8拉鎖9上部塑料片9'下部塑料片具體實施例方式下面，基于附圖對本發明的包裝容器用塑料片的最佳方式進行說明。圖1示出本發明的包裝容器用塑料片的第1實施方式的截面圖。圖2示出本發明的包裝容器用塑料片的第2實施方式的截面圖。而且在全部附圖中，相同的構成部分用相同的符號表示。圖1所示的第1實施方式的包裝容器用塑料片1，是在作為內層的厚度50200微米、優選厚度100微米的聚乙烯膜2上，疊層作為外層的厚度1230微米、優選12微米的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜3而構成的二層結構片。在聚乙烯膜2中混合有抗氧化劑和抗菌劑，還可添加防腐劑。而且，抗氧化劑和抗菌劑在圖中示意性地示出，用同一符號5表示(添加防腐劑的情況也相同)。關于抗氧化劑和抗菌劑以及防腐劑的含有比率，三者是在上述含有比率范圍內，并優選根據將上述二層結構片材制袋作為包裝容器的情況下具體收納物的性狀、例如、生魚肉類的種類、大小等來改變三者的比例。例如，為了抑制腐敗發生，在使用于特別需要強力的抗氧化力的收納物時，優選提高抗氧化劑的含有比率，在使用于特別需要強力的抗菌力的收納物時，優選提高抗菌劑的含有比率，在使用于特別需要強力的防腐力的收納物時，優選提高防腐劑的含有比率。而且，收納物并不限于生魚肉類，還可以是米、麥等谷物、人或動物的尸體。關于抗氧化劑，優選根據制成包裝容器時具體收納物的性狀，含有選自類黃酮、丹寧、花青苷、異黃酮等多酚、兒茶素、維他命C、維他命E等中的一種、或多種的組合。關于抗菌劑，優選根據制成包裝容器時具體收納物的性狀，舍有選自銀離子類抗菌劑、苯酚醚類殺菌劑、天然抗菌劑、甘油脂肪酸酯等中的一種、或多種的組合。關于防腐劑，優選根據作為包裝容器時具體收納物的性狀，含有例如，從尼泊金(A，X乂，Paraben)等防腐劑中選出的一種、或多種的組合。關于聚乙烯膜2中抗氧化劑和抗菌劑的含量，相對于每100重量份的聚乙烯膜，抗氧化劑和抗菌劑的總含量為120重量份，優選310重量份。此外，關于抗菌劑和抗氧化劑的含有比例即抗菌劑抗氧化劑在1:1/1001:100范圍、優選1:1/101:10范圍。還含有防腐劑的情況下，通常優選每100重量份聚乙烯膜含有抗氣化劑、抗菌劑及防腐劑的總含量為120重量份、特別優選310重量份。而且，使用低密度聚乙烯膜作為聚乙烯膜時，由于熱封性和透明度好，因此用制袋機制袋時，易于使袋周邊熔粘，并可以容易地得到可確保具有高密封強度且透明度高的包裝容器，因此優選。由于在聚乙烯膜2上，疊層有作為外層的氧氣透過率1.0cc/m2datm以下、優選0.5~0.7cc/m2.datm的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜3,故可以得到氣體屏蔽特別高、且具有高透明度、高品質的包裝容器用塑料片。而且，使用拉伸聚乙烯醇膜作為高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜時，可得到超氣體屏蔽性的二層結構片材，因此優選。需要說明的是,對于二層結構片材全體的厚度、內層及外層的厚度沒有特別限制，可根據使用二層結構片材的包裝容器的種類、目的來任意改變。例如，用于包裝一條生金槍魚的情況下，優選聚乙烯膜厚度為50200微米、聚乙烯醇膜厚度為1230微米、二層結構片材的全體厚度為62220微米。圖2所示的第2實施方式的包裝容器用塑料片11,是在作為內層的厚度50200微米、優選厚度100微米的聚乙烯膜12上，疊層作為中間層的厚度1230微米、優選厚度12微米的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜13、和作為外層的厚度1550微米、優選厚度20微米的聚丙烯膜14而形成的三層結構片材。聚乙烯膜中抗氧化劑和抗菌劑的含量與上述第1實施方式的含量相同，每100重量份的聚乙烯膜含有抗氧化劑和抗菌劑的總量為120重量份、優選310重量份。此外，抗菌劑和抗氧化劑的含有比例即抗菌劑:抗氧化劑為1:1/1001:100的范圍、優選1:1/101:10的范圍。使用低密度聚乙烯膜作為聚乙烯膜的情況優選與上述第1實施方式的情況相同。進一步含有防腐劑的情況下，與上述第1實施方式相同，通常優選每100重量份聚乙烯膜含有抗氧化劑、抗菌劑及防腐劑的總量為120重量份、特別優選310重量份。使用拉伸聚乙烯醇膜作為中間層疊層的高氣體屏蔽性的聚乙烯醇膜13時，優選與作為上述第1實施方式的外層疊層的聚乙烯醇膜相同。在聚乙烯醇膜13的中間層上疊層有作為外層的聚丙烯膜14。使用拉伸聚丙烯膜作為聚丙烯膜時，可得亞'j機械強度進一步提高的三層結構片材，因jtM尤選。需要說明的是,三層結構片材的總厚度、內層、中間層及外層的厚度沒有特別限制，可根據使用三層結構片材的包裝容器的種類、目的來任意改變這些厚度。例如，用作一條生金槍魚的包裝容器的情況下，優選聚乙烯膜12的厚度為50200微米、聚乙烯醇膜13的厚度為1230微米、聚丙烯9膜14的厚度為1550微米、三層結構片材的總厚度為77280微米。圖3為示出用上述第2實施方式的包裝容器用塑料片11進行制袋，并加工成包裝一條100kg級的生金槍魚的收納保存袋的包裝容器6的立體圖。袋主體7在保管時是薄的扁平狀且可折疊的，使用時只要打開拉鎖8，抓住被折疊的形成表面和背面的上部、下部塑料片9、9'進行上下抻拉使其張開即可，可容易地形成形態上穩定的箱型保存容器。因此，不僅收納物的收納操作很容易，而且保存容器本身還具有箱子的效果。實施例下面通過實施例對本發明進行詳細說明。實施例1使用檢測體Nol作為本發明的實驗片，所述檢測體Nol為圖2所示的第2實施方式的三層結構塑料片，其大小約為50mmx50mm，內層是厚度約O.lmm的聚乙烯膜，中間層是厚度約0.012mm的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜、作為外層是厚度約0.020mm的聚丙烯膜，三層結構片材的總厚度約0.132mm。使用低密度聚乙烯膜作為內層的聚乙烯膜，相對于每100重量份聚乙歸膜，在低密度聚乙烯膜中分散混合有5重量份兒茶素作為抗氧化劑、5重量份銀離子類抗菌劑作為抗菌劑。圖2示意性地示出內層的聚乙烯膜中分散混合有5重量份抗氧化劑和5重量份抗菌劑的狀態。作為實驗方法，采用依據"JISZ2801(抗菌加工品、抗菌性實驗方法、抗菌效果)"的方法，在該聚乙烯膜與收納物接觸的一面接種大腸桿菌作為實驗菌，接種后馬上對每個實驗片進行測定，測定-1中測定的活菌數為2.4x105、測定-2中測定的活菌數為2.6x105、測定-3中測定的活菌數為2.5x105、平均活菌數為2.5x105。樣品采用在12小時后和24小時后的樣品。對檢測體Nol在35。C下經過12小時后進行測定時，測定-1測定-3及平均值的菌數均減少至低于10。同樣，24小時后測定時，基本檢測不到活菌數。該實施例1的檢測體Nol的大腸桿菌活菌數測定結果示于表1。使用檢測體No2作為與實施例1相比較的比較例1,關于檢測體No2，在與檢測體Nol相同的三層結構塑料片內層的低密度聚乙烯膜中，每100重量份聚乙烯膜分散混合有IO重量份銀離子類抗菌劑作為抗菌劑。此外，關于剛剛接種大腸桿菌后的檢測體No2的活菌數，測定-l測定-3及平均值均與才全測體Nol相同。對4全測體No2在35'C下經過12小時后進行測定時，測定-1活菌數減少至低于80、測定-2活菌數減少至低于70、測定-3活菌數減少至低于90、平均值活菌數減少至低于80。同樣，24小時后測定時，測定-l測定-3及平均值的活菌數均減少至低于10。該比較例1的檢測體No2的大腸桿菌活菌數測定結果示于表1。使用檢測體No3作為與實施例1相比較的比較例2，關于檢測體No3，在與檢測體Nol相同的三層結構塑料片內層的低密度聚乙烯膜中，每100重量份聚乙烯膜分散混合有10重量份兒茶素作為抗氧化劑。此外，關于剛剛接種大腸桿菌后的檢測體No3的活菌數，測定-1測定-3及平均值均與檢測體Nol相同。對檢測體No3在35。C下經過12小時后進行測定時，測定-1活菌數為3.1xl02、測定-2活菌數為2.9x102、測定-3活菌數為3.4x102、平均值活菌數為3.1xl02。同樣，24小時后測定時，測定-l測定-3及平均值的活菌數均減少至低于10。該比較例2的檢測體No3的大腸桿菌活菌數測定結果示于表1。使用檢測體No4作為與實施例1相比較的比較例3，關于4全測體No4,在與檢測體Nol相同的三層結構塑料片內層的低密度聚乙烯膜中，不含有抗氧化劑或抗菌劑等添加劑。此外，關于剛剛接種大腸桿菌后的檢測體No4的活菌lt，測定-1測定-3及平均值均與4全測體Nol相同。對檢測體No4在35。C下經過12小時后進行測定時，測定-1活菌數為2.8x106、測定-2活菌數為2.6x106、測定-3活菌數為3.0x106、平均活菌數為2.8xl06。同樣，24小時后測定時，測定-1活菌數為.4xl07、測定-2活菌數為1.4xl07、測定-3活菌數為1.3x107、平均值活菌數為1.4x107。該比較例3的4企測體No4的大腸桿菌活菌數測定結果示于表1。實施例2使用檢測體Nol作為本發明的實驗片，檢測體Nol為圖2所示的第2實施方式的三層結構塑料片，其大小為約50mmx50mm、內層是厚度約O.)mm的聚乙烯膜、中間層是厚度約0.012mm的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜、外層是厚度約0.020mm的聚丙烯膜，三層結構片材總厚度約0.132mm。使用低密度聚乙烯膜作為內層的聚乙烯膜，相對于每100重量份聚乙烯膜，在低密度聚乙烯膜中分散混合有5重量份兒茶素作為抗氧化劑、5重量份銀離子類抗菌劑作為抗菌劑。實驗方法與上述實施例1相同，采用依據"JISZ2801(抗菌加工品、抗菌性實驗方法、抗菌效果)，，的方法，在該聚乙烯膜與收納物接觸的一面接種金黃色葡萄球菌作為實驗菌，接種后馬上對每個實驗片進行測定，測定-1的活菌數為1.2xl0、測定-2的活菌數為1.5xlO、測定-3的活菌數為1.2xl05、平均值活菌數為1.3xl05。樣品采用在12小時后和24小時后的樣品。對4全測體Nol在35。C下經過12小時后進行測定時，測定-l測定-3及平均值的活菌數均減少至低于10。同樣，24小時后測定時，基本檢測不到活菌數。該實施例2的檢測體Nol的金黃色葡萄球菌的活菌數測定結果示于表1。寸吏用4全測體No2作為與實施例2相比4交的比4交例4,關于纟企測體No2，在與檢測體Nol相同的三層結構塑料片內層的低密度聚乙烯膜中，每100重量份聚乙烯膜中分散混合有10重量份銀離子類抗菌劑作為抗菌劑。此外，關于剛剛接種金黃色葡萄球菌后檢測體No2的活菌數，測定-1測定-3及平對檢測體No2在35'C下經過12小時后進行測定時，測定到的測定"活菌數低于100、測定-2活菌數減少至低于90、測定-3活菌數減少至低于100、平均值活菌數減少至低于100。同樣，24小時后測定時，測定-l測定-3及平均值的活菌數均減少至低于10。該比較例4的檢測體No2的金黃色葡萄球菌的活菌數測定結果示于表使用4企測體No3作為與實施例2相比較的比較例5,關于纟企測體No3，在與檢測體Nol相同的三層結構塑料片內層的低密度聚乙烯膜中，每100重量份聚乙烯膜中混合分散有10重量份兒茶素作為抗氧化劑。此外，關于剛剛接種金黃色葡萄球菌后的檢測體No3的活菌數，測定-l測定-3及平均值均與才企測體Nol相同。對4企測體No3在35。C下經過12小時后進行測定時，測定到的測定-1的活菌數為1.8><102、測定-2的活菌數為1.6><102、測定-3的活菌數為1.6x102、平均值活菌數為1.7x102。同樣，24小時后測定時，測定-1~測定-3及平均值的活菌數均減少至低于10。該比較例5的檢測體No3的金黃色葡萄球菌的活菌數測定結果示于表1。在與檢測體Nol相同的三層結構塑料片內層的低密度聚乙烯膜中，不含有抗氧化劑或抗菌劑等添加劑。此外，關于剛剛接種金黃色葡萄球菌后檢測體No4的活菌數，測定-1~測定-3及平均值均與檢測體Nol相同。對檢測體No4在35。C下經過12小時后進行測定時，測定到的測定-1活菌數為1.6x106、測定-2活菌數為1.4x106、測定-3活菌數為12x106、平均值活菌數為1.4x106。同樣，24小時后測定時，測定到的測定-l活菌數為2.5xl06、測定-2活菌數為2.2x106、測定-3活菌數為2.3x106、平均值活菌數為2.3xl06。該比較例6的檢測體No4的金黃色葡萄球菌的活菌數測定結果示于表表1實驗菌測定實驗片每個實驗片上的活菌數測定-1測定-2測定-3平均值大腸桿菌剛剛接種后2.4x1052.6x1052.5x1052.5x10535'C經過12小時后檢測體Nol<10<10<10<10檢測體No2<80<70<90<80檢測體No33.1x1022.9x1023.4x1023.1x102檢測體No42.8x1062.6x1063.0x1062.8x10635'C經過24小時后檢測體Nol———_檢測體No2<10<10<10<10檢測體No3<10<10<10<10檢測體No41.4x1071.4x1071.3x1071.4x107金黃色葡萄球菌剛剛接種后1.2x1051.5x1051.2x1051.3x10535'C經過12小時后檢測體Nol<10<10<10<10檢測體No2<100<90<100<100檢測體No31.8x1021.6x1021.6x1021.7x102檢測體No41.6x1061.2x1061.4x10635'C經過24小時后檢測體Nol————檢測體No2<10<10<10<10檢測體No3<10<10<10<10檢測體No42.5x1062.2x1062.3x1062.3x106實施例3使用檢測體Nol作為本發明的實驗片，檢測體Nol為圖2所示的第2實施方式的三層結構塑料片，其大小為約50mmx50mm、內層是厚度約130.1mm的聚乙烯膜，中間層是厚度約0.012mm的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜，外層是厚度約0.020mm的聚丙烯膜，三層結構片材全體厚度約0.132mm。使用低密度聚乙烯膜作為內層的聚乙烯膜，相對于每IOO重量份聚乙烯膜，低密度聚乙烯膜中混合分散有5重量份兒茶素作為抗氧化劑、5重量份銀離子類抗菌劑作為抗菌劑。作為實驗方法與上述實施例1相同，采用依據"JISZ2801(抗菌加工品、抗菌性實驗方法、抗菌效果)"的方法，在該聚乙烯膜與收納物接觸的一面接種大腸桿菌作為實驗菌，接種后馬上對每個實驗片進行測定，活菌數為2.3x105。樣品采用24小時后的樣品。對檢測體Nol在35。C下經過24小時后進行測定時，活菌數減少至低于10。該實施例3的檢測體Nol的大腸桿菌活菌數測定結果示于表1。使用下述二層結構塑料片作為與實施例3相比較的比較例7，該二層結構塑料片的內層是厚度約O.lmm的聚乙烯膜、而作為其外層是厚度約0.015mm的尼龍膜、總厚度約0.115mm、其大小約50mmx50mm。內層的聚乙烯膜中不含有抗氧化劑或抗菌劑等添加劑。而且，比4交例7的剛剛接種后的大腸桿菌的活菌數與檢測體Nol相同。對比較例7在35。C下經過24小時后進行測定時，大腸桿菌的活菌數增至1.3xl071.5xl07該比較例7的大腸桿菌的活菌數測定結果示于表2。實施例4使用檢測體Nol作為本發明的實驗片，檢測體Nol為圖2所示的第2實施方式的三層結構塑料片，其大小約為50mmx50mm,內層是厚度約0.1mm的聚乙烯膜，中間層是厚度約0.012mm的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜，外層是厚度約0.020mm的聚丙烯膜，三層結構片材的全體厚度約0.132mm。使用低密度聚乙烯膜作為內層的聚乙烯膜，相對于每IOO重量份聚乙烯膜，低密度聚乙烯膜中混合分散有5重量份兒茶素作為抗氧化劑、5重量份銀離子類抗菌劑作為抗菌劑。作為實驗方法與上述實施例1相同，采用依據"JISZ2801(抗菌加工品、抗菌性實驗方法、抗菌效果)"的方法，在該聚乙烯膜與收納物接觸的一面接種金黃色葡萄球菌作為實驗菌，接種后馬上對每個實驗片進行測定，活14菌數為1.3x105。對于樣品采用24小時后的樣品。對檢測體Nol在35。C下經過24小時后進行測定時，活菌數減少至低于10。該實施例4的檢測體Nol的金黃色葡萄球菌的活菌數測定結果示于表2。使用下述二層結構塑料片作為與實施例4相比較的比較例8,該二層結構塑料片的內層為厚度約O.lmm的聚乙烯膜，外層是厚度約0.015mm的尼龍膜，總厚度約0.115mm、大小約50mmx50mm。內層的聚乙烯膜中不含有抗氧化劑或抗菌劑等添加劑。此外，關于剛剛接種金黃色葡萄球菌后比較例1的活菌數，與檢測體No1相同。對比較例8在35。C下經過24小時后進行測定時，金黃色葡萄球菌的活菌數增至2.0xl062.6xl06。該比較例8的金黃色葡萄球菌的活菌數測定結果示于表2。[表2]<table>tableseeoriginaldocumentpage15</column></row><table>實施例5用檢測體Nol制包裝容器作為本發明的實驗包裝容器，該檢測體Nol制包裝容器是將圖2所示的第2實施方式的三層結構塑料片進行制袋得到的，內層是厚度約O.lmm的聚乙烯膜，中間層是厚度約0.012mm的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜，外層是厚度約0.020mm的聚丙烯膜，三層結構塑料片總厚度約0.132mm，袋的大小為長約30cmx寬約50cm。使用低密度聚乙烯膜作為內層的聚乙烯膜，相對于每100重量份聚乙烯膜，低密度聚乙烯膜中混合分散有5重量份兒茶素作為抗氧化劑、5重量份銀離子類抗菌劑作為抗菌劑。作為實驗方法，在檢測體Nol制包裝容器內收納生金槍魚塊約7kg，測定lg生金槍魚中細菌的活菌數。樣品采用在開始時、24小時后、48小時后及72小時后的樣品。在10。C15。C下，實驗剛剛開始后，測定lg生金槍魚中的活菌數低于101，24小時后比開始時減少一些，48小時后活菌數略有增加但仍保持低于開始時，72小時后活菌數約為101。收納在該實施例5的檢測體Nol制包裝容器內的生金槍魚中細菌的活菌數的測定結果示于圖4。使用生魚肉類用普通包裝袋作為與實施例5相比較的比較例9,該普通包裝袋的大小大致與檢測體相同，其由不含抗氧化劑或抗菌劑等添加劑、厚度約O.lmm的聚碳酸酯片材進行制袋得到。作為實驗方法，與檢測體Nol制包裝容器相同，在比較例9內收納約7kg生金槍魚塊，測定lg生金槍魚中細菌的活菌數。對于樣品采用在開始時、24小時后、48小時后及72小時后的樣品。在10。C15。C下，實驗剛剛開始后，測定lg生金槍魚中的活菌數低于101，與Nol制包裝容器的活菌數大致相同，24小時后與開始時的活菌數大致相同，48小時后略增至約101，72小時后活菌數迅速增至103104之間。收納在該比較例9內的生金槍魚中細菌的活菌數測定結果示于圖4。使用生魚肉類用普通包裝袋作為與實施例5相比較的比較例10,該普通包裝袋的大小大致與檢測體Nol制包裝容器相同，其由不含抗氧化劑或抗菌劑等添加劑、厚度約O.lmm的聚氯乙烯片材制袋得到。作為實驗方法，與檢測體Nol制包裝容器相同，在比較例10內收納約7kg生金槍魚塊，測定lg生金槍魚中細菌的活菌數。對于樣品采用在開始時、24小時后、48小時后及72小時后的樣品。在1(TC15。C下，實驗剛剛開始后，測定lg生金槍魚中的活菌數低于10'，與檢測體Nol制包裝容器的活菌數下大致相同，24小時后增加至1()'102之間，48小時后活菌數迅速增至103104之間、72小時后迅速增至105106之間。該比較例10內收納的生金槍魚中細菌的活菌數測定結果示于圖4。實施例6實施例5在10。C15。C下進行細菌的測定實驗，而實施例6與實施例5的區別是在10。C2(TC下進行細菌的測定實驗，其它本發明的實驗包裝容器、實驗方法、樣品均與實施例5相同。于10。C2(TC下在實驗剛剛開始后，測定lg生金槍魚中的活菌數低于IO1，24小時后稍微增加至10'1C^之間，48小時后測定發現活菌數增至102103之間、72小時后增至104105之間。該實施例6的檢測體Nol制包裝容器內收納的生金槍魚中細菌的活菌數測定結果示于圖5。與實施例5相比較的比較例9在10。C15。C下進行細菌的測定實驗，而與實施例6相比較的比較例11在10°C20°C下進行細菌的測定實驗，除此之外和與實施例5相比較的比較例9相同。于10。C2(TC下在實驗剛剛開始后，測定發現lg生金槍魚中的活菌數低于10',與用檢測體Nol制包裝容器時的活菌數基本相同，24小時后增加至10"1()S之間，48小時后活菌數迅速增至103104間、72小時后增至105106間。該比較例11內收納的生金槍魚中細菌的活菌數測定結果如圖5所示。與實施例5相比較的比較例10在10。C15。C下進行細菌的測定實驗，而與實施例6相比較的比較例12則在1(TC20。C下進行細菌的測定實驗，除此之外和與實施例5相比較的比較例10的情況相同。于10。C2(TC下在實驗剛剛開始后，測定發現lg生金槍魚中的活菌數低于IO1，與用檢測體Nol制包裝容器時的活菌數基本相同，24小時后增加至103104之間，48小時后活菌數迅速增至105106間、72小時后增至106107間。該比較例12內收納的生金槍魚中細菌的活菌數測定結果示于圖5。實施例7用檢測體Nol制包裝容器作為本發明的實驗包裝容器，該檢測體Nol制包裝容器是將圖2所示的第2實施方式的三層結構塑料片制袋得到的，其內層是厚度約O.lmm的聚乙烯膜，中間層是厚度約0.012mm的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜，外層是厚度約0.020mm的聚丙烯膜，三層結構塑料片的總厚度約0.132mm，袋的大小為長約15cmx寬約25cm。使用低密度聚乙烯膜作為內層的聚乙烯膜，對于每100重量份聚乙烯膜，低密度聚乙烯膜中混合分散有5重量份兒茶素作為抗氧化劑、5重量份銀離子類抗菌劑作為抗囷刑。作為實驗方法，在檢測體Nol制包裝容器內收納生肉約100g,再將密封的檢測體Nol制包裝容器裝入長寬高約30cm的容器中，用檢測管測定從密封容器中的檢測體Nol制包裝容器中透過的作為腐敗氣體之一的硫化氫的透過量。對于樣品采用在第1第8天的樣品。在常溫下測定硫化氬的透過量時，在第1第8天的整個期間測定濃度(ppm)ltj直為0。用檢測管測定該實施例7的硫化氫透過量的測定結果示于圖6。使用普通生魚肉類用包裝袋作為與實施例7相比較的比較例13，該包裝袋是用厚度約0.2mm、不含抗氧化劑或抗菌劑等添加劑的聚氯乙烯片材制袋得到的，袋的大小與檢測體Nol制包裝容器基本相同。實驗方法及樣品與實施例7的情況相同。在常溫下測定硫化氳的透過量時，測定出的濃度數值是第15天為Oppm、第7天約0.3ppm、第8天約1.25ppm。用檢測管測定該比較例13的硫化氫透過量的測定結果示于圖6。使用普通生魚肉類用包裝袋作為與實施例7相比較的比較例14，該包裝袋是用下述二層結構塑料片制袋得到的，該二層結構塑料片的內層是厚度約0.06mm的聚乙烯膜，外層是厚度約0.005mm的尼龍膜，總厚度約0.065mm,內層的聚乙烯膜中不含有抗氧化劑或抗菌劑等添加劑，袋的大小與檢測體Nol制包裝容器基本相同。實驗方法及樣品與實施例7的情況相同。在常溫下測定^L化氫的透過量時，測定的濃度數值是第12天為Oppm、第3天約3.5ppm、第4天約llppm、第5天約17.5ppm、第7天約25ppm、第8天約16ppm。用檢測管測定該比較例14的硫化氫透過量的測定結果示于圖6。使用普通生魚肉類用包裝袋作為與實施例7相比較的比較例15,該包裝袋是用厚度約0.05mm、不含抗氧化劑或抗菌劑等添加劑的聚乙烯膜進行制袋得到的，袋的大小與檢測體Nol制包裝容器基本相同。實驗方法及樣品與實施例7的情況相同。在常溫下測定硫化氬的透過量時，測定的濃度數值是第12天為Oppm、第3天約1.7ppm、第4天約18.1ppm、第5天約100ppm、第7天約400ppm、第8天約300ppm。18用檢測管測定該比較例15的硫化氫透過量的測定結果示于圖6。實施例8用檢測體Nol制包裝容器作為本發明的實驗包裝容器，該檢測體Nol制包裝容器是將圖2所示第2實施方式的三層結構塑料片進行制袋得到的，其內層是厚度約O.lmm的聚乙烯膜，中間層是厚度約0.012mm的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜，外層是厚度約0.020mm的聚丙烯膜，三層結構塑料片的總厚度約0.132mm,袋子的大小為長約15cmx寬約25cm。使用低密度聚乙烯膜作為內層的聚乙烯膜，對于每100重量份聚乙烯膜，低密度聚乙烯膜中混合分散有5重量份兒茶素作為抗氧化劑、5重量份銀離子類抗菌劑作為抗菌劑。作為實驗方法，在檢測體Nol制包裝容器內收納生肉約100g,再將密封的檢測體Nol制包裝容器裝入長寬高約30cm的容器中，用GCMS測定從密封容器中的檢測體Nol制包裝容器中透過的作為腐敗成分之一的二曱基二硫醚、2-丁酮、二曱基硫醚、乙醇、甲基硫醇的透過量。樣品采用第1第8天的樣品。在常溫下測定上述腐敗成分的透過量時，在第1第8天的整個期間測定濃度(ppm)數值為0。用GCMS測定的該實施例8的上述腐敗成分透過量的測定結果示于圖7。使用普通生魚肉類用包裝袋作為與實施例8相比較的比較例16，該包裝袋是用厚度約0.2mm、不含抗氧化劑或抗菌劑等添加劑的聚氯乙烯片材進行制袋得到的，袋子的大小與檢測體Nol制包裝容器基本相同。實驗方法及樣品與實施例8的情況相同。在常溫下測定上述腐敗成分的透過量時，測定發現第1天腐敗成分檢出量數值為O、第2天腐敗成分檢出量數值約180、第3天腐敗成分檢出量數值約300、第4天腐敗成分檢出量數值約380、第5天腐敗成分檢出量數值約500、第78天腐敗成分檢出量數值約800。用GCMS測定的該比較例16的上述腐敗成分透過量的測定結果進于圖7。使用普通生魚肉類用包裝袋作為與實施例8相比較的比較例17，該包裝袋是用二層結構塑料片制袋得到的，該二層結構塑料片的內層為厚度約0.06mm的聚乙烯膜，外層是厚度約0.005mm的尼龍膜，總厚度約0.065mm，內層的聚乙烯膜中不含有抗氧化劑或抗菌劑等添加劑，袋的大小與檢測體Nol制包裝容器基本相同。實驗方法及樣品與實施例8的情況相同。在常溫下測定上述腐敗成分的透過量時，測定發現第1天腐敗成分檢出量數值為O、第2天腐敗成分檢出量數值約250、第3天腐敗成分檢出量數值約500、第4天腐敗成分檢出量數值約550、第5天腐敗成分檢出量數值約480、第7天腐敗成分檢出量數值約630、第8天腐敗成分檢出量數值約620。用GCMS測定的該比較例17的上述腐敗成分透過量的測定結果示于圖7。使用普通生魚肉類用包裝袋作為與實施例8相比較的比較例18,該包裝袋使用厚度約0.05mm、不含抗氧化劑或抗菌劑等添加劑的聚乙烯膜制袋得到的，袋的大小與檢測體Nol制包裝容器基本相同。實驗方法及樣品與實施例8的情況相同。在常溫下測定上述腐敗成分的透過量時，測定發現第1天腐敗成分檢出量數值為0、第2天腐敗成分檢出量數值約260、第3天腐敗成分檢出量數值約550、第4天腐敗成分檢出量數值約600、第5天腐敗成分檢出量數值約1300、第7天腐敗成分檢出量數值約3500、第8天腐敗成分檢出量數值約4000。用GCMS測定的該比較例18的上述腐敗成分透過量的測定結果示于圖7。實施例9用檢測體Nol制包裝容器作為本發明的實驗包裝容器，該檢測體Nol制包裝容器是將圖2所示的第2實施方式的三層結構塑料片制袋得到的，其內層是厚度約O.lmm的聚乙烯膜，中間層是厚度約0.012mm的高氣體屏蔽性聚乙烯醇膜，外層是厚度約0.020mm的聚丙烯膜，三層結構塑料片的總厚度約0.132mm，袋的大小為長約30cmx寬約50cm。使用低密度聚乙烯膜作為內層的聚乙烯膜，對于每100重量份聚乙烯膜，低密度聚乙烯膜中混合分散有5重量份兒茶素作為抗氧化劑、5重量份銀離子類抗菌劑作為抗菌劑。作為實驗方法，在檢測體Nol制包裝容器內收納生金槍魚塊約7kg，測定生金槍魚的新鮮程度指標K值。樣品采用72小時后的樣品。需要說明的是,K值以肌苷酸及次黃嘌呤的總含量與腺苷三磷酸的代謝產物腺苷二磷酸、腺芬一磷酸、肌苷酸及次黃。票呤的總量的比值表示，通常K值低于20%的生魚肉類可以以生魚片的狀態食用，K值為20%以上的生魚肉類可以煮熟食用，K值為50%以上的生魚肉類不適合作為食品材料。在1(TC15。C下經72小時后，測定K值約為10%。該實施例9的檢測體Nol制包裝容器內收納的生金槍魚中的K值測定結果示于圖8。使用普通生魚肉類用包裝袋作為與實施例9相比較的比較例19，該包裝袋是用厚度約O.lmm、不含抗氧化劑或抗菌劑等添加劑的聚碳酸酯片材制袋得到的，袋的大小與檢測體Nol制包裝容器基本相同。作為實驗方法與檢測體Nol制包裝容器相同，在比較例19內收納生金槍魚塊約7kg，測定生金槍魚的新鮮程度指標K值。對于樣品采用72小時后的樣品。在10。C15。C下經過72小時后，測定K值約為36%。該比較例19內收納的生金槍魚中的K值測定結果示于圖8。使用普通生魚肉類用包裝袋作為與實施例9相比較的比較例20，該包裝袋是用厚度約O.lmm、不含抗氧化劑或抗菌劑等添加劑的聚氯乙烯片材制袋得到的，袋的大小與檢測體Nol制包裝容器基本相同。作為實驗方法與檢測體Nol制包裝容器相同，在比較例20內收納生金槍魚塊約7kg，測定生金槍魚的新鮮程度指標K值。對于樣品采用72小時后的樣品。在1(TC15。C下經過72小時后，測定K值約為75%。該比較例20內收納的生金槍魚中的K值測定結果示于圖8。工業實用性本發明適用于在較長時間能保持其新鮮程度地運輸及保管生魚肉類等的用途中。權利要求1.一種包裝容器用塑料片，其包含二層結構的塑料片，所述二層結構的塑料片是將作為內層的含有抗氧化劑和抗菌劑的聚乙烯膜、和作為外層的高氣體屏蔽性的聚乙烯醇膜疊層而成的。2.根據權利要求1所述包裝容器用塑料片，其中，上述聚乙烯膜含有抗氧化劑和抗菌劑，且抗氧化劑和抗菌劑的總含量相對于每100重量份聚乙烯膜為120重量^分。3.根據權利要求1或2所述包裝容器用塑料片，其中，上述二層結構所謂塑料片中所述聚乙烯膜的厚度為50200微米，所述聚乙烯醇膜的厚度為1230微米。4.一種包裝容器用塑料片，其包含三層結構的塑料片，所述三層結構的塑料片是將作為內層的含有抗氧化劑和抗菌劑的聚乙烯膜、作為中間層的高氣體屏蔽性的聚乙烯醇膜和作為外層的聚丙烯膜疊層而成的。5.根據權利要求4所述包裝容器用塑料片，其中，上述聚乙烯膜中含有抗氧化劑和抗菌劑，且抗氧化劑和抗菌劑的總含量相對于每100重量份聚乙烯膜為120重量份。6.根據權利要求4或5所述包裝容器用塑料片，其中，上述三層結構塑料片中所述聚乙烯膜的厚度為50200微米，所述聚乙烯醇膜的厚度為1230微米，所述聚丙烯膜的厚度為1550微米。7.根據權利要求16中任一項所述包裝容器用塑料片，其中，上述聚乙烯膜中還含有防腐劑。8.—種包裝容器，其是用權利要求17中任一項所述的包裝容器用塑料片制成袋子，并在其周邊的一部分設有能開封的開口部，該開口部通過拉鎖形成為可開封狀態，該包裝容器在無收納物收納時形成為扁平且薄的可折疊狀態。全文摘要本發明提供一種包裝容器用塑料片，該塑料片在以生鮮魚肉的狀態保管/運輸的情況下，可降低生魚肉類等收納物在包裝前殘留或包裝后附著的微生物的活性，同時還可以抑制該微生物的繁殖。該包裝容器用塑料片由三層結構的塑料片構成，所述三層結構的塑料片是內層疊層有含抗氧化劑和抗菌劑的聚乙烯膜、中間層疊層有高氣體屏蔽性的聚乙烯醇膜、外層疊層有聚丙烯膜。文檔編號B32B27/30GK101687584SQ200780053公開日2010年3月31日申請日期2007年5月11日優先權日2007年5月11日發明者石山啟二郎申請人:J-化學株式會社