介導細胞吸附和信號傳遞的細胞表面分子的制作方法

            文檔序號:1115608閱讀:278來源:國知局
            專利名稱:介導細胞吸附和信號傳遞的細胞表面分子的制作方法
            技術領域
            本發明涉及新型哺乳動物細胞表面分子;組成這些分子的多肽及其片段;包含這些多肽片段和免疫球蛋白片段的融合多肽;編碼這些多肽和片段的基因;帶有這些基因的載體;導入了這些載體的轉化體;可與這些多肽或包含這些多肽的細胞表面分子反應的抗體;產生這些抗體的雜交瘤;包含這些多肽片段或融合多肽的藥用組合物;包含這些抗體的藥用組合物;轉基因小鼠;及基因敲出(knockout)小鼠。
            背景技術
            活體哺乳動物具有免疫應答系統可排除侵入該活體的致病微生物(病毒、細菌、寄生蟲等)或外源生物體(二者在下文中均稱“抗原”)。這樣的免疫應答系統之一稱之為天然免疫應答系統,另一為獲得性免疫應答系統。前者是排除機制,包括吞噬細胞(多形核白細胞、單核細胞、巨噬細胞等)的吞噬,自然殺傷(NK)細胞的攻擊,及非特異性識別如補體對抗原的調理。后者,獲得性免疫應答系統的排除機制由獲得抗原特異性的淋巴細胞(主要是T細胞和B細胞)(即活化的淋巴細胞)完成。已獲抗原特異性的B細胞產生針對抗原的特異性抗體攻擊存在于細胞外的抗原。獲得抗原特異性的T細胞(稱為活化的T細胞)被分為輔助T細胞和細胞毒T細胞(細胞毒淋巴細胞,CTL)。輔助T細胞調節B細胞的分化和抗體的產生,并與吞噬細胞合作破壞抗原。后者,CTL自己攻擊被病毒感染的細胞及其他(實驗醫學增刊,“生物科學術語文庫,免疫”,Yodosha,第14-17頁(1995))。
            T細胞之獲得抗原特異性(即T細胞的活化)始于T細胞識別由抗原呈遞細胞(APC)如巨噬細胞、B細胞、或樹突細胞呈遞的抗原。抗原呈遞細胞將加工的抗原納為己有,并使之與主要組織相容性復合物(MHC)結合從而呈遞之。T細胞識別通過其細胞膜表面存在的T細胞受體(TCR)和CD3抗原的復合物(TCR/CD3復合物)而由抗原呈遞細胞所呈遞的加工后抗原從而接受細胞活化(或獲得特異性)的初級信號。
            然而,TCR/CD3復合物介導的初級信號單獨不足以活化T細胞,而將導致非應答性或克隆無反應性,從而使細胞不能對隨后收到的任何刺激產生反應。白細胞介素2(IL-2)的自分泌是T細胞活化,分化為抗原特異性T細胞克隆,并增殖所必需的。在克隆無反應性中,T細胞由于不產生IL-2和無細胞分裂而被滅活。即,伴隨產生如IL-2這樣的細胞因子的T細胞活化作用在TCR/CD3復合物傳遞的第一信號之后需要第二信號。該第二信號稱為協同刺激信號(costimulatory signal)。
            T細胞接受該第二信號并將之傳入細胞,方式是抗原呈遞細胞上除MHC以外的分子與T細胞表面除TCR/CD3復合物的分子相互作用(細胞粘附)。該第二信號避免細胞無反應性(克隆無反應性)并活化這些細胞。
            盡管抗原呈遞細胞和T細胞這樣的淋巴細胞之間第二信號傳遞的機制中有些部分尚未詳細闡明,但是到目前為止的研究已揭示第二信號傳遞中一個重要的因素是CD28(亦名Tp44,T44或9.3抗原),主要表達在T細胞和胸腺細胞上的一種細胞表面分子,與CD80(亦名B7-1,B7,BB1,或B7/BB1),一種表達在抗原呈遞細胞(巨噬細胞單核細胞,樹突細胞,等)上的細胞表面分子,及與CD86(亦名B7-2或B70),也是一種抗原呈遞細胞表面分子,的相互作用(即通過這些分子相互結合而產生的細胞粘附)。而且,實驗亦說明細胞裂解性T淋巴細胞相關抗原4(CTLA-4)、(其表達被認為是依賴第二信號而增強)與CD80(B7-1)及CD86(B7-2)之間的相互作用(即經分子間結合而產生的細胞粘附)也是第二信號調節T細胞活化時的重要因素。換而言之,第二信號傳遞所調節的T細胞活化過程涉及至少CD28與CD80/CD86之間的相互作用,CTLA-4的表達增強,(這種增強被認為取決于上述相互作用),及CTLA-4與CD80/CD86之間的相互作用。
            CD28已知是T細胞活化和避免無反應性所必需的傳遞第二信號(協同刺激信號)的協同刺激分子。通過該分子與抗原呈遞細胞上的協同刺激分子,CD80(B7-1)和CD86(B7-2)的結合(分子間結合而致細胞粘附)所傳遞的第二信號穩定了Th1型細胞因子的mRNA并隨后促進T細胞產生大量Th1型細胞因子如IL-2,IFNγ,TNFα。CTLA-4表達由TCR/CD3傳遞的初級信號誘導,并由CD28與CD80之間的結合所傳遞的第二信號增強表達。已有人揭示CTLA-4接受這些信號后抑制T細胞功能這種作用正相反于CD28傳遞的第二信號引起的T細胞活化作用。
            人CD28和CTLA-4均為I型糖蛋白,分子量分別為44KD和41-43KD。均有免疫球蛋白樣區,屬于免疫球蛋白超家族,既有細胞粘附分子的功能又有信號傳遞分子的功能。
            人CD28以二硫鍵形成同型二聚體,而CTLA-4為單體。CD28和CTLA-4的基因均位于人類染色體的“2q33”和小鼠染色體的“1C”,均由4個外顯子組成。人CD28和CTLA-4分別由220和230個氨基酸組成,內含前導序列,它們之間的氨基酸同源性為20-30%。
            CD28和CTLA-4的配體在人和小鼠中為CD80(B7-1)和CD86(B7-2)。CTLA-4與兩種配體的親和力比CD28高約20倍。業已闡明在各動物種之間保守的氨基酸序列結構“MYPPPY(Met-Tyr-Pro-Pro-Pro-Tyr)”對于CD28和CTLA-4與CD80(B7-1)的結合很重要。亦有報道,當CD28受刺激時,PI3激酶(磷酸肌醇3激酶,PI3K)結合于CD28的一個部分序列“YMNM(酪氨酸-甲硫氨酸-天冬酰胺-甲硫氨酸)”的磷酸化酪氨酸殘基上,這一CD28在細胞間經這種“YxxM”結構進行的信號傳遞中起重要作用。更進一步,有報道稱CTLA-4在其胞質區也有一個YxxM的序列,即“YVKM(酪氨酸-纈氨酸-賴氨酸-甲硫氨酸)”,且受到刺激后,SYP與該序列結合。
            CD28特異性表達于胸腺細胞和外周血T細胞,CTLA-4特異性表達于活化的T細胞(細胞工程增刊,“粘附分子手冊”,Shujunsha,93-102頁(1994);同一書中120-136頁;實驗醫學增刊,“生物科學術語文庫,免疫”,Yodosha,94-98頁(1995);實驗醫學增刊,“生物科學術語文庫,細胞間信號傳導”,Yodosha,58-59頁(1997);Nihon Rinsho,55卷,6期,215-220頁(1997))。
            在T細胞功能的調節中(T細胞功能的活化和抑制中),復分子之間,如協同刺激分子(CD28,CD80(B7-1),CD86(B7-2)等和CTLA-4這種與上述分子互相作用的分子的相互作用,(換而言之經這些分子間結合而進行的細胞粘附)其重要性已被認識,并使人注意力轉移到這些分子與疾病之間的聯系,及通過調節這些分子的功能而治療疾病的方面。
            如上述,盡管某一活體活化了其獲得性免疫應答系統以對抗外源生物體的抗原,它仍有免疫耐受以便對自身成分(自身抗原)不顯示免疫應答。如果免疫耐受因某種原因被打破,對自身抗原產生免疫應答,自身抗原反應性T細胞將以上述相同的機制被誘導,而導致免疫異常,引起各種自身免疾病。
            換而言之,當某活體的免疫系統正常時,由于正常組織中未受刺激的抗原呈遞細胞(APC)不表達協同刺激分子,即使有與自身抗原起反應的自身抗原反應性T細胞存在,也均處于非應答狀態以維持免疫耐受。有人認為在免疫異常狀態下,更多自身抗原反應性T細胞由于非正常過量并持續表達協同刺激分子而活化并因此導致自身免疫病。
            近來從這一觀點出發,提出很多治療各種自身免疫病的嘗試,采取調節協同刺激信號的傳遞的方法,如上述CD28/CTLA-4與CD80/CD86之間的信號傳遞。
            有人發現CD80這樣作為CD28和CTLA-4之配體的協同刺激分子在自身免疫病病灶部位的抗原呈遞細胞中異常表達,所述自身免疫病如類風濕性關節炎,多發性硬化癥,自身免疫性甲狀腺炎,過敏性接觸型皮炎,慢性炎癥性皮膚病如扁平苔癬,和牛皮癬。很多人因這一發現而嘗試通過調節CD80的功能來治療各種自身免疫病。
            有人提議封閉CD80的功能,方法是用抗CD80的抗體,可相配CD80的CD28可溶性蛋白,可相配CD80的CTLA-4可溶性蛋白。特別是,基于這樣一個事實CTLA-4結合CD80的親和力比CD28高20倍或更多,在動物模型和臨床檢驗中進行了一些治療上的嘗試,所用為“可溶性CTLA-4”,含有“CTLA-4”的胞外區和人免疫球蛋白IgG1的Fc區的融合蛋白(CTLA-4-IgFc)(Nihon Rinsho,55卷,6期,215-220頁(1997))。
            如下文1至5所示,已報道CTLA-4-IgFc在自身免疫病的動物模型中的治療效果。
            1.在(NZB/NZW)F1小鼠(人系統性紅斑狼瘡(SLE)模型)中,自身抗體的產生和狼瘡腎炎的發作均由于發作前使用了CTLA-4-IgFc而受抑制,即使在發作后使用該藥也改善了病況(科學,125卷,1225-1227頁(1994))。
            2.在實驗性過敏性腦脊髓炎(EAE)這種多發性硬化癥(MS)的模型中,由于在免疫接觸種后立即短期使用CTLA-4-IgFc而使發作被阻止(臨床調查雜志,95卷,2783-2789頁(1995))。
            3.在NOD(非肥胖型糖尿病)小鼠這種胰島素依賴型糖尿病(IDDM)模型中,由于對2周齡或3周齡的雌性小鼠持續兩周施用CTLA-4-IgFc而使發病率顯著下降(實驗醫學雜志,181卷,1145-1155頁(1995))。
            4.在由腎小球基底膜免疫所致的大鼠腎炎這種Goodpasture′s腎炎模型中,因施用CTLA-4-IgFc而使癥狀大大改善(歐洲免疫學雜志,24卷,6期,1249-1254頁(1994))。
            5.在DBA/1小鼠的II型膠原蛋白誘導型關節炎(CIA)這種人類風濕性關節炎模型中,因在免疫接種時施用受試藥物而使關節炎的發作受到抑制,抗膠原蛋白的自身抗體IgG1和IgG2的產生也受抑制(歐洲免疫學雜志,26卷,2320-2328頁(1996))。
            上述實驗結果尚未詳細明確因協同刺激分子和相關分子之間的相互作用(即因這些分子間結合所致細胞粘附)而使T細胞活化的機制。其他未知分子有可能涉及該機制。
            發明公開如果弄清了上文所述淋巴細胞如T細胞活化所必需的第二信號傳遞過程中所涉及的經分子間結合導致的細胞粘附而活化淋巴細胞如T細胞的機制,以及弄清淋巴細胞功能的調節機制,和能介導該機制中所涉及的細胞粘附的已知或未知分子,能傳遞信號的已知或未知分子均能鑒別和定性。那么用于治療或預防各種疾病如上述自身免疫病,過敏性疾病,和炎癥性疾病的藥物將會得到開發。
            本發明的目的之一是鑒別同時具有介導該細胞粘附和信號傳遞這兩種功能的新型細胞表面分子,并澄清其結構和生物學特點。本發明的另一目的是通過應用新型分子或這些分子的抗體而提供可用于治療或預防各種自身免疫病和炎癥疾病的藥物。
            為了鑒別這些有用的分子,本發明人將注意力集中于以下事實淋巴細胞(如T細胞)在自身免疫病和過敏性疾病中起重要作用;細胞粘附是第二信號(協同刺激信號)從抗原呈遞細胞向淋巴細胞傳遞時所必需的。本發明人計劃分離并鑒別特異性地表達在淋巴細胞上并介導細胞粘附的細胞表面分子。
            本發明人獲得了針對表達在淋巴細胞表面的各種細胞表面分子的單克隆抗體,其是用上述淋巴細胞免疫動物而得;再用所獲單克隆抗體分離并鑒別所需介導細胞粘附的表面分子。具體方法詳見下文。
            本發明人首先給小鼠施用大鼠淋巴細胞系作為抗原,制備各種單克隆抗體(簡稱單抗)。然后,用所獲單抗與用作抗原的大鼠淋巴細胞反應,檢驗單抗對所給細胞的作用。結果發現一種單抗可強烈凝集大鼠淋巴細胞(此單抗命名為“JTT-1抗體”)。而且發現另一種單抗可強烈抑制由“JTT-1抗體”引起的大鼠淋巴細胞凝集(此單抗命名為“JTT.2抗體”)。
            由于“JTT-1抗體”所致大鼠淋巴細胞的凝集不受抑制于抗細胞間粘附分子-1(ICAM-1)的抗體或淋巴細胞功能相關抗原-1(LFA-1)的抗體,而這兩種抗原分子均是已知最具代表性的細胞表達的粘附分子,故本發明人認為這種凝集是由通過未知介導的細胞粘附的粘附分子的細胞粘附所致。
            由這兩種單抗每一所識別的細胞表面分子(命名為“JTT-1抗原”和“JTT.2抗原”)隨后被鑒別。分離并定性。
            首先,用“JTT-1抗體”和“JTT-2抗體”以熒光抗體技術在流式細胞儀上分析“JTT-1抗原”和“JTT.2抗原”在不同細胞上的表達模式。盡管在用刀豆蛋白A(ConA)這種絲裂原刺激胸腺細胞和脾細胞活化的活化的淋巴母細胞(活化的T淋巴母細胞、活化的B淋巴母細胞等)中,尤其是在活化的淋巴母細胞中,強烈表達“JTT-1抗原”和“JTT.2抗原”,而根本未受刺激的脾細胞幾乎未見表達(這些細胞于本文中有時稱為“靜息淋巴細胞”)。“JTT-1抗體”和“JTT-2抗體”每一所識別分子的表達模式幾乎一樣。
            將“JTT-1抗體”結合于吸附劑制備成親和層析柱,由“JTT-1抗體”捕獲的分子,即“JTT-1抗原”將從由上述大鼠淋巴細胞制備的可溶性細胞表面分子混合物中純化出來。經“JTT-1抗體”和“JTT-2抗體”免疫沉降并經SDS-PAGE分析純化的“JTT-1抗原”的分子量。結果發現“JTT-1抗體”和“JTT-2抗體”每一免疫沉降所得分子相同,且每種分子均為有不同糖鏈的同型二聚體。特別是,當N連接的糖鏈不經消化時,該分子在非還原狀態下測得為分子量約47KD的一種分子,在還原狀態下測得分子量分別約24KD和約28KD的兩種分子;當N連接的糖鏈是經消化的時,該分子在非還原狀態下測得為約36KD的一種分子,還原狀態下測得為約20KD的一種分子。
            用包被有純化“JTT-1抗原”的板分析大鼠胸腺細胞的吸附。結果,只有“JTT-1抗體”存在時,胸腺細胞顯著性吸附于板上(即吸附于“JTT-1抗原”);并在同時還有“JTT.2抗體”存在時,吸附顯著受抑,說明“JTT-1抗原”是介導細胞粘附的細胞表面分子。
            下一步,本發明人從大鼠、人和小鼠克隆了編碼“JTT-1抗原”的基因,并分析了它們的結構。
            首先,通過利用“JTT-1抗體”的采用淘選法的表達克隆法從ConA刺激的大鼠脾細胞衍生的淋巴母細胞制成的cDNA文庫中分離編碼全長“大鼠JTT-1抗原”的cDNA,用雙脫氧法測定其核苷酸序列而分離并鑒別出一種全新的大鼠基因。編碼全長“人JTT-1抗原”的基因亦分離自ConA刺激的人外周血淋巴細胞cDNA文庫,方法是用編碼所獲“大鼠JTT-1抗原”的基因作探針進行噬斑雜交,用雙脫氧法測其核苷酸序列而分離并鑒別出一種全新的人基因。類似地,編碼全長“小鼠JTT-1抗原”的cDNA分離自ConA刺激的小鼠脾細胞衍生的淋巴母細胞cDNA文庫,用雙脫氧法測定其核苷酸序列而分離并鑒別出一種全新小鼠基因。更進一步,編碼全長的上述“大鼠JTT-1抗原”之可替換的剪切變異體相似地分離自大鼠胸腺瘤細胞cDNA文庫,而用雙脫氧法測定其核苷酸序列而分離并鑒別出另一種全新大鼠基因。
            對分離的“人JTT-1抗原”cDNA編碼的氨基酸序列進行親水性分析發現“JTT-1抗原”為穿膜蛋白(細胞表面分子),由信號序列,一個有糖基化位點的胞外區,一個跨膜區和一個胞內區組成,與已知分子的同源性研究發現大鼠、人和小鼠的“JTT-1抗原”與包括細胞粘附分子在內的任何已知分子均無明顯同源性,說明它們是介導細胞粘附的新型細胞表面分子。
            對“人JTT-1抗原”的氨基酸序列進行基序查尋結果發現,“人JTT-1抗原”與上文所述“CD28”和“CTLA-4”結構相似,而CD28為淋巴細胞如T細胞的表面分子,其傳遞的協同刺激信號對于T細胞經細胞粘附的活化十分重要,CTLA-4也是淋巴細胞如T細胞的表面分子,與信號一同調節活化的淋巴細胞如活化T細胞的功能。
            結構相似點如下1.20或更多個包含半脫氨酸殘基在內的氨基酸殘基高度保守。
            2.作為配體結合區必需的脯氨酸重復序列“Pro-Pro-Pro(PPP)”在胞外區中為保守的。
            3.作為信號傳遞區必需的序列“Tyr-Xaa-Xaa-Met(YxxM)”(Xaa和X代表任意氨基酸)在胞漿區保守。
            編碼“小鼠JTT-1抗原”的基因座經熒光原位雜交(FISH)法發現是小鼠染色體上的“IC3”,這相同于小鼠“CD28”和“CTLA-4”的所在位點。
            下一步,考查調整“JTT-1抗原”的功能對自身免疫病和過敏性疾病的療效,方法是對實驗性過敏性腦脊髓炎(EAE)和腎小球基底膜(GBM)腎炎的模型大鼠施用上述“JTT-2抗體”進行實驗。結果發現兩種疾病模型動物的病理狀況顯著受抑,自身免疫病或過敏性疾病可通過調節“JTT-1抗原”的功能而進行治療。
            還發現抗“人JTT-1抗原”的單抗顯著增殖人外周血淋巴細胞,在有抗CD3單抗同時存在時此增殖進一步增強(CD3為使T細胞活化必需的T細胞上接受來自抗原呈遞細胞的初級信號的TCR/CD3復合物的組成成分),說明“JTT-1抗原”是涉及向淋巴細胞傳遞信號的細胞表面分子。
            更進一步,本發明人成功地生產了含有“人JTT-1抗原”的胞外區和人免疫球蛋白的Fc區的融合多肽。該融合多肽可作為藥物通過調節“JTT-1抗原”和/或其配體的功能而用于治療自身免疫病,過敏性疾病,和炎癥性疾病。
            而且,本發明人成功地制備了一種轉基因小鼠,其中轉入的基因可編碼其它動物種的“JTT-1抗原”。該轉基因小鼠可用于分析“JTT-1抗原”的具體功能,也可用于開發藥物以治療自身免疫病,過敏性疾病和炎癥性疾病。發明人還生成了一種基因敲出小鼠,其中編碼“小鼠JTT-1抗原”的內源性基因被滅活。此基因敲出小鼠也適用于上述目的。
            本發明涉及多肽,基因,抗體,載體,轉化體,藥用組合物,轉基因小鼠,基因敲出小鼠等,均相關于按上述分離并鑒別所得的新型哺乳動物“JTT-1抗原”。特別是,本發明如以下(1)至(36)所述。
            (1)一種組成具有以下特征的細胞表面分子的多肽(a)該細胞表面分子至少在胸腺細胞和絲裂原刺激的淋巴母細胞上表達,(b)一種與該細胞表面分子反應的抗體誘導發生在絲裂原刺激的淋巴母細胞之間的粘附,(c)一種與該細胞表面分子反應的抗體在有抗CD3抗體存在時誘導外周血淋巴細胞增殖,(d)該細胞表面分子在其胞外區氨基酸序列中有一部分為苯丙氨酸-天冬氨酸-脯氨酸-脯氨酸-脯氨酸-苯丙氨酸,且
            (e)該細胞表面分子在其胞質區的氨基酸序列中有一部分是酪氨酸-甲硫氨酸-苯丙氨酸-甲硫氨酸。
            (2)(1)多肽,包含SEQ ID NO2的氨基酸序列或包含其中一個或更多氨基酸被替代、缺失,或加入的SEQ ID NO2的氨基酸序列。
            (3)(1)多肽,其由在嚴格條件下與有SEQ ID NO1的核苷酸序列的DNA雜交的DNA編碼。
            (4)(1)多肽,包含與SEQ ID NO2的氨基酸序列有60%或更多同源性的氨基酸序列。
            (5)(1)至(4)中任何一個多肽,其中所說細胞表面分子來自人類。
            (6)編碼(1)至(5)中任何一個多肽的基因。
            (7)(6)基因,其中該基因為一段cDNA。
            (8)(7)基因,其中該cDNA有SEQ ID NO1的核苷酸序列。
            (9)(7)基因,其中該cDNA含相應于SEQ ID NO3的26至625核苷酸殘基,SEQ ID NO4的35至637核苷酸殘基,SEQ ID NO5的1至603核苷酸殘基,或SEQ ID NO6的35至685核苷酸殘基的一段核苷酸序列。
            (10)一種載體,包含(6)至(9)中任何一個基因。
            (11)一種轉化體,其中導入了(10)的載體。
            (12)一種轉化體,鑒定為國際保藏號FERM BP-5725。
            (13)一種多肽片段,包含(1)至(5)中任一個多肽的胞外區。
            (14)(13)多肽片段,其中該多肽為有SEQ ID NO2的氨基酸序列的人源多肽。
            (15)編碼(13)或(14)的多肽片段的基因。
            (16)一種包含兩個多肽片段的同型二聚體分子,其中每個片段含有(1)至(5)中任一個多肽的胞外區,且此二個多肽片段彼此以二硫鍵橋聯。
            (17)(16)同型二聚體分子,其中該多肽為具有SEQ ID NO2的氨基酸序列的人源多肽。
            (18)一種藥物組合物,含有(14)多肽片段或含有(17)同型二聚體分子,或二者均含,并包含一個可藥用載體。
            (19)一種融合多肽,含(1)至(5)中任一個多肽的胞外區及人免疫球蛋白(Ig)重鏈恒定區或此恒定區的一部分。
            (20)(19)融合多肽,其中免疫球蛋白為IgG。
            (21)(19)融合多肽,其中恒定區的部分包含IgG的鏈區,C2區和C3區。
            (22)(19)至(21)中任一個融合多肽,其中該多肽為有SEQ ID NO2的一段氨基酸序列的人源多肽。
            (23)一種同型二聚體分子,包含(19)至(22)中任意兩個融合多肽,其中兩個多肽彼此以二硫鍵橋聯。
            (24)一種同型二聚體分子,包含(22)的兩個融合多肽,其中兩個多肽間以二硫鍵橋聯。
            (25)一種藥物組合物,包含(22)融合多肽,或(24)同型二聚體分子,或二者皆有,以及一種可藥用載體。
            (26)(25)藥物組合物,其中該藥物組合物用于治療自身免疫病或過敏性疾病,或用于預防上述疾癥的癥狀。
            (27)可與(1)至(5)中任一個多肽,(13)或(14)多肽片段,或含有該多肽的細胞表面分子反應的一種抗體或其部分。
            (28)(27)抗體或其部分,其中該抗體為單抗。
            (29)一種可與有SEQ ID NO2的氨基酸序列的多肽,或(14)多肽片段,或含該多肽的人源細胞表面分子反應的單抗或其部分。
            (30)一種可與(1)至(5)中任一個多肽,或與含有該多肽的細胞表面分子反應的單抗或其部分,其中該單抗在絲裂原刺激的淋巴母細胞上的效應實質上等同于經國際保藏號FERM BP-5707的雜交瘤產生的單抗對絲裂原刺激的大鼠淋巴母細胞的效應。
            (31)一種可與(1)至(5)中任一個多肽,或與含有該多肽的細胞表面分子反應的單抗或其部分,其中該單抗對絲裂原刺激的淋巴母細胞的效應實質上等同于國際保藏號FERM BP-5708的雜交瘤所產生的單抗對絲裂原刺激的大鼠淋巴母細胞的效應。
            (32)一種藥物組合物,含有(29)單抗或其部分和可藥用載體。
            (33)(32)藥物組合物,其中該藥物組合物用于治療自身免疫病或過敏性疾病,或用于預防該疾病癥狀。
            (34)一種生產(28)至(31)的任一種單抗的雜交瘤。
            (35)一種轉基因小鼠,其中整合入其內源基因上的編碼(1)多肽的基因是包含SEQ ID NO1的核苷酸序列的一種人源基因,或是包含相應于SEQID NO4的35至637核苷酸殘基的核苷酸序列的大鼠源基因。
            (36)一種基因敲出小鼠,其內源編碼權利要求1的小鼠多肽(包含SEQID NO5的基因編碼的氨基酸序列)的基因被滅活,從而不產生該小鼠多肽。
            如上所述,本發明的細胞表面分子(“JTT-1抗原”)涉及細胞粘附,向淋巴細胞(如T細胞)的信號傳遞,對活化的淋巴細胞功能的調節。下文描述了有關淋巴細胞,細胞粘附分子,及它們之間關系的一般常識,只是為了對這些生物學事件作一般性理解,但以下常識不是為了限定性解釋本發明。
            淋巴細胞粗分為兩類,T細胞和B細胞。從骨髓的多能干細胞分化為淋巴樣干細胞后,其中一些進入血流以達胸腺。淋巴細胞在胸腺中分化成熟,稱為T細胞(胸腺衍生T細胞),再進入血液,循環于全身。成熟T細胞在其表面有一稱為CD3的分子。CD3分子的存在是決定該細胞是否為成熟T細胞的標志。CD3是一個可信的T細胞標志。此外,T細胞表達CD4或CD8。T細胞分為輔助T細胞(Th細胞),其輔助B淋巴細胞產生抗體;細胞毒T細胞(Tc細胞,CTL)或殺傷T細胞,它們可結合靶細胞并直接破壞它們;抑制T細胞,其可抑制B淋巴細胞產生抗體;效應T細胞,其分泌效應物如淋巴因子引起遲發型變態反應。
            B細胞來自于骨髓中分化和成熟的淋巴樣干細胞。B細胞是產生抗體的前體細胞。因為它們受相應刺激時產生抗體。B細胞在其細胞表面有免疫球蛋白分子,其產生于細胞內。這些免疫球蛋白是抗原的受體。成熟B細胞在其表面同時具有IgM和IgD。若B細胞受抗原刺激和T細胞傳來的信號作用而分化,則IgM的生成增加,且其C端細胞膜結合區發生改變從而被分泌。只要有足夠刺激,不只是表面免疫球蛋白轉換成IgG,IgE和IgA,而且每類免疫球蛋白均有分泌。B細胞表面的免疫球蛋白有時表示為sIg(表面Ig的縮寫),或mIg(膜Ig的縮寫)。同一B細胞表面所有Ig分子具有相同的抗原結合位點。
            有些淋巴細胞稱為大顆粒淋巴細胞(LGL)或無表面標志細胞,它們即非T細胞,亦非B細胞。這些細胞不經抗原事先刺激就能破壞腫瘤細胞和病毒感染的細胞,這相當于細胞毒T細胞。故這些細胞也稱自然殺傷細胞(NK細胞)。
            上述T細胞中,CD4陽性T細胞在與抗原呈遞細胞呈遞的抗原反應時,分泌多種細胞因子,重新表達這些細胞因子的受體。擴大自身體積,開始細胞分裂和增殖。在細胞水平上的這些反應發生前,抗原呈遞細胞上的抗原肽與MHC II類分子的復合物結合于相應的T細胞抗原受體(TCR)。這導致胞內發生各種生化變化,信號傳入核內,啟動特異性DNA的轉錄,產生相應蛋白。結果細胞水平的反應增強。例如,感染了病毒的細胞產生病毒蛋白并在胞質中由蛋白酶體降解為肽,其中部分經TAP進入內質網,與剛產生的MHC I類分子形成穩定復合物,再轉移至細胞表面。轉移至細胞表面的肽由CD8陽性T細胞特異性識別,但這些T細胞在此階段尚不能破壞受感染的細胞。這些與抗原反應的T細胞表達IL-2受體(IL-2R),均在IL-2作用下分化為CTL細胞毒性然后當再次遇到相同抗原肽/MHC I類復合物時破壞靶細胞以殺死它們。分化為CTL所需細胞因子不只IL-2,還有IFNγ或其它細胞因子,它們有相似的作用。故T細胞分泌的淋巴因子是分化為CTL所必需。淋巴因子的產生是CD4陽性Th1細胞(CD4陽性分泌IL-2或IFNγ的T細胞)識別同一病毒來源的抗原肽和II類分子的結果。某些例子中,沒有CD4陽性T細胞的幫助,CD8陽性T細胞也能與抗原反應并產生IL-2和其他細胞因子。當CD8陽性T細胞分化為CTL時,胞質中顆粒增多。這些顆粒包括各種高分子量蛋白質,表示為穿孔素。穿孔素類似于由補體的第五至第九成分組成的膜攻擊復合物(MAC),可在靶細胞的細胞膜上產生孔。此外,顆粒還包括絲氨酸蛋白酶,LT,蛋白多糖等。而且,若分化為CTL的CD8陽性細胞受到抗原刺激,它們也可分泌淋巴因子如IFNγ,LT,TNF或IL-2。而且,當T細胞與血凝素(植物血凝素,PHA)或ConA反應時表現出母細胞(blast)轉化表型。
            完全未受刺激的成熟T細胞稱靜息T細胞,細胞體積較小,壽命短,只有幾天。當它們接受刺激,細胞如上所述增大,易于與各種刺激發生反應。這些T細胞稱活化的T細胞。一部分活化的T細胞變成記憶T細胞,若受到相同抗原刺激可產生再次免疫反應。記憶T細胞被認為在身體循環中保持幾年或幾十年。
            完全未受刺激的B細胞稱靜息B細胞,就象T細胞的情況一樣,受多價抗原或CD40L刺激而增生的B細胞稱活化的B細胞。由于靜息B細胞無協同刺激分子(通過TCR傳遞信號刺激T細胞)如B7-1(CD80)或B7-2(CD86),因而認為呈遞抗原至靜息T細胞只能刺激TCR,不能表達CD40配體(CD40L)或產生淋巴因子。故認為由其他抗原呈遞細胞所呈遞抗原刺激活化的輔助T細胞可與由靜息B細胞呈遞的抗原反應。即,若有抗原入侵,首先,表達B7分子的樹突細胞(有極多樹突狀突起的細胞)或與微生物反應而活化的巨噬細胞呈遞抗原,刺激靜息T細胞活化以表達CD40L。活化的輔助T細胞隨后結合于呈遞了相同抗原的靜息B細胞,刺激其CD40。一旦B細胞因多價抗原或CD40L的刺激而活化,它們也表達B7分子,刺激輔助T細胞表面的CD28及TCR而使之活化,從而使輔助T細胞表達CD40L或產生淋巴因子。受刺激后顯示有諸如細胞體積增大之類的變化但未顯示抗體分泌的B細胞稱活化的B細胞。若成熟至此的B細胞遇到抗原,又有來自T細胞的刺激,IgM的產生增加,所產生的MgM從膜結合型轉成分泌型分泌出細胞。而且,它們在來自T細胞的體液因子作用下產生除IgM以外的其他同種型抗體。這稱為同種型轉換或類別轉換。分泌抗體的B細胞稱抗體分泌型細胞。其中一部分變為形態特征性細胞并稱為漿細胞(免疫學知識,Ohmsha,(1996))。
            偶爾地,在各種免疫系統的反應中,白細胞亞群,即T淋巴細胞,B淋巴細胞,NK,中性粒細胞等常顯示相互不同的動力學。即使是上述同種淋巴細胞根據該細胞是活化的還是靜息的也顯示相互不同的動力學。這些事實暗示存在白細胞亞群特異性的識別機制,且識別機制特異于細胞的狀態,尤其細胞粘附分子(細胞粘附蛋白)。
            細胞粘附分子,或細胞粘附蛋白是通常在個體發育分化中或在細胞遷移至局部位點時使細胞間粘附的分子,已知這些分子是活體的機體和功能接觸所必需的分子。
            細胞粘附分子根據結構特征粗分為五大家族免疫球蛋白超家族,整聯蛋白家族,選擇素家族,鈣粘著蛋白家族,和CD44家族。屬免疫球蛋白超家族的粘附分子特征是有以二硫鍵形成的重復環狀區。其例子有細胞間粘附分子-1“ICAM-1”和血管細胞粘附分子“VCAM-1”。此外,屬整聯蛋白家族的粘附分子特征是α/β異二聚體結構。其實例為極遲相抗原-1至6“VLA-1至6”,淋巴細胞功能相關抗原-1“LFA-1”,“Mac-1”,和“P150/90”。屬選擇素家族的分子從N端依次有植物血凝素樣區,EGF樣區,和補體區。其實例為“E-選擇素”和“P-選擇素”。鈣粘著蛋白家族的實例為“E-鈣粘著蛋白”,“N-鈣粘著蛋白”和“P-鈣粘著蛋白”,CD44家族的一個實例是“CD44”。
            已知這些粘附分子的特殊功能是使白細胞粘附血管內皮細胞或使淋巴細胞粘附抗原呈遞細胞。最近各種研究漸漸揭示粘附分子不僅涉及這些功能,也涉及多種疾病。
            尤其,已有多項關于疾病和粘附分子表達異常的報道。如類風濕性關節炎(RA),據報道RA滑膜細胞中“Mac-1”和“P150/95”的表達均加強(Allen,C.等,類風濕性關節炎,32卷,947頁(1989))。另有報道RA滑膜上各種細胞表達“ICAM-1”既強又異位(Hale,L.等,類風濕性關節炎,32卷,22頁(1989))。另一項報道暗示“ELAM-1”亦涉及中性粒細胞對血管內皮細胞的粘附,這些分子的過量表達涉及中性粒細胞的浸潤(特別是,進入滑液),在RA的滑液中發現有中性粒細胞(Laffon,A.等,類風濕性關節炎,32卷,386頁(1989))。血管內皮細胞和RA滑膜上A型滑膜細胞中CD44的強烈表達也有報道(Heynes,B.等,類風濕性關節炎,34卷,1434頁(1991))。
            有些報道是關于系統性紅斑狼瘡(SLE)與粘附分子表達異常之間的聯系。如據報道系統性紅斑狼瘡病人的T淋巴細胞粘附血管內皮細胞的能力低于健康志愿者的。SLE病人的外周血淋巴細胞中強烈表達粘附分子“ICAM-1”,“VLA-4”,和“IFA-1”(Haskard,D.O.等,Rheumatol.Int.9卷,33頁(1989))。
            在自身免疫病中,據報道當甲狀腺濾泡細胞受干擾素γ,白細胞介素1,和腫瘤壞死因子刺激時表達“ICAM-1”,而濾泡細胞和單核細胞的群形成受抗“ICAM-1”抗體的抑制(Weetman,A.P.等,歐洲免疫學雜志,20卷,271頁(1990))。
            在肝炎中,一般認為肝細胞與炎癥細胞間的粘附機率增加,因為有“ICAM-1”和“LFA-3”,“LFA-1”和“CD2”這兩條粘附通道,因而促進了抗原的呈遞和炎癥細胞的活化。尤其,乙肝中,肝細胞強烈表達“LFA-3”,肝細胞內病毒活躍復制,而“ICAM-1”與肝炎的病情嚴重程度密切相關。故暗示“LFA-3”涉及病毒的排除,“ICAM”促進T細胞呈遞抗原及調節炎癥反應。在“ICAM-1”陰性而HBC抗原陽性肝細胞中,慢性病毒感染,一種免疫無應答,可能由于淋巴細胞與肝細胞間無相互作用而發生,還有報道說慢性肝病中的血清“ICAM-1”,可能相關于肝細胞損壞程度因為急性肝炎病人,慢性活動性肝炎病人,肝壞死病人的血清“ICAM-1”濃度高于健康志愿者的和慢性遷延性肝炎病人的,在組織學漸進性活動肝炎中該濃度是高的(Mod.Phys.,15卷,1期,73-76頁(1995))。
            在動脈硬化的動物模型中,于發病的早早期就察到單核細胞和淋巴細胞對血管內皮的粘附和入侵。故認為這些血細胞與內皮的相互作用是動脈硬化癥發病的第一步。各種報道顯示急性動脈硬化病灶中有粘附分子的表達,包括人動脈硬化病灶中有“ICAM-1”表達(Poston,R.N.等,美國病理學雜志,140卷,665頁(1992))和兔高膽固醇血癥的動脈硬化病灶中有“VCAM-1”表達(Cybulsky,M.I.和Gimbrone,M.A.Jr.,科學,251卷,788頁(1991))。一項近期報道揭示,于人動脈硬化灶中觀察到“VCAM-1”的表達,及尤其是遷移至內膜的平滑肌細胞中和單核/巨噬細胞中有強表達。此外,兔和人動脈硬化灶中“MCP-1”的表達增強,說明“MCP-1”通過移動單核/巨噬細胞促進動脈硬化灶的形成(Curent Therapy,12卷,8期,1485-1488頁(1994))。
            腫瘤轉移與粘附分子異常之間的關系已有報道。如E-鈣粘著蛋白減少的癌細胞顯示較強侵襲力,但該癌細胞中導入E-鈣粘著蛋白的cDNA后侵襲力受抑,再加入E-鈣粘著蛋白抗血清侵襲力又恢復。這說明E-鈣粘著蛋白表達的減少與腫瘤細胞侵襲力之間有緊密聯系(Frixen,U.H.等,113卷,173頁(1991))。在實際臨床病例中,E-鈣粘著蛋白表達減少與轉移之間的聯系出現在各種癌癥中,如肝癌,鼻咽癌,胃癌,和乳癌。亦有報道“VLA-4”分子,作為“VCAM-1”的配體,在轉移型黑色素瘤,胃癌和乳癌中高度表達,說明此分子可用于轉移病例中對血管內皮細胞的植入。此外,用各種腫瘤細胞系進行實驗所得報道說上皮癌,如胃癌,大腸癌,肺癌,肝癌或胰腺癌,均經E-選擇素粘附血管內皮細胞(Takada,A.等,癌癥研究,53卷,354頁(1993))。
            另一方面,已有人采用靶向這些粘附分子的治療方法治病。如,報道抗大鼠“ICAM-1”抗體在大鼠自身免疫性關節炎模型中強烈抑制炎癥反應。亦有報道,在一個RA動物模型中施用抗“ICAM-1”抗體抑制了輔助性滑膜炎中關節炎的發作(Nihon Rinsho Meneki Gakkai Kaishi,14卷,6期,571-577頁(1991))。進一步有報道說,若對膽囊癌小鼠施用大量具有REG序列(為一種胞外基質蛋白中由某些整聯蛋白識別并結合的一段氨基酸序列)的肽將顯著抑制所接種腫部的轉移形成,而在體外系統中,RGD肽和抗β1亞單位抗體抑制了腫瘤細胞的運動和浸潤(Yamada,K.M.等,癌癥研究,50卷,4485頁(1990))。
            下文中,本發明通過澄清了本文所用術語的意義,及本發明的多肽,融合多肽,基因,抗體,轉基因小鼠,和基因敲出小鼠的一般生產方法而詳述,但不用說術語的意義不應限定在本文所給定義中。
            本文所用“絲裂原”也稱促分裂因子,指能誘導細胞分裂的物質。其免疫學意義為多克隆誘導淋巴細胞母細胞生成(blastogenesis)和誘導細胞分裂的物質。其實例為外源凝集素如PHA和PWM,刀豆蛋白A(ConA),脂多糖,鏈球菌溶血素S,和抗淋巴細胞抗體。已知刀豆蛋白A和pHA只作用于T淋巴細胞,脂多糖只作用于B淋巴細胞,而PWM對兩種細胞均有作用。
            本文所用“淋巴母細胞”也稱大淋巴細胞,淋巴母細胞,或免疫母細胞,意指屬于出現在淋巴樣組織(淋巴節,脾,胸腺,骨髓,淋巴導管,扁桃體等)和血液中的淋巴細胞中的大淋巴細胞的淋巴細胞。
            術語“活化的淋巴細胞”指如上述淋巴細胞,但不止于此。如該術語指受某些刺激活化的淋巴細胞。如上述,淋巴細胞分T細胞,B細胞和NK細胞。T細胞分CD4陽性細胞和CD8陽性細胞。故本發明的“活化的淋巴細胞”主要包括活化T細胞,活化B細胞,活化的NK細胞,而活化T細胞又包括活化的CD4陽性細胞和CD8陽性細胞。
            基于與抗原呈遞細胞呈遞的抗原反應,CD4陽性T細胞分泌各種細胞因子,即時表達這些細胞因子的受體,增大其自身體積,開始細胞分裂,增殖并被活化。活化的CD4陽性T細胞包括處于該狀態的那些。
            CD8陽性T細胞與抗原反應時表達IL-2R。當IL-2作用于IL-2R,這些細胞分化為CTL,具有細胞毒性。當CTL遇到相同抗原肽/MHC I類復合物時,將破壞其靶細胞以殺死之。當CD8陽性T細胞分化為CTL時,胞質中顆粒增多。這些顆粒包括各種高分子量蛋白質,表示為穿孔素。穿孔素類似于補體第五至第九成分組成的MAC,可在靶細胞的細胞膜上穿孔。這些顆粒還含有絲氨酸蛋白酶,LT,和蛋白多糖。若CD8陽性細胞受到抗原刺激并分化為CTL,將分泌淋巴因子如IFNγ,LT,TNF或IL-2。活化的CD8陽性T細胞包括上述狀態中的細胞。
            T細胞與血凝素(植物血凝素,PHA)或刀豆蛋白A(ConA)反應時顯示母細胞形成現象。活化的T細胞包括處于此狀態的細胞。
            B細胞表達B7分子,刺激輔助T細胞表面的CD28及TCR而使之活化,使輔助T細胞表達CD40L或產生淋巴因子。當細胞受到刺激。它們轉而增大體積或增殖。活化的B細胞包括此狀態中的細胞。本發明中,活化的B細胞包括分泌抗體的細胞(抗體分泌型細胞和漿細胞)。
            活化的自然殺傷細胞指上述對腫瘤細胞或病毒感染細胞有細胞毒作用的細胞。本發明中,活化的淋巴細胞包括ConA刺激的胞腺細胞。
            本文的“活化的淋巴母細胞”包括上述淋巴母細胞經上述“絲裂原”如ConA刺激生成的活化的“淋巴母細胞”。
            本文的“靜息淋巴細胞”在一些情況下指未活化的淋巴細胞,未接受活化細胞的刺激,是對比于上述活化的淋巴細胞。
            本發明的“基因”包括基因組DNA和cDNA。
            “人源”物質在本發明包括分離自人體成分(器官,組織,細胞,體液等)的天然物質,及用重組DNA技術產生的重組產物。若該物質為蛋白質或多肽,則包括人工蛋白和多肽(其中所含氨基酸序列有一處或更多氨基酸被取代,缺失或補加)。
            本發明的“細胞表面分子”來自哺乳動物,如人,大鼠,小鼠,豚鼠,和兔,較優選來自人,大鼠或小鼠,更優選來自人。
            特別指出,本發明的“細胞表面分子”具有至少以下所述特征(a)該細胞表面分子至少在胸腺細胞和絲裂原刺激的淋巴母細胞中表達;(b)反應于該細胞表面分子的抗體誘導絲裂原刺激的淋巴母細胞間的相互粘附;(c)反應于該細胞表面分子的抗體在有抗CD3抗體存在時誘導外周血淋巴細胞增殖;(d)該細胞表面分子在其胞外區有表示為苯丙氨酸-天冬氨酸-脯氨酸-脯氨酸-脯氨酸-苯丙氨酸的部分氨基酸序列;且(e)該細胞表面分子在其胞質區有表示為酪氨酸-甲硫氨酸-苯丙氨酸-甲硫氨酸的部分氨基酸序列。
            較優選地,該“細胞表面分子”包含本發明的以下“多肽”。
            本發明的“多肽”是組成本發明的上述“細胞表面分子”的。其實例如下(1)在嚴格條件下與含有SEQ ID NO1核苷酸序列的DNA雜交的DNA所編碼的多肽;(2)其氨基酸序列與SEQ ID NO2的氨基酸序列有60%或更多同源的多肽;(3)多肽,具有SEQ ID NO2的氨基酸序列或與該氨基酸序列實質相同的氨基酸序列(即,組成“人JTT-1抗原”的多肽及其衍生物);(4)多肽,具有由相應于SEQ ID NO3的26至625核苷酸殘基的一段核苷酸序列編碼的氨基酸序列,或實質上相同于該氨基酸序列的一段氨基酸序列(即,組成“人JTT-1抗原”的多肽及其衍生物);(5)多肽,具有由相應于SEQ ID NO4的35至637核苷酸殘基的核苷酸序列編碼的氨基酸序列,或與該氨基酸序列實質上相同氨基酸序列(即,組成“大鼠JTT-1抗原”的多肽及其衍生物);(6)多肽,具有由相應于SEQ ID NO5的1至603核苷酸殘基的核苷酸序列編碼的氨基酸序列,或與該氨基酸序列實質上相同的氨基酸序列(即,組成“小鼠JTT-1抗原”的多肽及其衍生物);(7)多肽,具有由相應于SEQ ID NO6的35至685核苷酸殘基的核苷酸序列編碼的氨基酸序列,或與此氨基酸序列實質上相同的氨基酸序列(即,組成“大鼠JTT-1抗原突變體”的多肽及其衍生物);以及(8)多肽,具有的氨基酸序列由編碼組成本發明的細胞表面分子的多肽的DNA所編碼,其中該DNA導入為國際保藏號FERM BP-5725所定義的轉化體,或該多肽具有與上述氨基酸序列實質相同的序列(即,組成“人JTT-1抗原”的多肽及其衍生物)。
            “嚴格條件”的實例如下當用50或更多個核苷酸的探針,雜交在0.9%NaCl中進行時,50%解離溫度的標準(Tm)用以下公式計算,雜交溫度亦根據以下公式而定Tm=82.3℃+0.41×(G+C)%-500/n-0.61×甲酰胺%(n指探針的核苷酸數)溫度=Tm-25℃
            此外,若用100或更多核苷酸(G+C為40%至50%)作探針,則應考慮Tm按下述(1)和(2)變化。
            (1)Tm下降為每1%錯配約1℃。
            (2)Tm下降為每1%甲酰胺降0.6至0.7℃。
            相應地,完全互補鏈的組合的溫度條件可按如下設定(A)65至75℃(未加甲酰胺)(B)35至45℃(有50%甲酰胺時)不完全互補鏈的組合的溫度條件可按如下設定(A)45-55℃(不加甲酰胺)(B)35-42℃(有50%甲酰胺)。
            若用23或更少核苷酸的探針,溫度條件可為37℃,或按以下公式計算溫度=2℃×(A+T數)+4℃×(C+G數)-5℃在此,“實質上相同的氨基酸序列”指包括其氨基酸序列中顯示于序列表中的多個氨基酸,較優選1至10個,尤其優選1至5個被替代,缺失,和/或修飾的多肽,和其氨基酸序列加入了多個氨基酸,較優選1至10個,尤其優選1至5個加入到序列表中的氨基酸中的多肽,只要該多肽有著與序列表中所示氨基酸序列的多肽實質上相同的生物學特點。
            氨基酸的這些替代,缺失或插入可按常規方法進行(實驗醫學增刊,“遺傳工程手冊”(1992);等等)。
            其實例有,合成寡核苷酸定點誘變(缺口雙鏈體法),經亞硝酸鹽或亞硫酸鹽處理而隨意誘導點突變的點突變,用Bal 31酶或類似物制備缺失突變的方法。盒式誘變,連接子掃描法,錯誤摻入法,錯配引物法。DNA節段合成法,等等。
            合成寡核苷酸定點誘變(缺口雙鏈體法)可如下進行。將期望誘變的區段克隆進具有琥珀突變的M13噬菌體中以制備單鏈噬菌體DNA。經限制性內切酶處理使不帶琥珀突變的M13載體的RF I DNA線性化后,DNA與上述單鏈噬菌體DNA混合,變性,退火從而形成“缺口雙鏈體DNA”。一段導入了突變的合成寡核苷酸與此“缺口雙鏈DNA”雜交,用DNA多聚酶和DNA連接酶制成閉合環狀雙鏈DNA。大腸桿菌mutS細胞缺乏錯配修補活性,用此DNA轉染。大腸桿菌細胞中無抑制活性的用成熟噬菌體轉染,篩選無琥珀突變的噬菌體。
            用亞硝酸鹽誘導點突變的方法,其原理舉例如下。DNA若經亞硝酸鹽處理,堿基脫氨使腺嘌呤變成次黃嘌呤。胞嘧啶變為尿嘧啶而鳥嘌呤變成黃嘌呤。如果脫氨的DNA導入細胞,“A:T”和“G:C”分別被“G:C”和“A:T”代替。因為在DNA復制中次黃嘌呤,尿嘧啶,和黃嘌呤分別與胞嘧啶,腺嘌呤和胸腺嘧啶形成堿基對。事實上,亞硝酸鹽處理過的單鏈DNA片段均與“缺口雙鏈DNA”雜交,隨后突變鏈經等同于合成寡核苷酸定點誘變的方法(缺口雙鏈法)而分離。
            三聯體字母或單字母密碼用來表示本說明書中的氨基酸,意義如下(Gly/G)甘氨酸,(Ala/A)丙氨酸,(Val/V)纈氨酸,(Leu/L)亮氨酸,(Ile/I)異亮氨酸,(Ser/S)絲氨酸,(Thr/T)蘇氨酸,(Asp/D)天冬氨酸,(Glu/E)谷氨酸,(Asn/N)天冬酰胺,(Gln/Q)谷氨酰胺,(Lys/K)賴氨酸,(Arg/R)精氨酸,(Cys/C)半胱氨酸,(Met/M)甲硫氨酸,(Phe/F)苯丙氨酸,(Tyr/Y)酪氨酸,(Trp/W)色氨酸,(His/H)組氨酸,(Pro/P)脯氨酸。
            組成上述本發明的“細胞表面分子”的“多肽”為跨膜蛋白,穿透細胞膜,而此“細胞表面分子”由一或兩個這樣的跨膜多肽組成。
            在此,“跨膜蛋白”指通過穿透膜的脂質雙層一次或多次的疏水肽段與膜連接的蛋白質,其結構就整體而言,由三個主要區段組成,它們是胞外區,跨膜區,和胞質區,如在許多受體或細胞表面分子中所見一樣。這樣一個跨膜蛋白以單體,同型二聚體,異二聚體或與另外的具有相同或不同氨基酸序列的鏈形成的寡聚體形式組成每個受體或細胞表面分子。
            “多肽片段”在本發明中是來自本發明上文規定的“多肽”的片段,較優選多肽的胞外區。若有需要,可在該區的N末端和/或C末端加入1至5個氨基酸。
            在此,“胞外區”指上述跨膜蛋白完整結構中部分結構(部分區段)的全部或部分,其中該部分結構存在于胞外。換而言之,它指跨膜蛋白中除去插入膜中的區段(跨膜區)和緊隨跨膜區存在于胞內的區段(胞質區)后的區段的全部或部分。
            “人免疫球蛋白(Ig)重鏈恒定區或其部分”在本文中指人源免疫球蛋白重鏈(H鏈)的恒定區或Fc區,或其一部分。該免疫球蛋白可以是任何類和亞類的任一種免疫球蛋白。特別是,免疫球蛋白的實例有IgG(IgG1,IgG2,IgG3和IgG4),IgM,IgA(IgA1和IgA2),IgD和IgE。優選免疫球蛋白是IgG(IgG1,IgG2,IgG3和IgG4),或IgM。本發明之特別優選免疫球蛋白實例屬于人源IgG(IgG1,IgG2,IgG3或IgG4)。
            免疫球蛋白有Y形結構單位,其中四條鏈由兩條相同的輕鏈(L鏈)和兩條相同的重鏈(H鏈)經二硫鏈(S-S鍵)連接而成。輕鏈由輕鏈可變區(VL)和輕鏈恒定區(CL)組成。重鏈由重鏈可變區(VH)和重鏈恒定區(CH)組成。
            重鏈恒定區由其氨基酸序列為每類(IgG,IgM,IgA,IgD和IgE)和每亞類(IgG1,IgG2,IgG3和IgG4,IGA1和IgA2)所固有的某些區域組成。
            IgG(IgG1,IgG2,IgG3和IgG4)的重鏈從N末端依次由VH,CH1區,絞鏈區,CH2區,和CH3區組成。
            相似地,IgG1的重鏈從N末端依次由VH,Cγ11區,絞鏈區,Cγ12區,Cγ13區組成。IgG2重鏈自N末端依次為VH,Cγ21區,絞鏈區,Cγ22區,Cγ23區。IgG3的重鏈自N末端依次為VH,Cγ31區,絞鏈區,Cγ32區,Cγ33區。IgG4的重鏈自N末端依次為VH,C41區,絞鏈區,C42區,C43區。
            IgA的重鏈自N末端依次為VH,Cα1區,絞鏈區,Cα2區,Cα3區。
            類似地,IgA1的重鏈自N末端依次為VH,Cα11區,絞鏈區,Cα12區,Cα13區。IgA2的重鏈自N末端依次為VH,Cα21區,絞鏈區,Cα22區,Cα23區。
            IgD的重鏈自N末端依次為VH,Cδ1區,絞鏈區,Cδ2區,Cδ3區。
            IgM的重鏈自N末端依次為VH,Cμ1區,Cμ2區,Cμ3區,Cμ4區,而無IgG,IgA和IgD中可見的絞鏈區。
            IgE的重鏈自N末端依次為VH,Cε1區,Cε2區,Cε3區和Cε4區,而無IgG,IgA和IgD中可見的絞鏈區。
            例如,若用木瓜蛋白酶處理IgG,在較靠N末端位于絞鏈區中二硫鍵之外的地方被切斷,此時二硫鏈所連接的兩條重鏈產生兩個同源的Fab其中由VH和CH1組成的重鏈片段與一條輕鏈經二硫鏈連接,和一個Fc,兩條同源的由絞鏈區,CH2區,和CH3區組成的重鏈片段經二硫鍵連接(見“免疫學圖譜”,原裝第2版,Nankodo.65-75頁(1992));“最新醫學科學集萃‘免疫系統的識別機制’”,Nankodo,4-7頁(1991);等等)。
            即,本發明的“免疫球蛋白重鏈恒定區的一部分”指具有上述結構特征的免疫球蛋白重鏈恒定區的一部分,且優選地是不含C1區的恒定區,或Fc區。特別地,其實例是由IgG,IgA和IgD之每一種的絞鏈區,C2區和C3區組成的區域,IgM和IgE中每種的C2區,C3區和C4區組成的區域。其中一個特別優選實例為人源IgG1的Fc區。
            本發明的“融合多肽”指由組成本發明的上述“細胞表面分子”的“多肽”的胞外區和“人免疫球蛋白(Ig)重鏈恒定區或其一部分”組成的。優選地是由本發明的多肽的胞外區和人I gG重鏈恒定區的一部分組成的融合多肽,特別優選地由本發明的多肽的胞外區與人IgG重鏈的絞鏈區,CH2區,CH3區組成的區域(Fc)組成的融合多肽。此外,來自人,小鼠,或大鼠(優選人)的多肽較優選為本發明的多肽。
            本發明的融合多肽的優點是純化十分簡便,只需使用利用蛋白A性質的親和柱層析,因為蛋白A可特異性結合免疫球蛋白片段,而本發明的融合多肽具有一種免疫球蛋白(如上述的IgG)恒定區的一部分如(Fc)作為融合伙伴。而且,由于可提供抗各種免疫球蛋白Fc的抗體,可簡便地用這些抗體對融合多肽進行免疫檢測。
            本發明的多肽,多肽片段,融合多肽不僅可用下文所述重組DNA技術生產,亦可用本領域熟知的方法如化學合成法和細胞培養法,或它們的改進方法生產。
            本發明的“基因”含有編碼上述本發明的多肽或多肽片段的DNA,并包括具有編碼本發明的多肽或多肽片段的核苷酸序列的任何基因。
            基因的實例有編碼下文所提及多肽或多肽片段的那些基因。
            (1)多肽,是由在嚴格條件下與包括SEQ ID NO1的核苷酸序列的DNA雜交的DNA所編碼;(2)多肽,具有與SEQ ID NO2的氨基酸序列有60%或更多同源的氨基酸序列;(3)多肽,具有SEQ ID NO2的氨基酸序列或實質上相同于該氨基酸序列的氨基酸序列(即組成“人JTT-1抗原”的多肽及其衍生物);(4)多肽,具有由對應于SEQ ID NO3的26至625核苷酸殘基的核苷酸序列編碼的氨基酸序列,或實質上相同于這段氨基酸序列的氨基酸序列(即組成“人JTT-1抗原”的多肽及其衍生物);(5)多肽,具有由SEQ ID NO4的35至637核苷酸殘基相應的核苷酸序列編碼的氨基酸序列或實質上相同于它的序列的氨基酸序列(即組成“大鼠JTT-1抗原”的多肽及其衍生物);(6)多肽,具有由SEQ ID NO5的1至603核苷酸殘基相應的核苷酸序列編碼的氨基酸序列,或與該序列實質相同的氨基酸序列(即組成“小鼠JTT-1抗原”的多肽及其衍生物);(7)多肽,具有由相應于SEQ ID NO6的35至685核苷酸殘基的核苷酸序列編碼的氨基酸序列,或實質上相同于該序列的氨基酸序列(即組成“大鼠JTT-1抗原突變體”的多肽及其衍生物);以及(8)多肽,具有由編碼組成本發明的細胞表面分子的多肽的DNA編碼的氨基酸序列,其中該DNA導入由國際保藏號FERM BP-5725所定義的轉化體,或具有實質上相同于該氨基酸序列的氨基酸序列(即組成“人JTT-1抗原”)的多肽及其衍生物)。
            此處,“實質上相同的氨基酸序列”意義如上文所規定。
            本發明的基因的具體實列是下述的DNA或其片段(1)DNA,包含SEQ ID NO1的核苷酸序列,及與該DNA在嚴格條件下雜交的DNA;(4)DNA,包含相應于SEQ ID NO3的26至625核苷酸殘基的核苷酸序列;(5)DNA,含相應于SEQ ID NO4的35至637核苷酸殘基的核苷酸序列;(6)DNA,含相應于SEQ ID NO5的1至603核苷酸殘基的核苷酸序列;(7)DNA,含相應于SEQ ID NO6的35至685核苷酸殘基的核苷酸序列;(8)DNA,編碼組成本發明的細胞表面分子的多肽,其中此DNA導入由國際保藏號FERM BP-5725所定義的轉化體。
            編碼免疫球蛋白重鏈恒定區的一部分(為本發明的融合多肽的一部分)的DNA可以是cDNA,或由每個外顯子間內含子組成的基因組DNA(編碼如,CH1區,絞鏈區,CH2區,CH3區,CH4區等的DNA)。
            本發明之DNA包括任意密碼子組成的任意DNA,只要這些密碼子編碼的是同樣的氨基酸。
            本發明的DNA可經任何方法獲得。如,從mRNA制備互補DNA(cDNA),從基因組DNA制備,化學合成,用RNA或DNA作模板經PCR擴增所得,及將這些方法適當組合而構建。
            編碼本發明之多肽的DNA可用一般方法獲得,如從編碼本發明之多肽的mRNA克隆cDNA,分離基因組DNA并切割,化學合成等等。
            (1)cDNA可從編碼本發明之多肽的mRNA克隆而得,例如通過如下方法首先,編碼本發明之細胞表面分子(多肽)的mRNA可從能表達并生產本發明之細胞表面分子(多肽)的組織或細胞(如經ConA刺激的胸腺細胞或脾衍生的淋巴母細胞)而制備。mRNA可用已知方法分離總DNA來制備,方法如硫氰酸胍法(Chirgwin,J.M.等,生物化學,18卷,5294頁,1979),熱酚法,或AGPC法,再用Oligo-dT纖維素或poly-U葡聚糖進行親和層。
            然后,用所得mRNA為模板通過熟知的方法用逆轉錄酶合成cDNA,如Okayama等的方法(分子細胞生物學,2卷,161頁(1982);同一雜志,3卷,280頁(1983)),或Hoffman等的方法(基因,25卷263頁(1983)),再反轉成雙鏈cDNA。用帶此cDNA的質粒載體,噬菌體載體,或Cosmid載體轉化大腸桿菌,或在體外包裝后轉染大腸桿菌制備出cDNA文庫。
            本發明所用質粒載體不受限制,只要它們可在宿主中復制并維持。任何可在宿主中復制的噬菌體載體均可應用。常用的克隆載體如pME 18S,λZAPII(1 ZAPII),pUC 19,λgt 10,λgt 11等。用載體進行如下免疫學篩查。若載體帶有可在宿主體內表達本發明之多肽的基因的啟動子則較優選應用。
            cDNA可插入質粒,方法如Maniatis等的(分子克隆,實驗室手冊,第二版,冷泉港實驗室,p.1.53,1989)。cDNA可插入噬菌體載體,方法如Hyunh等(DNA克隆,實用方法,1卷,49頁(1985))。這些方法可用商品化克隆試劑盒(如Takara Shuzo的產品)簡便地完成。這樣所得的重組質粒或噬菌體載體被導入適當的宿主細胞如原核細胞(如,大腸桿菌XL1BLueMRF′,DH5α,HB101,MC 1061/P3,等)。
            將質粒導入宿主的方法舉例如氯化鈣法,氯化鈣/氯化銣法,見分子克隆實驗室手冊(第二版,冷泉港實驗室,p.1.74,(1989)),以及電穿孔法。將噬菌體載體導入宿主細胞的方法如將噬菌體DNA體外包裝后等入生長的宿主。體外包裝可簡單地用商品試劑盒完成(如Stratagene或Amersham的產品)。
            編碼本發明之多肽的cDNA可從用上述方法制備的cDNA文庫中用組合總cDNA篩選法分離。
            例如,含所需cDNA的克隆可用已知菌落雜交法(Crunstein等,美國國家科學院院刊,72卷,3961頁(1975))篩選,或用蝕斑雜交法(分子克隆實驗室手冊,第二版,冷泉港實驗室,p.2.108(1989))以32P標記的化學合成的寡核苷酸(相應于本發明之多肽的氨基的序列)為探針。另外,帶有編碼本發明之多肽中特殊區段的DNA片段的克隆可用合成的PCR引物經PCR擴增該區段而篩選得到。
            應用經cDNA表達載體(如λZAPII噬菌體載體)制備的cDNA文庫時,所需克隆可用抗原-抗體反應來篩選,所用抗體針對的是本發明的多肽。當有多個克隆需篩選時,較優選用PCR為篩選方法。
            如此所得DNA的核苷酸序列或用Maxam-Gilbert法(Maxam等,美國國家科學院院刊,74卷,560頁(1977))或用M13噬菌體比雙脫氧核苷酸合成鏈終止法(Samger等,美國國家科學院院刊,74卷,5463-5467頁(1997))測定。編碼本發明的多肽的基因的全部或部分的方法是用限制性內切酶切割上述所獲克隆等而獲得的。
            (2)編碼本發明之多肽的DNA可分離自衍生于表達上述本發明多肽的細胞的基因組DNA,方法如下這些細胞較優選用SDS或蛋白激酶K溶解,經反復苯酚抽提使DNA去蛋白。RNA較優選用核糖核酸酶消化。所得DNA用適當的限制酶作部分消化,所得DNA片段用適當的噬菌體或cosmid質粒擴增以產生文庫。然后,檢測帶所需序列的克隆,如用放射性標記的DNA探針,編碼本發明的多肽的基因的全部或部分可從克隆中經限制酶切割等方法獲得。
            編碼人源多肽的cDNA獲取方法如下;制備其中導入了人基因組DNA(染色體DNA)的Cosmid文庫(“實驗室手冊人類基因圖譜”,Maruzen出版),含所需蛋白編碼區的DNA的陽性克隆經篩選該Cosmid文庫可獲得。然后,上述cDNA文庫用陽性克隆經切割成的編碼DNA密碼作探針進行篩選以制備人cDNA。
            (3)基于SEQ ID NO1,3,4,5,或6的核苷酸序列,還可用常規方法化學合成本發明的DNA。
            本發明還涉及包含編碼本發明的上述細胞表面分子(多肽)的DNA的重組載體。該重組載體不受限制,只要它能在各種原核和/或真核宿主中復制和維持或能自我復制。本發明的載體包括質粒載體和噬菌體載體。
            重組載體的制備可簡單地將編碼本發明多肽的DNA與本領域內可用于重組的載體(質粒DNA或噬菌體DNA)按常規方法連接而成。用于重組的載體特別有大腸桿菌質粒如pBR322,pBR 325,pUC12,pUC13和pUC19,酵母質粒如pSH19和pSH15,枯草桿菌質粒如pUB110,pTP5,和pC194。噬菌體的實例有λ噬菌體,動物或昆蟲的病毒(pVL 1393,Invitragen)如逆轉錄病毒,痘苗病毒,及核型多角體病毒。
            表達載體有用于表達DNA所編碼的本發明的多肽,并產生該多肽。表達載體不受限,只要它能在各種原核和/或真核宿主細胞中表達該基因所編碼的本發明的多肽并生產該蛋白。其實例有pEFneo(美國國家科學院院刊,91卷,158-162頁(1994)),pEF-BOS(核酸研究,18卷,5322頁(1990)),pME 18S(實驗醫學增刊,“基因工程手冊”(1992)),pMAL C2,等等。
            當細菌,尤其是大腸桿菌被用作宿主細胞時,表達載體通常至少由包括啟動子/操縱子區,起始密碼,編碼本發明多肽的DNA,終止密碼,終止子區,及復制子組成。
            當用酵母,動物細胞,或昆蟲細胞作宿主時,表達載體的優選至少由啟動子,起始密碼,編碼本發明多肽的DNA,終止密碼組成。還可能包含編碼信號肽的DNA,增強子序列,編碼本發明多肽的基因的5′-和3′-非翻譯區,剪切連接,多聚腺嘌呤化位點可選擇標記區,及復制子。如有必要,該表達載體還可包含常用的用于基因擴增的基因(標志)。
            細菌中表達本發明的多肽的啟動子/操縱子區包括啟動子,操縱子和Shine-Dalgarno(SD)序列(如AAGG)。例如,若宿主為大腸桿菌,則優選包括Trp啟動子,lac啟動子,recA啟動子,λPL啟動子,Ipp啟動子,tac啟動子或其他類似啟動子。酵母中表達本發明之多肽的啟動子實例有PH05啟動子、PGK啟動子,GAP啟動子,ADH啟動子等等。若宿主為芽孢桿菌,其實例有SL01啟動子,SP02啟動子,penP啟動子等。當宿主是諸如哺乳動物是真核細胞時,其實例是SV 40衍生的啟動子,逆轉錄病毒啟動子,熱休克啟動子,EF啟動子等等,優選SV-40,SRα,逆轉錄病毒衍生的啟動子。當然,啟動子不限于上述實例。此外,應用增強子將使表達更有效。
            優選的啟始密碼如甲硫氨酸密碼(ATG)。
            常用的終止密碼(如TAG,TGA,TAA等)均在此用作終止密碼。
            常用的天然或合成終止子也用于作終止子區。
            復制子意指可在宿主細胞中復制全長DNA序列的DNA,包括天然質粒,人工修飾質粒(從天然質粒制備的DNA片段),合成質粒等。優選質粒的實例有用于大腸桿菌的pBR322或其人工衍生物(用適當限制酶處理所得DNA片段),用于酵母的酵母2μ質粒或酵母染色體DNA,用于哺乳動物細胞的pEFneo,pME18S,pRSVneo ATCC 37198,pSV2dhfr ATCC 37145,pdBPV-MMTneo ATCC 37224,pSV2neo ATCC 37149等。
            本領域常用的增強子序列,多聚腺苷酸化位點和剪接連接,如SV 40衍生的那些,均用于此。
            可按常規方法使用可選擇性標志物。其實例有抗生素耐藥基因,如四環素、新霉素、氨芐青霉素、卡那霉素、及胸苷激酶基因。
            用于基因擴增的基因實例有二氫葉酸還原酶、(DHFR)基因、胸苷激酶基因、新霉素耐藥基因、谷氨酸合成酶基因、腺苷脫氨酶基因、鳥氨酸脫羧酶基因、潮霉素-B-磷酸轉移酶基因,天冬氨酸轉氨甲酰酶基因。
            本發明的表達載體可通過持續、循環地連接至少上述啟動子,起始密碼,編碼本發明之多肽的DNA(基因),終止密碼,及終止子區至合適的復制子上而制備。若有需要,適當的DNA片段(如連接子,其它限制酶位點)均可用諸如限制酶消化或以T4 DNA酶連接的常用方法而使用。
            本發明的轉化體可通過向宿主細胞導入上述表達載體而制備。
            本發明所用宿主細胞不限,只要能兼容上述表達載體并可被轉化。其實例如天然細胞或人工建成的重組細胞,均常用于本發明的技術領域(如細菌(埃希氏菌和芽孢桿菌),酵母(酵母屬,畢赤酵母屬等),動物細胞,或昆蟲細胞)。
            優選大腸桿菌或動物細胞。具體例子有大腸桿菌(DH5α,XL1Blue MRF′,TB1,HB101等),小鼠衍生的細胞(COP,L.C127,Cp210,NS-1,N2H3T3,等),大鼠源細胞,倉鼠源細胞(BHK,CH0-K1,CHO等),猴源細胞(cos1,cos3,cos7,cv1,Velo,等),及人源細胞(HEK 293,Hela,二倍體成纖維細胞衍生細胞,黑色素瘤,Namalwa等)。
            表達載體可用已知方法導入(轉化(轉導))宿主細胞。
            若宿主為細菌(大腸桿菌,枯草桿菌等)時,轉化可按Cohen等的方法(美國國家科學院院刊69卷2110頁(1972)),原生質體法(分子基因遺傳學,18卷,111頁(1979)),或感受態法(分子生物學雜志,56卷,209頁(1971)),若宿主為釀酒酵母,轉化可用Hinnen等人的方法(美國國家科學院院刊75卷,1927頁(1978))或鋰法(細菌學雜志,153卷,163頁(1983)),若宿主為動物細胞用Graham法(病毒學,52卷,456頁(1973)),若宿主為昆蟲細胞,用Summers等人的方法(分子細胞生物學,3卷,2156-2165頁(1983))。
            生產本發明之多肽的方法可以是在營養培養基中培養包含上述制備的表達載體的轉化體(下文中該術語包括轉導子)。
            營養培養基較優選包含宿主細胞(轉化體)生長所必需的碳源,無機氮源,或有機氮源。碳源如葡萄糖、葡聚糖、可溶性淀粉及蔗糖、無機或有機氮源如銨鹽、硝酸鹽、氨基酸、玉米漿、蛋白胨、酪蛋白、肉浸汁、大豆糕,和馬鈴薯浸出汗。若有需要,還可包含其它營養(如,無機鹽(如氯化鈣,磷酸二氫鹽,氯化鎂)),維生素,抗生素(如四環素、新霉素、氨芐青霉素、卡那霉素等)。
            培養方法本領域熟知。所選培養條件如溫度、培養基的酸堿度、培養時間使本發明的多肽超量產生。
            下文例舉了根據不同宿主細胞所選用的特殊培養基和培養條件,但并非限制。
            若宿主為細菌、放線菌、酵母,絲狀真菌,適于用含上述營養源的液體培養基。優選用pH5至8的培養基。
            若宿主為大腸桿菌,優選培養基有LB培養基和M9培養基(Miller等,實驗分子遺傳學,冷泉港實驗室,431頁(1972))。用這些培養基,常于14至43℃培養約3至24小時,若有必要,通氣并攪拌。
            若宿主為芽孢桿菌,則根據需要于30至40℃通氣并攪拌培養約16至96小時。
            若宿主為酵母,培養基可選Burkholder基本培養基(Bostian,美國國家科學院院刊,77卷,4505頁(1980))。培養基pH值較優選5至8。根據需要于20至35℃通氣并攪拌培養14至144小時。
            若宿主為動物細胞,可選MEM培養基,內含5至20%胎牛血清(科學,122卷,501頁(1952)),DMEM培養基(病毒學,8卷,396頁(1959)),RPMI 1640培養基(美國醫學協會雜志,199卷,519頁(1967)),199培養基(Proc.Soc.Exp.Biol.Med.173卷,1頁(1950))。培養基pH值約6至8。根據需要于約30至40℃通氣攪拌培養約15至72小時。
            若宿主為昆蟲細胞,可用例如含胎牛血清的Grace′s培養基(美國國家科學院院刊,82卷,8404頁(1985))。pH優選約5至8。根據需要于約20至40℃通氣攪拌培養15至100小時。
            上述轉化體的培養,尤其動物細胞。可超量表達本發明之多肽于細胞表面。
            本發明的多肽可生產成可溶性肽段如胞外區片段,方法是用上述以編碼胞外區或各區的DNA制備轉化體,并培養轉化體使之將可溶性肽分泌于培養上清中。此外,本發明的融合多肽可用類似的方法制備。
            即,過濾或離心所獲培養物得到培養濾液(上清),從中純化并分離本發明的多肽或多肽片段,方法采用常用于純化和分離天然或合成蛋白質的常規方法。
            分離及純化法實例有利用溶解度的方法,如鹽析法和溶劑沉淀法,利用分子量差異的方法如透析,超濾,凝膠過濾,十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳,利用電荷的方法如離子交換層析和羥基磷灰石層析,利用特異性親和的方法如親和層析,利用疏水性差異的方法如反相高效液相層析,及利用等電點差異的方法如等電聚焦。
            若本發明之多肽或多肽片段存在于所培養轉化體的周質或胞質,首先,用常規方法如過濾或離心并懸浮于適當緩沖液的方法收獲真菌菌體或細胞,經超聲破碎、溶酶體法、凍融法等方法破壞細胞壁和/或細胞膜等之后,含本發明之多肽的膜部分用諸如離心或過濾的方法獲得。用去污劑如Triton-X100溶解膜部分獲得粗提物。最后,用上文舉例的常規方法從粗提物中分離及純化多肽或多肽片段。
            “轉基因小鼠”在本發明中指這樣一種轉基因小鼠,其中按上述制備的來源于除小鼠以外的動物(非自身)編碼本發明多肽的DNA已整合在該小鼠的內源基因位點上。該轉基因小鼠在其體內表達并分泌非自身多肽。
            轉基因小鼠可按常規方法制備(如見“動物細胞實驗最新手冊”,LIC出版,第7章,361-408頁,(1990))。
            具體地,如用表達載體轉化得自正常小鼠胚泡的胚胎干細胞ES細胞,該載體基因中可操作性插入有編碼本發明之人源多肽(即“人JTT-1抗原”)的基因。ES細胞的內源基因中整合了編碼本發明的人源多肽的基因,用常規方法篩選。然后,所選ES細胞微注射入來自另一正常小鼠Pro受精卵胚泡(美國國家科學院院刊,77卷,12期,7380-7384頁(1980);美國專利號4,873,191)。該胚泡移植入了另一正常小鼠(養母)的子宮。然后,養母小鼠生出建立者(founder)小鼠(子代小鼠)。將建立者(founder)小鼠與正常小鼠交配,獲得異源轉基因小鼠。將異源轉基因小鼠相互交配,根據孟德爾定律獲得同源轉基因小鼠。
            本發明的“基因敲出小鼠”是其編碼本發明之小鼠源多肽(即“小鼠源JTT-1抗原”)的內源基因已被基因敲出(滅活)。可用例如陽性陰性選擇法制備,其中應用了同源重組(美國專利號5,464,764;5,487,992;5,627,059,美國國家科學院院刊86卷,8932-8935頁(1989);自然,342卷,435-438頁(1989);等等)。
            “抗體”在本發明中可以是多克隆抗體(抗血清)或單克隆抗體,優選單抗。
            特別是可與上述本發明之多肽或多肽片段反應(對抗,結合)的抗體。
            本發明的抗體可以是用抗原免疫接種哺乳動物而得的天然抗體,其中哺乳動物如小鼠、大鼠,倉鼠,豚鼠,兔。抗原如表達本發明之“細胞表面分子”的細胞(天然細胞,細胞系,腫瘤細胞等),于其表面超表達在該細胞表面用重組DNA技術制備的本發明之多肽或細胞表面分子的轉化體,或本發明的“多肽片段”或“融合多肽”。本發明之抗體還包括可用重組DNA技術生產的嵌合抗體和人化抗體(CDR-移植抗體),可用產生人類抗體的轉基因小鼠生產的人類抗體。
            單抗包括具有IgG,IgM,IgA,IgD,或IgE中任一同種型的那些,優選IgG或IgM。
            本發明的多克隆抗體(抗血清)和單克隆抗體可用已知方法制備。即,用如上述某種抗原免疫接種哺乳動物,必要時可加弗氏佐劑。該哺乳動物優選小鼠,大鼠,倉鼠,豚鼠,兔,貓,狗,豬,山羊,馬或牛,或更優選小鼠,大鼠,倉鼠,豚鼠,或兔。
            多克隆抗體可從如此免疫接種的動物的抗血清中獲得。此外,單抗如下生產。用獲自如此接種動物所得產抗體細胞及不產自身抗體的骨髓瘤細胞的產抗體細胞制備雜交瘤。克隆雜交瘤,篩選對用于免疫接種哺乳動物的抗原有特異親和力的單抗生產克隆。
            具體地,該單抗可如下生產。用上述抗原作免疫原,對非人類哺乳動物,特別是小鼠,大鼠,倉鼠,豚鼠或兔,較優選小鼠,大鼠或倉鼠(包括為生產其它動物抗體而產生的轉基因小鼠如下文中產生人類抗體的轉基因小鼠),經皮下,肌肉,靜脈,腳掌或腹膜內注射或植入一次或多次,完成免疫接種(如有必要,抗原配合弗氏佐劑)。通常,初次免疫接種后每隔1至14天再接種1至4次。末次接種的約1至5天后可得產抗體細胞。免疫接種的頻率和時間間隔可根據所用免疫原的特點適當安排。制備分泌單抗的雜交瘤可用Kohler及Milstein的方法(自然,256卷,495-497頁(1975))或其修改方法。即,用上述已免疫接種的非人哺乳動物的脾。淋巴結,骨髓或扁桃體(優選脾)的產抗體細胞與無產生自身抗體能力的優選地來自哺乳動物如小鼠,大鼠,豚鼠,倉鼠,兔或人,或更優選小鼠,大鼠,或人的骨髓瘤細胞融合以制備雜交瘤。
            例如,小鼠源骨髓瘤P3/X63-AG8.653(653),P3/NSI/1-Ag4-1(NS-1),P3/X63=Ag8.U1(P3U1),SP2/0-Ag14(Sp2/0,Sp2),PAI,F0,或BW 5147,大鼠源骨髓瘤210RCY3-Ag.2.3,或人源骨髓瘤U-266AR1,GM 1500-6TG-A1-2,UC 729-6,CEM-AGR,D1R11,或CEM-T15可用作該細胞融合中的骨髓瘤。
            篩選產單抗的雜交瘤克隆方法可以是培養雜交瘤于如微滴板上,對發現有雜交瘤生長的各孔測培養上清對上述免疫接種所用免疫原的反應性,所用方法如酶免疫試驗(如RIA和ELISA)。
            雜交瘤單抗可產生于通過培養雜交瘤于體外或體內如小鼠,大鼠,豚鼠,倉鼠,兔,較優選小鼠或大鼠。更優選小鼠的腹水中,從最后的培養上清或哺乳動物腹水中分離抗體。
            體外培養雜交瘤可根據要培養細胞的特點,研究目的及培養法和各種條件,用已知營養培養基或衍生于已知基礎培養基的任何營養型培養基培養,維持,并貯存雜交瘤以便在培養上清中產生單抗。
            基礎培養基的例子有低鈣濃度培養基如Ham′F12培養基,MCDB 153培養基,或低鈣濃度MEM培養基,還有高鈣濃度培養基如MCDB 104培養基,MEM培養基,DMEM培養基,1640培養基,ASF 104培養基或RD培養基。基礎培養基可根據目的包含如血清、激素,細胞因子和/或各種無機或有機物。
            從上述培養上清或腹水中分離并純化單抗可用飽和硫酸銨沉淀,優球蛋白沉淀法,己酸法,辛酸法,離子交換層析(DEAE或DE52),抗免疫球蛋白柱或蛋白A柱的親和層析。
            本發明之單抗的優選實例如下。
            (1)單抗,可針對有SEQ ID NO2的氨基酸序列的多肽,其衍生的多肽片段,或由該多肽構成的人源細胞表面分子起反應;(2)單抗,可針對本發明的多肽,其衍生的多肽片段,或由該多肽構成的細胞表面分子起反應,其中單抗在絲裂原刺激的淋巴母細胞上的作用實質上等同于由國際保藏號FERM BP-5707所鑒定的雜交瘤所產生的單抗在絲裂原刺激的大鼠淋巴母細胞上的作用;(3)單抗,可針對本發明的多肽,其衍生的多肽片段,或由該多肽組成的細胞表面分子,其中該單抗對絲裂原刺激的淋巴母細胞的作用實質上等同于由國際保藏號FERM BP-5708所鑒定的雜交瘤所產單抗對絲裂原刺激的大鼠淋巴母細胞的作用。
            此外,本發明的單抗包括由國際保藏號FERM BP-5707或FERM BP-5708所鑒定的雜交瘤所產單抗。
            本發明的“嵌合單抗”是用遺傳工程制備的單抗,特指嵌合的抗體諸如小鼠/人嵌合單抗,其可變區衍生自非人哺乳動物(小鼠、大鼠、倉鼠等)的免疫球蛋白而其恒定區來自人免疫球蛋白。
            人免疫球蛋白可變區具有生每種同種型如IgG(IgG1,IgG2,IsG3,IgG4),IgM、IgA,IgD和IgE所固有的氨基酸序列。本發明之重組嵌合單抗的恒定區可以是任何同種型的人免疫球蛋白的。優選是人IgG的恒定區。
            本發明的嵌合單抗可如下生產。無需說,該生產方法并非限制與此。
            小鼠/人嵌合單抗可參照實驗醫學;增刊,卷1.6,10期(1988);已審查公布的日本專利申請(JP-B)號Hei 3-73280制備。即將活化VH基因下游的CH基因與活化VL基因下游的CL基因可操作插入相同或不同載體表達,其中CH基因(編碼H鏈恒定區的C基因)得自編碼人免疫球蛋白的DNA;活化VH基因(重排的編碼H鏈可變區的VDJ基因)得自編碼小鼠單抗的DNA,該單抗分離自產生該單抗的雜交瘤,CL基因(編碼L鏈恒定區的C基因)得自編碼人免疫球蛋白的DNA,活化的VL基因(重排的編碼L鏈可變區的VJ基因)得自小鼠編碼單抗的DNA,該單抗分離自雜交瘤。隨后用該表達載體轉化宿主細胞,再培養該轉化體。
            具體地,DNA首先用常規方法抽提自小鼠單抗生成的雜交瘤。再用適當的限制酶(如EcoRI和HindIII)消化,電泳(用如0.7%瓊脂糖凝膠),用Southern印跡分析。電泳膠經染色,如溴化乙錠染色并攝相,膠中顯示標志物位置,用水洗兩次,在0.25M HCl中浸泡15分鐘。然后,將膠浸于0.4NNaOH溶液溫和攪拌10分鐘。DNA用常規方法轉移4小時至濾膜上。濾膜重新用2×SSC覆蓋并洗兩次。濾膜充分干燥后,于75℃烘烤3小時。再用0.1×SSC/1%SDS于65℃將濾膜處理膜30分鐘。然后,浸于3×SSC/0.1%SDS。所得濾膜用預雜交溶液在塑料袋中于65℃處理3至4小時。
            下一步,向塑料袋中加入32P標記的探針DNA和雜交溶液65℃反應12小時,隨后濾膜在適宜鹽濃度,反應溫度和時間(如2×SSC-0.1%SDS,室溫10分鐘)清洗。將濾膜放入有2×SSC的塑料袋中,封袋后進行放射自顯影。
            用上述Southern印跡法鑒別重排的編碼小鼠單抗H鏈和L鏈的VDJ基因和VJ基因。用蔗糖密度梯度離心分離含有所鑒別DNA片段的區域,插入噬菌體載體(如charon 4A,charon 28,λEMBL 3,λEMBL 4等)。大腸桿菌(如LE 392,MM 539等)用該噬菌體載體轉化以產生基因組文庫。用蝕斑雜交篩選該基因組文庫,方法如Benton-Davis方法(科學,196卷,180-182頁(1977)),用適當探針(H鏈J基因,L鏈(K)J基因等)以獲得含重排的VDJ基因或VJ基因的陽性克隆。制所得克隆的限制酶圖譜并測定其核苷酸序列,確證所得基因中含有所期望的重排VH(VDJ)基因或VL(VJ)基因。
            用于嵌合的人CH基因和人CL基因單獨分離。如,當嵌合抗體用人IgG1產生時,Cγ1基因作為CH基因被分離,CK基因作為CL基因被分離。這些基因可從人基因文庫中分離,用分別相應于人Cγ1基因和人CK基因的小鼠Cγ1基因和小鼠CK基因作探針,利用小鼠免疫球蛋白基因和人免疫球蛋白基因核苷酸序列的高度同源性。
            具體地,包含人CK基因和一個增強子區的DNA片段分離自人類λCharon4A Hae III-AluI基因組文庫(細胞,15卷,1157-1174頁(1978)),探針為,如,克隆Ig146的3kb HindIII-BamHI片段(美國國家科學院院刊75卷,4709-4713頁(1978))和克隆MEP 10的6.8kb EcoRI片段(美國國家科學院院刊,78卷,474-478頁(1981))。此外,如人胚肝細胞DNA用HindIII消化并經瓊脂糖凝膠電泳分離后,一個5.9kb的片段被插入λ788,再用上述探針就分離到人Cγ1基因。
            用如此獲得的小鼠VH基因,小鼠VL基因,人CH基因和人CL基因,并考慮啟動子區和增強子區,就可用常規方法用合適的限制酶和DNA連接酶將人CH基因插入小鼠VH基因的下游,并將人CL基因插入小鼠VL基因下游,最終進入諸如pSV2gpt或pSV2neo之類的表達載體。在這種情況下,小鼠VH基因/人CH基因的嵌合基因,小鼠VL基因/人CL基基因的嵌合基因可分別插入同一個或不同的表達載體。
            如此制備的插入了嵌合基因的表達載體被導入不產生抗體的骨骨瘤如P3X63·Ag8·653細胞或SP 210細胞,方法有原生質體融合法,DEAE-葡聚糖法,磷酸鈣法或電穿孔法。將轉化體培養在與插入表達載體的耐藥基因相應的藥物培養基中進行篩選,而獲得產生預期嵌合單抗的細胞。
            從如此篩選到的抗體生成細胞的培養上清可獲得預期嵌合單抗。
            本發明的“人化單抗(CDR-移植抗體)”是經遺傳工程所制單抗,并特指人化的單抗,其中超變區的互補決定區部分或全部來自非人哺乳動物(小鼠,大鼠,倉鼠等)單抗的超變區互補決定區,可變區的框架區來自人免疫球蛋白的可變區框架區,恒定區來自人免疫球蛋白的恒定區。
            超變區的互補決定區在抗體可變區的超變區中,指三個直接互補結合抗原的區域(互補決定殘基,CDR 1,CDR 2和CDR 3)。可變區的框架區指位于三個互補決定區上游、下游或之間的4個相當保守區(框架區FR1,FR2,FR3和FR4)。
            換句話說,人化單抗指其完整區域中除了非人哺乳動物源的單抗超變區的互補決定區部分或全部被其相應的源于人免疫球蛋白區域取代的那些。
            源于人免疫球蛋白恒定區有固有于各個同種型如IgG(IgG1,IgG2,IgG3,IgG4),IgM,IgA,IgD和IgE中的氨基酸序列。本發明中人化單抗的恒定區可是來自屬于任一種同種型的人免疫球蛋白。較優選為人IgG的恒定區。來自人免疫球蛋白的恒定區的框架區無特別限制。
            本發明的人化單抗生產方法舉例如下。無需說,生產方法不限于此。
            如,經遺傳工程制備小鼠單抗衍生的重組人化單抗,參照未審查的日本專利發表(JP-WA)號Hei4-506458和未審查的日本專利發表(JP-A)號Sho62-296890。即,從產小鼠單抗的雜交瘤分離出至少一個小鼠H鏈CDR基因及其相應的至少一個小鼠L鏈CDR基因,從人免疫球蛋白基團中分離出編碼除對應于上述小鼠H鏈CDR的人H鏈CDR以外的全部區的人H鏈基因,和編碼除對應于上述小鼠L鏈CDR的人L鏈CDR以外的全部區的人L鏈基因。
            如此分離到的小鼠H鏈CDR基因和人H鏈基因可操作插入適宜載體使它們表達。相似地,小鼠L鏈CDR基因和人L鏈基因可操作插入另一適宜載體使它們表達。或者,小鼠H鏈CDR基因/人H鏈基因和小鼠L鏈CDR基因/人L鏈基因可操作插入同一表達載體使它們表達。用如此制備的表達載體轉化宿主細胞以獲得產生人化單抗的轉化體。通過培養轉化體,可從培養上清中獲得預期的人化單抗。
            本發明的“人單抗”所指免疫球蛋白,其中含組成免疫球蛋白的H鏈可變區和恒定區,L鏈可變區和恒定區的完整區域由編碼人免疫球蛋白的基因產生。
            人抗體的產生方法可同于上述多克隆抗體或單抗的產生方法,即用抗原免疫轉基因動物,例如該動物如小鼠用常規方法在適當位點整合了至少人的免疫球蛋白基因。
            例如制備可產人抗體的轉基因小鼠的方法描述在自然遺傳學,7卷,13-21頁(1994);自然遺傳學,15卷,146-156頁(1997);JP-WA編號Hei4-504365和Hei 7-509137;Nikkei科學,6期,40-50頁(1995);國際專利發表號WO 94/25585;自然,368卷,856-859頁(1994);和JP-WA編號Hei 6-500233。
            此外,可應用用于從轉基因奶牛或豬的奶中產生人源蛋白的最新開發技術(Nikkei科學,78-84頁(1997年4月))。
            用于本發明的“抗體的部分”指上述單抗的部分區域,并具體指F(ab′)2,Fab′,Fab,Fv(抗體可變片段),sFv,dsFv(二硫鍵所穩定的Fv),或dAb(單區抗體)(Exp.Opin.Ther.Patents,6卷,5期,441-456頁(1996))。
            “F(ab′)2”和“Fab′”可用如胃蛋白酶和木瓜蛋白酶等處理免疫球蛋白(單抗)產生,意思指消化在兩條H鏈每一個的絞鏈區之間二硫鍵附近的免疫球蛋白所產生的抗體片段。如木瓜蛋白酶在兩條H鏈中每一個的絞鏈區之間的二硫鍵IgG上游切割,產生兩個同源的抗體片段,其中L鏈由VL(L鏈可變區)和CL(L鏈恒定區)組成,H鏈片段由VH(H鏈可變區)和CHγ1(H鏈恒定區的γ1區)組成,L鏈和H鏈在它們的C末端區通過二硫鍵連接。這樣兩個同源的抗體片段的每一個均稱Fab′。胃蛋白酶也在兩個H鏈的每一個的絞鏈區的二硫鍵的IgG下游切割,產生的抗體片段略大于其中兩個上述Fab′在絞鏈區連接而成的片段。該抗體片段稱F(ab′)2。
            本發明中“藥學組合物”包括上文規定的本發明的任一個“多肽”;含該多肽的“同型二聚體分子”,“多肽片段”;“融合多肽”;包括該融合多肽的“同型二聚體分子”,“抗體”,或“抗體的部分”;以及一個可藥用載體。
            “可藥用載體”包括賦形劑,稀釋劑,膨脹劑,分解劑,穩定劑,防腐劑,緩沖液,乳化劑,芳香劑,著色劑,加甜劑,增粘劑,生泡劑,增溶劑或其它添加劑。用一種或更多這樣的載體可將藥學組合物配成片劑,藥丸,藥粉,藥粒,注射液,溶液,膠囊,錠劑,酏劑,懸浮液,乳劑或糖漿。藥學組合物可口服或不經胃腸道服用。非胃腸道給藥的其它形式包括外用溶液,直腸用藥及陰道栓劑,按常規方法開處方,其中包含一種或更多種有效成分。
            劑量根據年齡,性別,體重,病癥,治療效果,給藥途徑,治療階段,或藥學組合物中所含有效成分的種類(上述多肽或抗體)而有變化。一般,成人給藥劑量為每次10μg-1000mg(或10μg-500mg)。根據不同情況,低于上述劑量在某些病例中可能足夠,多于上述劑量在其它病例中可能是必需的。
            尤其,注射劑的產生可將抗體溶解于或懸浮于無毒性可藥用載體如生理鹽水或市售注射用蒸餾水,調成0.1μg抗體/ml載體至10mg抗體/ml載體的濃度。如此產生的注射液可給藥于需要治療的病人,劑量為1μg-100mg/kg體重,較優選50μg-50mg/kg體重,一天一次或多次給藥。給藥途徑的實例均為醫療上適當的給藥途徑如靜脈注射,皮下注射,皮內注射,肌肉注射,或腹膜內注射,較優選靜脈注射。
            注射劑也可制入非水相稀釋劑(如丙二醇,聚乙二醇,植物油如橄欖油,醇類如乙醇),懸浮液,或乳液中。
            注射劑濾過除菌濾器,或與殺菌劑混合,或輻射可滅菌。注射劑可制成備用形式。即凍干為無菌固相組合物,用之前溶解于注射用無菌蒸餾水或其它溶劑。
            本發明的藥學組合物可用于治療或預防由淋巴細胞如T細胞的活化和活化淋巴細胞功能的調節所致的各種自身免疫病,過敏性疾病,或炎癥性炎病。病例有類風濕性關節炎,多發性硬化癥,自身免疫性甲狀腺炎,過敏性接觸性皮炎,慢性炎癥性皮膚病如扁平癬,系統性紅斑狼瘡,胰島素依賴型糖尿病和牛皮癬。
            本發明之藥學組合物對多種疾病的治療效果可用常規方法將它給藥于已知疾病的動物模型而檢測。
            模型的實例包括(1)(NZB/NZW)F1小鼠,人系統性紅斑狼瘡(SLE)的模型(科學,科學125卷,1225-1227頁,1994),(2)實驗性過敏性腦脊髓炎(EAE),多發性硬化癥(MS)模型(臨床調研雜志,95卷,2783-2789頁(1995))。(3)NOD(非肥胖糖尿病)小鼠,胰島素依賴型糖尿病(IDDM)模型(實驗醫學雜志,181卷,1145-1155頁(1995)),(4)腎小球基底膜免疫所致大鼠腎炎模型,Goodpasture′s腎炎模型(歐洲免疫學雜志,24卷,6期,1249-1254頁(1994)),(5)DBA/1小鼠,人類風濕性關節炎模型(歐洲免疫學雜志,26卷,2320-2328頁(1996))。
            圖的描述

            圖1為顯微攝影,顯示FTL 435細胞經“JTT-1抗體”誘導的凝集狀態和該細胞凝集受“JTT-2抗體”抑制的狀態。
            其中(a)示無任何雜交瘤上清時細胞狀態,(b)示“JTT-1抗體”誘導的細胞凝集狀態,(c)示有“抗-ICAM-1抗體”及“JTT-1抗體”時細胞狀態,(d)示有“JTT-2抗體”與“JTT-1抗體”共同作用的細胞凝集狀態。
            圖2是顯微攝影,顯示FTL 435細胞和大鼠活化的淋巴母細胞經“JTT-1抗體”誘導的細胞凝集狀態和“JTT-2抗體”對細胞凝集的抑制狀態。
            其中(a)示無任何抗體時FTL 435細胞的狀態,(b)示有PMA時FTL 435細胞的狀態,(c)示有“JTT-1抗體”時FTL 435細胞的狀態,(d)示有抗LFA-1抗體與“JTT-1抗體”時FTL 435細胞的狀態,(e)示有抗CD18抗體與“JTT-1抗體”時FTL 435細胞的狀態,(f)示有抗ICAM-1抗體與“JTT-1抗體”時FTL 435細胞的狀態,(g)示無任何抗體時活化的淋巴母細胞的狀態,(h)示有PMA時活化淋巴母細胞的狀態,(i)示有“JTT-1抗體”時活化淋母細胞的狀態,(j)示有抗LFA-1抗體與“JTT-1抗體”時活化淋母細胞的狀態,(k)示有抗CD18抗體與“JTT-1抗體”時活化淋母細胞的狀態,(l)示有抗ICAM-1抗體與“JTT-1抗體”時活化淋母細胞的狀態。
            圖3顯示用流式細胞儀測量的“JTT-1抗原”和“JTT-2抗原”在不同細胞中的表達狀態。
            圖4顯示用流式細胞儀測量的“JTT-1抗原”在不同淋巴細胞中的表達狀態。
            圖5為照片,顯示經SDS-PAGE分析“JTT-1抗原”的電泳圖譜。
            圖6為顯微攝影,顯示大鼠胸腺細胞對包被有純化的“JTT-1抗原”的微滴板的粘附狀態,其粘附在“JTT-1抗體”存在時受誘導,和“JTT-2抗體”抑制細胞粘附的狀態。
            其中(a)示細胞對未包被“JTT-1抗原”的板的粘附狀態,(b)示無任何抗體時細胞對包被“JTT-1抗原”的板的粘附狀態,(c)示在有“JTT-1抗體”的Fab片段時細胞對包被“JTT-1抗原”的板的粘附狀態,(d)示有“JTT-2抗體”與“JTT-1抗體”Fab片段時細胞對包被“JTT-1抗原”的板的粘附狀態。
            圖7顯示熒光強度測量所得胸遙細胞粘附于包被有純化“JTT-1抗原”的板的相對細胞數。
            “Ag(-)”示未包被“JTT-1抗原”的板中相對細胞數,“Ag(+)”示無任何抗體時包被“JTT-1抗原”的板中相對細胞數,“Ag(+)+JTT-1Fab”示有“JTT-1抗體”Fab段時包被“JTT-1抗原”的板中的相對細胞數,“Ag(+)+JTT-1 Fab+JTT-2”示有“JTT-2抗體”與“JTT-1抗體”Fab段時包被了“JTT-1抗原”的板中的相對細胞數。
            圖8示流式細胞儀測得“大鼠“JTT-1抗原”和“大鼠JTT-1抗原”在COS細胞中的表達狀態,該細胞轉化有編碼“大鼠JTT-1抗原”的cDNA。
            圖9顯示親水性圖分析所揭示的“JTT-1抗原”氨基酸序列的結構特征。
            圖10顯示人,大鼠和小鼠“JTT-1抗原”及“大鼠JTT-1抗原”突變體的氨基酸序列間的同源性。
            圖11顯示“人JTT-1抗原”,“人CD28分子”和“人CTLA-4分子”中的基序的氨基酸序列同源性和保守狀態。
            圖12圖示了“人JTT-1抗原”,“人CD28分子”和“人CTLA-4分子”的蛋白質二級結構和它們之間的相似性。
            圖13圖示了編碼“小鼠JTT-1抗原”的基因組DNA的結構。
            圖14顯示“大鼠JTT-1抗原”及其另一種剪接實變體之間氨基酸序列的差別。
            圖15顯示用[3H]胸苷摻入法測得的人外周血淋巴細胞受抗“人JTT-1抗原”的單抗誘導后的生長程度。
            縱坐標示[3H]胸苷摻入細胞的量(dpm)。
            圖16顯示疾病模型大鼠中,抗“JTT-1抗原”的單抗對實驗性過敏性腦脊髓炎(EAE)的療效。
            縱坐標顯示病癥的得分程度,橫坐標示免疫誘導EAE后的天數。
            圖17顯示在疾病模型大鼠中,抗“JTT-1抗原”的單抗對大鼠腎小球腎炎的療效。
            縱坐標示蛋白尿排泄量,橫坐標示免疫誘導腎小球腎炎后的時間(周數)。
            圖18顯示用蛋白A Sephaobse柱純化融合多肽(“大鼠JTT-1抗原”胞外區與人IgFc(rJTT-1-IgFc))的直方圖。
            圖19為照片,顯示rJTT-1-IgFc經SDS-PAGE分析所得電泳圖譜。
            圖20顯示用蛋白A Sepharose柱純化融合多肽(“人JTT-1抗原胞外區和人IgFc(hJTT-1-IgFc))的直方圖。
            圖21為照片,顯示hJTT-1-IgFc經SDS-PAGE分析所得電泳圖譜。
            圖22圖示了用于制備其中導入了編碼“大鼠JTT-1抗原”的cDNA的轉基因小鼠的基因轉移(靶向)載體的結構。
            實施本發明的最佳方式本發明參照以下實施例作更詳細描述,但不能理解成本發明限定于此。
            實施例1 單抗制備按Kohler等的方法制備產抗體的雜交瘤(Omori等,血液,81卷,101-111頁(1993)),按Kannagi等的方法制備單抗(實驗免疫學手則,4卷,117.21-117.21(1986))。
            首先,以大鼠胸腺瘤細胞系FTL 435的細胞作為免疫抗原對BALB/C小鼠足掌給藥,107細胞/小鼠,給藥時間為0,7,14和28天。只在首次免疫時將抗原與弗氏完全佐劑混合給藥。末次接種2天后,取出小鼠的淋巴結,用常規方法與小鼠骨髓瘤細胞PAI融合(JCR NO.B0113;Stocker,J.W.等,Res.Disclosure,217卷,155頁(1982)),以獲得很多產單抗的雜交瘤。
            實施例2 雜交瘤的篩選和單抗的鑒定篩選實施例1制備的雜交瘤的方法是,分析雜交瘤培養上清中產生的抗體對FTL 435細胞(免疫原)的作用。接種FTL 435細胞(5×106細胞/ml,0.1ml)至96孔板的每一孔中,在每個雜交瘤的培養上清存在下(每份10μg/ml)于37℃培養4小時。所得雜交瘤克隆“JTT-1”和“JTT-2”的結果示于圖1和圖2。
            顯示雜交瘤克隆“JTT-1”產生的單抗(“JTT-1抗體”)強烈凝集FTL435細胞(圖1(b)和圖2(c)),而加入“JTT-2抗體”強烈抑制FTL 435細胞受“JTT-1抗體”刺激所致的凝集(圖1(d))。不加任何雜交瘤上清的實驗孔為對照(圖1(a)和圖2(a))。
            為測定FTL 435細胞受“JTT-1抗體”刺激引起的凝集是否由于細胞間粘附分子-1(ICAM-1)和淋巴細胞功能相關抗原-1(LFA-1)之間的粘附作用所致(因為該細胞粘附是具有代表性的已知通道),在有抗大鼠ICAM-1抗體1A29(10μg/ml,IgG1)或抗大鼠LFA-1抗體(10μg/ml,IgG2a)與“JTT-1抗體”同時存在時37℃培養FTL 435細胞,1小時。
            “JTT-1抗體”刺激引起的FTL 435細胞凝集既不被抗ICAM-1抗體抑制,也不被抗LFA-1抗體(抗ICAM-1抗體圖1(c)和圖2(f);抗-LFA-1抗體,圖2(d))抑制。
            為進一步分析“JTT-1抗體”凝集細胞的能力。用上述相同方法分析該抗體凝集刀豆蛋白A活化的大鼠淋巴母細胞的能力。結果示于圖2。
            與對FTL 435細胞的作用相似,活化的淋巴母細胞的凝集是受到“JTT-1抗體”的刺激誘導的(圖2(i))。“JTT-1抗體”刺激所致的活化淋巴母細胞凝集大部分被抗-LFA-1抗體(圖2(j))和被抗ICAM-1抗體抑制(圖2(1))。(但仍有部分凝集)。
            根據對未加任何抗體的對照實驗(圖2(g))的理解,活化的淋巴細胞如活化的淋巴母細胞顯示沒有經細胞粘附的凝集,除非它們接受大戟二萜醇肉豆蔻乙酸酯(PMA,活化LFA-1)的刺激(圖2(h))或接受“JTT-1抗體”的刺激(圖2(I))。因此抗LFA-1抗體部分抑制“JTT-1抗體”刺激的細胞凝集這一事實說明,活化的淋巴母細胞中的LFA-1受“JTT-1抗體”刺激而活化,它還說明“JTT-1抗體”識別的分子涉及某些信號傳遞。
            雜交瘤克隆“JTT-1”和“JTT-2”已被保藏在布達佩斯條約下的國際保藏機構,國家生命科學及人類技術研究所,工業科學和技術機構(國際工貿部,日本(1-1-3,Higashi,Tsukua-Shi,Ibaraki,日本)),保藏日1996年10月11日,國際保藏號為分別為FERM BP-5707和FERM BP-5708。
            用單抗同種型鑒定試劑盒(Amersham)分析測得每種雜交瘤產生的單抗(JTT-1抗體和JTT-2抗體)均為IgG1。
            實施例3 “JTT-1抗體”和“JTT-2抗體”對各種細胞的反應性為分析不同細胞中“JTT-1抗體”和“JTT-2抗體”識別的分子的表達模式,檢測了這兩種抗體對不同細胞的反應性。“JTT-1抗體”或“JTT-2抗體”所識別的分子分別命名為“JTT-1抗原”或“JTT-2抗原”。
            一只5周齡至10周齡Wistar大鼠(150-250g)用二乙醚麻醉處死。用剖腹術從其胸腔和腹部分別取出胸腺和脾,勻漿以制備細胞懸液。所得脾細胞在含2μg/ml刀豆蛋白A和10%FCS的RPMI 1640培養液中37℃培養3天以制備活化的淋巴母細胞。
            FTL 435細胞,胸腺細胞,脾細胞,活化淋母細胞(每種5×105個細胞)與“JTT-1抗體”或“JTT-2抗體”反應,再與FITC標記的抗小鼠IgG(Cappel)反應。被染色細胞的熒光強度用EPICS-Elite流式細胞儀測量。
            結果示于圖3。FTL 435細胞中,觀察到“JTT-1抗原”和“JTT-2抗原”均強表達。這些抗原在胸腺細胞中有表達,而在脾細胞中只有很少的表達。然而用刀豆蛋白A刺激脾細胞所得活化淋母細胞中,“JTT-1抗原”和“JTT-2抗原”均強表達。此外,每種細胞中,“JTT-1抗原”和“JTT-2抗原”的表達模式一致。這些結果說明“JTT-1抗原”和“JTT-2抗原”是相同的分子。
            實施例4 “JTT-1抗體”對各種淋巴細胞的反應性為分析各種淋巴細胞中“JTT-1抗體”所識別分子(“JTT-1抗原”)的表達模式,分析了“JTT-1抗體”對兩種大鼠(Wrstar大鼠和F344大鼠)的淋巴節,脾T淋母細胞,脾B淋母細胞的反應性。
            二乙醚麻醉處死5周齡至10周齡的Wistar大鼠和F344大鼠(150~250g)。剖腹術取出每只大鼠的淋巴節和脾,勻漿制成細胞懸液。脾細胞懸液在含2μg/ml刀豆蛋白A(ConA)和10%FCS的RPMI 1640培養液中37℃培養3天。1天和3天后獲得每只大鼠的活化T淋母細胞和活化B淋母細胞。此外未加淋巴節細胞和ConA之前的脾T淋母細胞和脾B淋母細胞用作對照。
            每種細胞(各5×105個細胞)與生物素標記的抗大鼠T細胞抗體或生物素標記的抗大鼠B細胞抗體(10μg/ml,Seikagaku公司)反應,再與藻紅蛋白標記的鏈霉抗生物素蛋白反應。再將細胞與10μg/ml FITC標記的“JTT-1抗體”反應。染色細胞的熒光強度用EPICS-Elite流式細胞儀測量。
            結果示于圖4。Wistar大鼠和F344大鼠的活化T淋母細胞和活化B淋母細胞從ConA刺激活化作用的1天后開始均強表達“JTT-1抗原”。此外,每種細胞中“JTT-1抗原”的表達模式幾乎完全一致。
            實施例5 用免疫沉淀法鑒定“JTT-1抗原”和“JTT-2抗原”通過用FTL 435細胞的免疫沉淀法鑒定“JTT-1抗原”和“JTT-2抗原”。
            (1)制備生物素化可溶性細胞表面分子FTL 435細胞用PBS洗,再懸浮于含100μg/ml NHS-生物素和0.1M HEPES的生理鹽水(pH8.0),調至1×107個細胞/ml,室溫40分鐘。用PBS洗細胞三次,加裂解液(1%NP-40,10mM Tris-HCl(pH7.4),0.15M NaCl)調至5×107細胞/ml,4℃反應30分鐘以裂解細胞。離心所得的裂解產物,含生物素化可溶性細胞表面分子的上清貯存于-80℃。
            (2)免疫沉淀和SDS-PAGE分析“JTT-1抗體”用常規方法純化自實施例1制備的雜交瘤克隆“JTT-1”的培養上清,將該抗體的純化樣品與蛋白G-Sepharose珠混合,調節成2mg/ml,4℃反應1小時使抗體結合于珠上。洗珠后,加500μl生物素化FTL 435細胞裂解物至10μl珠中,混合物4℃反應2小時。用裂解液洗珠三次后,將50μl葡聚糖酶緩沖液(含0.15%SDS的磷酸鈉緩沖液(pH7.0))加至珠上,煮沸混合液以洗脫被抗體結合珠捕獲的結合分子。洗脫樣品級分中加入1.25%NP-40和20U/ml N-萄聚糖酶,混合液反應過夜以降解N連接的糖鏈。
            將SDS-PAGE的等體積樣品緩沖液(Enprotech)加入5μl的有或無巰基乙醇的洗脫樣品中,將該混合物煮沸。電泳后將電泳膠轉移至PVDF膜。膜用3%BSA-PBS封閉并與過氧化酶標記的鏈霉菌抗生物素蛋白反應以檢測由“JTT-1抗體”捕獲的生物素化的可溶性細胞表面分子,檢測用ECL系統(Amersham),方法按手冊所述。
            結果示于圖5。FTL 435細胞上被“JTT-1抗體”識別的分子(“JTT-1抗原”)顯示在非還原條件下分子量約47KD(圖5中“(-)”),還原條件下為24KD和28KD(圖5中“(+)”)。作為N連接的糖鏈消化結果(圖5中“+N-gly”),“JTT-1抗原”在非還原條件下集中在約36KD的一條帶上,還原條件下約20KD。這些結果暗示“JTT-1抗原”形成了二聚體,其中相同的核心蛋白有不同糖鏈。用“JTT-2抗體”按上述進行實驗獲得完全相同的結果。將這些結果與實施例3及下文實施例7的結果綜合考慮,“JTT-1抗原”(“JTT-1抗體”所識別的分子)和“JTT-2抗原”(“JTT-2抗體所識別的分子)”被認為完全一樣。
            實施例6 大鼠胸腺細胞對純化的“JTT-1抗原”的粘附實驗及N末端氨基酸分析進行以下實驗是為了分析“JTT-1抗體”識別的分子(“JTT-1抗原”)是否起粘附分子的功能。還進行了N末端氨基酸分析。
            (1)“JTT-1抗體”親和柱的制備用常規方法從實施例1的“JTT-1”雜交瘤上清純化“JTT-1抗體”,取純化樣品(2mg于2ml)與1ml蛋白G-Sepharose樹脂混合,4℃反應1小時。用200mM三乙醇胺(pH8.2)洗樹脂三次。再將樹脂室溫下于含10mM庚二酰亞氨酸二甲基酯(dimethyl pimelimidate)(DMD)的三乙醇胺(pH8.2)中溫育1小時使“JTT-1抗體”與樹脂共價結合。
            (2)“JTT-1抗原”的純化在含10%FCS的RPMI 1640中培養FTL 435細胞。離心得到沉淀團以收獲細胞,沉淀團用PBS洗三次。加入裂解液(1%NP-40,10mM Tris-HCl(pH7.4),0.15M NaCl)調至5×107細胞/ml,4℃反應30分鐘使細胞裂解。裂解產物離心,含可溶性細胞分子的上清貯存于-80℃。
            將裂解物(400ml)裝載“JTT-1抗體”親和柱。柱經50ml裂解液和20mlPBS洗滌后,用0.2M甘氨酸緩沖液(pH2.8)洗脫“JTT-1抗原”。向洗脫的抗原中加1M Tris中和。所得“JTT-1抗原”存于-80℃。
            (3)N末端氨基酸序列的測定純化的“JTT-1抗原”進行SDS-PAGE后,用常規方法測其N端氨基酸序列。結果顯示“JTT-1抗原”含有氨基酸序列Glu-Leu-Asn-Asp-Leu-Ala-Asn-His-Arg.
            (4)粘附實驗二乙醚麻醉殺死5周齡至10周齡Wistar大鼠(150-250g),剖腹術取出胸腺勻漿刷成胸腺細胞懸液。向其中加入10μM 2′,7′-二(羧乙基)羧基熒光素四乙酰氧甲酯(BCECF-AM,分子探針),37℃溫育30分鐘以熒光標記胸腺細胞。細胞用PBS洗之后懸浮于含10%FCS的RPMI 1640中,調至2×107細胞/ml。
            在(2)中所獲得的純化“JTT-1抗原”以濃度10μl/孔包被96孔板過夜。PBS洗板后,板上加200μl/孔3%BSA-PBS封閉2小時。PBS洗板,(1)只有熒光標記的胸腺細胞(2×107細胞/ml,0.1ml),(2)熒光標記的胸腺細胞(濃度同上)及常規方法制得的“JTT-1抗體”Fab段(5μg/ml),或(3)熒光標記的胸腺細胞(濃度同上),“JTT-1抗體”Fab段(濃度同上),“JTT-2抗體”(10μg/ml),被加入每孔,37℃培養1小時。為去除未結合細胞,每孔用含10%FCS的RPMI 1640洗一次。每孔均在光學顯微鏡下觀察。然后,每孔加100μl 0.1%NP-40,吸附于板上的細胞被裂解。用Fluoroscan II Microplate熒光計(Flow Laboratories)在538nm(485nm被激發)測熒光強度計數每孔所吸附熒光標記胸腺細胞的相對細胞數。未包被純化“JTT-1抗原”的板為對照。
            光鏡觀察結果示于圖6。
            只有有“JTT-1抗體”Fab片段時,胸腺細胞才顯著吸附于純化“JTT-1抗原”(圖6(c))。該吸附顯著受“JTT-2抗體”的抑制(圖6(d))。
            圖7顯示熒光強度表示的吸附于包被于每一孔的“JTT-1抗原”胸腺細胞的相對細胞數。
            這些結果揭示“JTT-1抗原”有粘附分子功能。
            實施例7 編碼大鼠“JTT-1抗原”的cDNA的克隆1.制備cDNA文庫1-(1)從ConA刺激的大鼠淋母細胞抽提poly(A)+RNA大鼠脾臟源的ConA刺激的淋巴母細胞(ConA母細胞)(約1×106/ml)4℃離心(2000xg)5分鐘。沉淀的細胞重新懸浮于ISOGEN(Nippon Gene),用氯仿振蕩抽提以收集上清。加異丙醇以獲上清,混合液室溫靜置10分鐘,12,000xg離心4℃10分鐘以沉淀RNA。用乙醇洗過的RNA溶于TE緩沖液。用“mRNA純化試劑盒”(Pharmacia)從所獲總RNA中純化poly(A)+RNA。
            1-(2)cDNA的制備以如上制備的poly(A)+RNA 5μg為模板,用“省時cDNA合成盒”(Pharmacia)合成cDNA。用帶NotI位點的“Oligo dT引物”(Pharmacia)以增加篩選效率。加入EcoRI連接子,用NotI酶解以獲得單向性的cDNA。隨后用Spun柱(Pharmacia)進行大小分級分離。
            1-(3)插入載體所獲有EcoRI末端和Not I末端的cDNA與經EcoRI和NotI消化的pME18S連接(Hara,T.和Miyajima,A.EMBO雜志,11卷,1875-1884頁(1992))。用“DNA連接試劑盒”(Takara Shuzo)連接。用該反應產物轉化大腸桿菌DH5細胞(Toyobo)。轉化體培養至O.D。值(在600nm)達0.6,收獲以回收質粒DNA,用QUIAGEN-Tip(QUIAGEN)純化質粒DNA。
            2.篩選cDNA文庫用淘選法篩選(Seed B.等,美國國家科學院院刊,84卷,3365-3369頁(1987))。
            2-(1)基因轉移進COS細胞所得文庫經電穿孔導入COST細胞(Potter H.等,美國國家科學院院刊,85卷,2288-2292頁)。導入后轉化體培養60小時,去除上清,沉淀用PBS洗三次。用PBS(含0.5mM EDTA)37℃處理沉淀30分鐘后,用移液管移去細胞。只有活細胞再用“Lymphprep”(NYCOMED)收集。
            2-(2)經淘選濃縮可表達基因的細胞所得活細胞懸于PBS(含5%FCS和0.5mM EDTA)。將該細胞懸液轉至包被有“JTT-1抗體”的培養皿,室溫溫育3小時。去除未結合細胞后,用PBS洗培養皿三次,用Hirt的方法從結合于皿上的細胞中收集質粒DNA(Hirt,B.分子生物學雜志,26卷,365-369頁)。用所獲質粒轉化大腸桿菌DH10B(GIBCO BRL)。按上述1-(3)用轉化體擴增并純化質粒。重復(1)和(2)的程序兩次。
            2-(3)分離陽性克隆三次淘汰后,將轉化的大腸桿菌DH10B細胞培養于含青霉素的LB平板上過夜以獲得菌落。培養出20個耐藥菌落,用堿性miniprep法收集質粒DNA(Maniatirs,下等,分子克隆實驗室手冊,冷泉港實驗室,冷泉港,紐約),分析插入的DNA。瓊脂糖凝膠電泳揭示濃縮到有約0.9kb cDNA的克隆(命名為“T132A7”)。
            再次用(1)中的方法在COS 7細胞中瞬時表達“T132A7”。“T132A7”誘導的細胞先與“JTT-1抗體”或“JTT-2抗體”反應,再與FITC標記的抗小鼠IgG(Cappel)反應,染色細胞的熒光強度用EPICS-Elite流式細胞儀(Coulter)測量。“JTT-1抗體”和“JTT-2抗體”強識別“T132A7”的基因產物。結果示于圖8。
            3.測定核苷酸序列和氨基酸序列克隆“T132A7”的核苷酸序列用“自讀測序試劑盒”(Pharmacia)和“A.L.F.DNA測序儀”(Pharmacia)經雙脫氧法測得。此外,該核苷酸序列編碼的“大鼠JTT-1抗原”的推測氨基酸序列用基因分析軟件“GENEWORKS”(IntelliGenetics)分析。核苷酸序列和推測的氨基酸序列示于圖SEQ ID NO4。
            從克隆的基因推出的氨基酸序列(由200個氨基酸殘基組成)包含實施例6-(3)所測N末端氨基酸序列。考慮到克隆“T132A7”導入的細胞與“JTT-1抗體”強烈反應,可得出結論克隆“T132A7”包含編碼“大鼠JTT-1抗原”的cDNA。
            4.計算機分析對“JTT-1抗原”的推測氨基酸序列的初級結構的親水性分析按Kite和Doolittle的方法(Kite,J.和Doolittle,R.F.,分子生物學雜志,157卷,105-132頁(1982))(圖9)。結果揭示“JTT-1抗原”為跨膜蛋白,在N端有信號序列。此外,基序分析結果揭示“JTT-1抗原”在胞外區有兩個Asn連接的糖鏈結合位點,在胞漿區有兩個酪蛋白激酶磷酸化位點和一個蛋白激酶C磷酸化位點。圖9中“CHO”指N連接的糖鏈結合位點;“P”,磷酸化位點;“CKII”,酪蛋白激酶II;“PKC”,蛋白激酶C。
            實施例8 克隆編碼“人JTT-1抗原”的cDNA1.制備探針編碼“大鼠JTT-1抗原”的cDNA(約0.9kb)的產生是通過用限制性酶EcoRI和NotI消化實施例7所得的“T132A7”,再經瓊脂糖凝膠電泳分離。用“QUIAEX凝膠抽提試劑盒”(QUIAGEN)純化所分離的DNA片段,所得DNA片段用“Ready-To-Go DNA標記盒”(Pharmacia)標記32P。這些標記的DNA作為探針用于蝕斑雜交。
            2.制備cDNA文庫2-(1)抽提poly(A)+RNA從ConA刺激的人外周血源的淋巴母細胞(ConA母細胞)抽提poly(A)+RNA,方法同實施例7-1-(1)。
            2-(2)制備cDNA如此制得的poly(A)+RNA取5μl作模板,用“Oligo dT引物”(Pharmacia)和“省時cDNA合成試劑盒”(Pharmacia)合成cDNA。再加入EcoRI連接子,在Spun柱(Pharmacia)上進行大小分級分離。
            2-(3)插入載體并包裝所獲帶有EcoRI末端的cDNA與經EcoRI酶切的載體“λZAPII”(Stratagene)連接。用“DNA連接試劑盒”(Takara Shuzo)連接。體外用“GIGA PACK II GOLD”(Stratagene)進行連接的DNA的包裝后,用所得噬菌體顆粒轉染大腸桿菌XL1Blue MRF′細胞(Stratagene)以產生由含重組噬菌體的蝕斑組成的cDNA文庫。
            3.篩選cDNA文庫用“快速雜交緩沖液”(Amersham),經蝕斑雜交法(Maniatis,T.等,分子克隆實驗室手冊,冷泉港實驗室,冷泉港,紐約)篩選cDNA文庫。首先,所得cDNA文庫(1×104)置于瓊脂平板上,用“Hybond-N尼龍膜”(Amersham)產生復制子。蝕斑雜交在“快速雜交緩沖液”(Amersham)中用復制子和32P標記的探針(實施例8-1所制)完成。首次和第二次篩選獲得8個陽性克隆。分離每個克隆的單蝕斑,用相應手冊方法(stratagene)體內切割,收得7個陽性克隆的質粒DNA。
            4.測定核苷酸序列7個克隆的核苷酸序列用“自讀測序試劑盒”(Pharmacia)和“A.L.F.DNA測序儀(Pharmacia)經雙脫氧法測得。7個克隆含有相同核苷酸序列。發現克隆“pBSH 41”編碼全長“人JTT-1抗原”。對應于“人JTT-1抗原”的開放讀碼框(DRF)的DNA序列示于SEQ ID NO1,推測的全長“人JTT-1抗原”氨基酸序列示于SEQ ID NO2,含5′和3′序列的核苷酸序列示于SEQ ID NO3(ORF相應于核苷酸26-625)。理解到克隆中包含的核苷酸序列編碼全長“人JTT-1抗原”,因為根據該核苷酸序列推測的氨基酸序列(由199個氨基酸殘基組成)顯示顯著同源于“大鼠JTT-1抗原”的氨基酸序列(圖10)。如圖10示,二者同源性為60%或更多。
            轉化有克隆“pBSh 41”的大腸桿菌DH10B(GIBCO BRL)已保藏于布達佩斯條約下的國際保藏權威機構,國家生命科學和人類技術研究所,工業科技機構,國際貿工部,日本(1-1-3,Higashi,Tsukuba-Shi,Ibaraki,日本),自1996年10月25日起(國際保藏號FERM BP-5725)。
            5.“JTT-1抗原”的結構特征和生物學功能在已知人類蛋白中檢索推測的“人JTT-1抗原”氨基酸序列的基序的結果揭示“人JTT-1抗原”結構上類似于“CD28”和“CTLA-4”,屬于免疫球蛋白超家族的人源細胞膜蛋白,詳見上文所述(圖11和12)。如上述,“CD28”和“CTLA-4”均為十分重要的調節免疫系統中T細胞活化和抑制的分子。
            結構相似性如下;1.20或更多個包括半胱氨酸殘基在內的氨基酸序列高度保守。
            2.在CD28和CTLA-4中是作為配基連接區必需的脯氨酸重復序列(Pro-Pro-Pro,PPP)保守。
            3.作為CD28和CTLA-4中信號傳遞區必需的“Tyr-Xaa-Xaa-Met”(YxxM)(Xaa和x表示任意氨基酸)序列在胞質區是保守的。
            根據這樣的事實,即結構相同于在T細胞活化(免疫機制中的主要因素)調節中起重要作用的“CD28”和“CTLA-4”的特異性結構,推斷本發明的“JTT-1抗原”為像那些分子一樣在調節淋巴細胞如T細胞(免疫應答的主要因素)活化的調節中起重要作用。
            實施例9 克隆編碼“小鼠JTT-1抗原”的cDNA1.制備探針通過用限制性酶EcoRI和NotI消化實施例7的克隆“T132A7”,再經瓊脂糖凝膠電泳分離,獲得編碼“大鼠JTT-1抗原”的cDNA(約0.9kb)。用“QUIAEX凝膠抽提試劑盒”(QUIAGEN)純化所分離得的DNA片段,并用“Recdy-To-Go DNA標記試劑盒”(Pharmacia)給DNA片段標記32P。這些標記DNA作為探針用于蝕斑雜交。
            2.制備DNA文庫2-(1)抽提poly(A)+RNA如實施例7-1-(1),從ConA刺激的小鼠脾臟源的淋巴母細胞(約1×106細胞/ml)抽提pdy(A)+RNA。
            2-(2)制備cDNA文庫取上述poly(A)+RNA5mg作模板,用obgodT引物(Pharmacia)和“省時cDNA合成試劑盒”(Pharmacia)合成cDNA。加入EcoRI接頭到該cDNA后,用Spun柱(Pharmacia)進行分級分離。
            2-(3)插入cDNA到載體并包裝。
            所得的帶EcoRI末端的cDNA連接至EcoRI消化的載體1ZAPII(Stratagene),用“DNA連接試劑盒”(Takara Shuzo)連接。用GIGAPACK II GOLD(Stratagene)體外包裝連接的DNA后,以所得的噬菌體顆粒轉染大腸桿菌XL1Blue MRF′細胞(Stratafene)產生由含重組噬菌體的蝕斑組成的cDNA文庫。
            3.篩選cDNA文庫篩選通過用快速雜交緩沖液(Amersham)蝕斑雜交法(Maniatis等,分子克隆實驗室手冊,冷泉港實驗室,冷泉港,紐約)進行。
            將所得cDNA文庫(1×104)置于瓊脂平板上,用Hybond-N尼龍膜(Amersham)復制。蝕斑雜交在“快速雜交緩沖液”(Amerham)中用復制膜和實施例9-1的32P標記探針完成。進行首次和第二次篩選得到5個陽性克隆。分離每一克隆的單蝕斑后,根據指導手則(Stratagene)進行體內切割并收集到5個陽性克隆體的質粒DNA。
            4.測定核苷酸序列5個克隆的每一的核苷酸序列用“自讀測序盒”(Pharmacia)和“A.L.F.DNA測序儀”(Pharmacia)以雙脫氧法測得。其中4個克隆含相同核苷酸序列,編碼全長“小鼠JTT-1抗原”的cDNA序列和推測的氨基酸序列示于SEQ ID NO5。
            從圖10知,“小鼠JTT-1抗原”由200個類似“大鼠JTT-1抗原”的氨基酸殘基組成。小鼠,大鼠和人“JTT-1抗原”的氨基酸序列同源性顯著(60%或更多)。
            5.分析“小鼠JTT-1抗原”基因的基因座“小鼠JTT-1抗原”的編碼基因的基因座用熒光原位雜交法分析所得編碼“小鼠JTT-1抗原”的cDNA用常規方法標記32P以制備雜交探針。用這些探針篩選129個SVJ小鼠基因組文庫(Stratagene)以獲得編碼含“小鼠JTT-1抗原”的外顯子的小鼠基因組DNA克隆。該基因組DNA的結構圖示于圖13。
            上述所得基因組DNA克隆經缺口翻譯標記上洋地黃毒苷duTp以制備探針。該標記的探針結合于切割的小鼠DNA,與小鼠胚成纖維細胞源的正常細胞分裂中期染色體雜交,雜交在含50%甲醛,10%硫酸葡聚糖和2×SSC的溶液中進行。雜交玻片在熒光標記的抗洋地黃毒苷抗體中溫育后,用DAPI染色測得特異性的雜交信號。在第一次檢驗中,根據DNA大小和出現的帶判斷,靠近被認為是染色體1的最大的染色體的部分被特異性標記。根據該信息,上述基因組DNA克隆共雜交于特別針對染色體1的著絲粒區域的探針。結果,該染色體的著絲粒區及附近區被特異性標記。分析10份顯示特異性雜交的染色體1樣本,揭示上述基因組DNA克隆的位置在異染色質和常染色質之間的邊界至染色體1的端粒的這段距離中的33%處,即在小鼠“CD28”和“CTLA-4”基因的基因座的同一帶“IC3”上。分析了80個中期細胞,結果鑒別于79個細胞的該位置上有特異性標記。
            這些結果以及實施例8所得的說明“JTT-1抗原”與“CD28”和“CTLA-4”結構相似的結果提示“JTT-1抗原”象“CD28”和“CTLA-4”一樣,是涉及調節協同刺激信號的傳遞和/或淋巴細胞的活化的重要分子。
            實施例10 克隆編碼“大鼠JTT-1抗原”突變體的cDNA被認為是編碼實施例7中“大鼠JTT-1抗原”的另一種剪接變異體的cDNA如下克隆。
            1.制備探針用限制性酶EcoRI和NotI消化實施例7所得的克隆“T132A7”,并經瓊脂糖凝膠電泳分離得編碼“大鼠JTT-1抗原”的cDNA(約0.9kb)。用“QUIAEX凝膠抽提試劑盒”(QUIAGEN)純化該分離的cDNA,所得DNA片段用“Ready-To-Go DNA標記盒”(Pharmacia)標記32P。這些標記DNA片段作為探針用于蝕斑雜交。
            2.制備cDNA文庫2-(1)抽提poly(A)+RNA如實施例7-1-(1),從大鼠胸腺瘤細胞系FTL 435(約1×106細胞/ml)抽提poly(A)+RNA。
            2-(2)制備cDNA文庫取上述制備的5mg poly(A)+RNA作模板,用Oligo dT引物(Pharmacia)和“省時cDNA合成盒”(Pharmacia)合成cDNA。加上EcoRI接頭該到cDNA后,經Spun柱(Pharmacia)進行大小的分級分離。
            2-(3)cDNA插入到載體并包裝上述所得帶EcoRI末端的cDNA連接于EcoRI消化的載體1ZAPII(Stratagene),用“DNA連接盒”(Takara Shuzo)連接。用GIGA PACKIIGOLD(Stratagene)體外包裝連接的DNA后,以所得的噬菌體顆粒轉染大腸桿菌XL1Blue MRF′細胞(Stratagene),產生由含重組噬菌體的蝕斑組成的cDNA文庫。
            3.篩選cDNA文庫篩選通過用快速雜交緩沖液(Amersham)的蝕斑雜交法進行(Maniatis等,分子克隆,實驗手冊,冷泉港實驗室,冷泉港,紐約)。
            將所得cDNA文庫(1×104)置于瓊脂平板上,用Hybond-N尼龍膜(Amersham)復制。蝕斑雜交在快速雜交緩沖液(Amersham)中用復制膜和實施例10-1的32P標記探針完成。第一次和第二次篩選得2個陽性克隆,分離每一克隆的單蝕斑后,根據指導手冊(Stratagene)體內切割,并收集到兩個陽性克隆的質粒載體。
            4.測定核苷酸序列兩個克隆的核苷酸序列用“自讀測序試劑盒”(Pharmacia)和“A.L.FDNA測序儀”(Pharmacia)以雙脫氧法測得。兩個克隆含相同核苷酸序列,該編碼全長的所得的“大鼠JTT-1抗原”的cDNA的核苷酸序列和推測的氨基酸序列示于SEQ ID NO6。將該推測于所得的cDNA序列的氨基酸序列(SEQID NO6)與實施例7中克隆的編碼“大鼠JTT-1抗原”的cDNA序列的推測的氨基酸序列(SEQ ID NO4)比較(圖14)。如圖14示,此試驗克隆的cDNA編碼的氨基酸序列與實施例7所得的編碼“大鼠JTT-1抗原”的cDNA編碼的完全相同,除了(1)(末端三個連續的氨基酸殘基(Met-Thr-Ser)變成Thr-Ala-Pro,(2)緊隨Thr-Ala-Pro之后,加入了16個連續的氨基酸殘基(Leu-Arg-Ala-Leu-Gly-Arg-Gly-Glu-His-Ser-Ser-Cys-Gln-Asp-Arg-Asn)。這說明此試驗克隆的cDNA克隆編碼實施例7中所得的“大鼠JTT-1抗原”的另一種剪接變異體。
            實施例11 制備重組“人JTT-1抗原”表達細胞實施例8所得的質粒克隆pBsh 41用限制性酶EcoRI消化并切得含編碼全長“人JTT-1抗原”的cDNA的DNA片段。將該DNA片段用DNA連接試劑盒(Takarashuzo)插入用同一限制酶EcoRI處理的質粒pEFneo(美國國家科學院院刊91卷,158-162頁(1994))以制備表達載體。用該載體經電穿孔轉化CHO-K1細胞(ATCCCCL-61)。在含0.8mg/ml遺傳霉素(GIBCO BRL)和10%胎牛血清的RPIM 1640培養基中培養細胞約2周,選得抗遺傳霉素轉化體。用常規方法經Northern印跡確證重組“人JTT-1抗原”的表達。
            實施例12 制備抗“人JTT-1抗原”的單抗將實施例11制備的重組“人JTT-1抗原”的表達載體勻漿并超速離心(100,000xg)。收集含細胞膜級分的沉淀并懸浮于PBS。將該懸浮液配合完全福氏佐劑注射入BALB/C小鼠的腳掌進行第一次免疫(0天)。在間隔至7,14和28天時再次給腳掌注射該細胞膜級分抗原。末次免疫2天后,取出淋巴節細胞,與小鼠骨髓瘤細胞PAI(JCR號B0113;研究揭示,217卷,155頁(1982))以5∶1的比率混合,用聚乙二醇4000(GIBCO)作融合劑融合以制備產單抗雜交瘤。雜交瘤的篩選過程是將之培養于補加了10%胎牛血清和氨基蝶呤的含HAT的ASF 104培養基(Ajinomoto)。用實施例11的重組“人JTT-1抗原”表達轉化體與每份雜交瘤上清反應,用FITC標記的抗小鼠IgG(Cappel)染色細胞,熒光強度用EPICS-ELITE流式細胞儀測量,以確證每份培養上清產生的單抗對“人JTT-1抗原”的反應性。證實得到了10種或更多種產可與“人JTT-1抗原”反應的單抗的雜交瘤。
            這些雜交瘤中的兩種(命名為克隆SA12和SG 430)中的每個均腹膜內注射入ICR nu/nu小鼠(雌性,7-8周齡)(106-107細胞/0.5ml/小鼠)。10-20天后,對小鼠麻醉后行剖腹術,用常規方法從腹水大量制備與“人JTT-1抗原”反應的兩種單抗(SA 12和SG 430)。
            實施例13 抗“人JTT-1抗原”的單抗對人外周血淋巴細胞的效應如實施例8所述,認為“JTT-1抗原”可涉及免疫反應中類似“CD28”和“CTLA-4”對淋巴細胞活化的調節作用。為證實之,以細胞的生長為證據分析抗“人JTT-1抗原”的單抗對人淋巴細胞的效應。
            96孔板每孔加入(1)實施例12制備的SA 12或SG 430抗“人JTT-1抗原”單抗,或(2)單抗SA 12或SG 430(1μg/ml)與抗CD 3單抗OKT-3(1μg/ml.Orthodiagnostic Systems)混合,其中用OKT-3是為了加入淋巴細胞活化中的初級信號。板于37℃培養1小時使每孔均被抗體包被。用RPMI 1640洗板后,每孔加正常人外周血淋巴細胞(1×105細胞/孔)。在含10%FCS的RPMI1640中溫育3天。若有必要,加1ng/ml大戟二萜醇肉豆蔻乙酸酯(PMA)。然后,每孔加[3H]胸嘧啶(3.7μkBg/孔),板于37℃培養6小時。收集細胞,摻入DNA的[3H]胸嘧啶量用液相閃爍儀(Beckman)測量。結果示于圖15。
            在包被有SA 12或SG 430的板的實驗中,淋巴細胞增加數約10倍于對照板。在同時有OKT 3時,不管用SA 12還是SG 430,增加的淋巴細胞數約100倍。
            這些結果說明“JTT-1抗原”作用于淋巴細胞活化的調節。同時用OKT3增加了細胞生長速率的這一事實說明“JTT-1抗原”象“CD28”和“CTLA-4”一樣,涉及協同刺激信號的傳遞。
            實施例14 “JTT-2抗體”對實驗性過敏性腦脊髓炎(EAE)的效應如上文詳述,最近許多嘗試通過調節CD28/CTLA-4和CD80/CD86之間的傳遞來治療各種自身免疫病(類風濕性關節炎,多發性硬化癥,自身免疫性狀腺狀,過敏性接觸性皮炎,慢性炎癥性皮膚病如扁平癬,系統性紅斑狼瘡,胰島素依賴型糖尿病,牛皮癬等)。該效應已在各種自身免疫病的動物模型中得到證實((1)人系統性紅斑狼瘡(SLE)模型,(2)實驗性過敏性腦脊髓炎(EAE),多發性硬化癥(MS)模型,(3)胰島素依賴型糖尿病(IDDM)模型,(4)Goodpasture′s腎炎模型,(5)人類風濕性關節炎)。
            為證實本發明的“JTT-1抗原”是否是涉及活化或抑制淋巴細胞的分子,如“CD28”和“CTLA-4”,制成實驗性過敏性腦脊髓炎(EAE)模型大鼠,多發性硬化癥(MS)模型,并分析標題的單元對模型中“JTT-1抗體”的效應。
            混合Hartley豚鼠腦脊髓勻漿(800mg/ml生理鹽水)與等量完全弗氏佐劑制成免疫原乳劑。對15只Lewis大鼠(雌,6周齡)左右腳掌皮內注射該乳劑進行免疫,每只腳掌0.25ml。調整給藥(免疫)使所制備的勻漿劑量為每只大鼠200mg。如此免疫可誘導實驗性過敏性腦脊髓炎(EAE)。
            如此免疫的大鼠分為三組,每組5只,以下(1)至(3)中任一個在免疫后0,3,6,9,12天立即靜脈注射給每組小鼠。
            (1)實施例2制備的抗“大鼠JTT-1抗原”的單抗“JTT-2抗體”(劑量2mg/ml PBS,5mg/kg)(2)氫化潑尼松,類固醇劑(劑量4mg/ml PBS,10mg/kg)(3)不與“大鼠JTT-1抗原”反應的對照抗體(劑量2mg/ml PBS,5mg/kg)。
            免疫后隨時間推移觀察癥狀。發現EAE發病后,病癥程度根據以下標準打分進行評估。
            (1分)尾緊張消失。
            (2分)后腿拖長,輕型麻痹(3分)后腿拖長,嚴重麻痹(4分)全身麻痹或死亡。
            結果示于圖16。對照抗體給藥組中,EAE的癥狀在免疫后11至15天達到高峰(最高分),然后逐漸恢復。相反,“JTT-2抗體”給藥組在免疫后11天EAE的癥狀被顯著抑制。此抑制效應明顯高于氫化潑尼松給藥組的。
            這些結果說明“JTT-1抗原”是在誘導免疫應答,如淋巴細胞受外來抗原免疫引導而活化,中起作用的分子,“JTT-1抗原”或其配體功能的調節可抑制各種自身免疫病的癥狀。
            實施例15 “JTT-2抗體”對腎小球腎炎的效應為了與實施例14相同的目的,制成腎小球基底膜(GBM)腎炎模型大鼠,分析標題單抗對模型中“JTT-1抗原”的效應。
            經膠原酶消化的牛的腎小球基底膜(Shigei醫研所)用生理鹽水稀釋至200μg/ml,再與完全弗氏佐劑混合制成乳劑免疫原,48只Wister Kyoto大鼠(約200g)麻醉后雙腳后足底皮內注射該乳劑進行免疫,劑量為每腳掌約0.2mg(約15μg)。這樣免疫誘導了腎小球基底膜(GBM)腎炎。
            免疫大鼠分為8組,每組6只,以下(1)至(3)中任一個在免疫(0天)后立即及隨后5周中每周三次給每只大鼠注射。
            (1)實施例2制備的“抗大鼠JTT-1抗原”的單抗“JTT-2抗體”(劑量3mg/kg(2ml PBS/kg),靜脈注射)(2)氫化潑尼松,類固醇劑,作陽性對照(懸浮于0.5%羧甲基纖維素(CMC))(劑量3mg/kg(5ml/kg),口服)。
            (3)0.5%CMC作陰性對照(劑量,5ml/kg,口服)。
            給試驗物質后,每只大鼠強迫性口服無菌水(25ml/kg),并收集尿樣5小時(大鼠關在代謝籠里不吃不喝)。測收集尿樣的體積后,并用ToneinTP-II(Otuka)測尿蛋白濃度,計算每5小時蛋白的尿排泄量(單位mg蛋白/5小時)。上述尿收集和尿蛋白測定在免疫(0天)后的1,2,3,4周以相同方式重復進行。
            結果示于圖17。與對照組相比,免疫后第3周“JTT-2抗體”給藥組的蛋白尿排泄量明顯減少。
            這些結果顯示,“JTT-1抗原”是誘導免疫應答(如淋巴細胞受外來抗原免疫誘導而活化)的分子,調節“JTT-1抗原”或其配體的功能可抑制各種自身免疫病的癥狀。
            實施例16 制備“JTT-1抗原”和IgFc的融合蛋白如實施例8,13-15所述,本發明的“JTT-1抗原”被認為是涉及有關淋巴細胞活化的調節的協同刺激信號的傳遞的分子如“CD28”和“CTLA-4”。此外,如實施例14所述,“CTLA-4”胞外區和人免疫球蛋白IgGI的Fc區融合蛋白對各種自身免疫病有療效。本實施例中,如下制備“JTT-1抗原”胞外區和人IgGFc的融合蛋白,以檢測可溶性JTT-1抗原象CTLA-4-IgFc,是否可用于治療各種自身免疫病。
            (1)制備“大鼠JTT-1抗原”和人IgGI-Fc的融合蛋白(rJTT-1-IgFc)。為了用PCR擴增編碼“大鼠JTT-1抗原”胞外區的cDNA,設計并合成了在其末端有XhoI限制性位點的5′引物(5′-CTGCTCGAGATGAAGCCCTACTTCTCG-3′,SEQ ID NO7),和其末端有BamHI限制性位點的3′引物(5′-ACCCTACGGGTAACGGATCCTTCAGCTGGCAA-3′,SEQ ID NO8)。用實施例7所得的編碼全長“大鼠JTT-1抗原”的cDNA克隆“T132A7”作模板,用上述引物進行PCR制得包含在其兩個末端帶有XhoI和BamHI限制性位點的編碼“大鼠JTT-1抗原”胞外區的cDNA的cDNA。PCR產物用XhoI和BamHI消化,并用瓊脂糖凝膠電泳分離得到一條約450bp的帶,預測是編碼所需胞外區的cDNA片段。將該分離的cDNA片段亞克隆進入用XhoI和BamHI切割的pBluescript IISK(+)(Stratagene)。自動熒光DNA測序儀(AppliedBiosystems)分析序列揭示該cDNA片段包括編碼相應于“大鼠JTT-1抗原”的1-141氨基酸殘基(SEQ ID NO4)的氨基酸序列的區域。
            另一方面,編碼人IgGI Fc的DNA作為融合伙伴經BamHI和XbaI消化B.Seed等(Massachusetts General Ctospital)制備的質粒(見細胞,61卷,1303-1313頁(1990))而切得為約1.3kb的BamHI-XbaI片段。該片段包含編碼人IgG1絞鏈區,Cγ12和Cγ13的外顯子。
            將上述制備的編碼“大鼠JTT-1抗原”胞外區的XhoI-BamHI片段和含編碼人IgGI的Fc(“IgFc”)的外顯子的BamH I-Xba I片段亞克隆進入用Xho I和Xba I切割的pBluescript II SK(+)(Stratagene)。
            然后用XhoI和XbaI消化該質粒,切得一段約1.8kb含該融合DNA(包括“大鼠JTT-1抗原”的胞外區和人IgFc)的DNA片段。用T4 DNA連接酶將該融合DNA片段插入表達載體pME 18S的XhoI和XbaI位點(a醫學免疫學,20卷,1期,27-32頁(1990);實驗醫學增刊,“遺傳工程手冊”,Yodosha,101-107頁(1992)),構建質粒prJTT-1-IgFc。
            在含10%FCS和氨芐青霉素的DMEM培養基中亞鋪滿培養為單層的HEK293細胞(ATCC CRL 1573)用prJTT-1-IgFc經電穿孔轉化獲得轉化體。
            該轉化體在無血清ASF 104培養基上培養72小時以表達rJTT-1-IgFc。
            用蛋白G Sepharose親和層析柱(Pharmacia),如下純化rJTT-1-IgFc。
            將離心上述培養基獲得的上清裝載到蛋白G Sepharose親和柱(事先用結合緩沖液平衡好)。柱經結合緩沖液洗滌后,用洗脫緩沖液開始洗脫。收集洗脫液,在磷酸緩沖液中透析,更換透析外液兩次或更多次,獲得純rJTT-1-IgFc。
            親和層析結果示于圖18,所得的純rJTT-1-IgFc的SDS-PAGE結果示于圖19。
            (2)制備“人JTT-1抗原”和人IgGI-Fc的融合蛋白(hJTT-1-IgFc)如(1)制備hJTT-1-IgFc,除了用于PCR的模板cDNA和引物不同。本試驗中,模板用實施例8制得的含編碼全長“人JTT-1抗原”的cDNA的克隆“pBSh 41”,引物為5′-TAACTGTTTCTCGAGAACATGAAGTCAGGC-3′(SEQ ID NO9)和5′-ATCCTATGGGTAACGGATCCTTCAGCTGGC-3′(SEQ ID NO10)。
            親和層析結果示于圖20,所得的純hJTT-1-IgFc的SDS-PAGE結果示于圖21。
            實施例17 制備整合了編碼“大鼠JTT-1抗原”的cDNA的轉基因小鼠將實施例7所得的編碼“大鼠JTT-1抗原”全長的cDNA用DNA Blunting試劑盒(Takara)插入帶雞β肌動蛋白啟動子的表達載體pCAGGS(基因,108卷193-200頁(1991))獲得質粒prJTTT-1。為制備轉基因小鼠,prJTTT-1經限制酶處理成而線性化。
            將一只白色ICR小鼠(Nihon LSC)與一只雄性輸精管結扎的白色ICR小鼠(Nihon SLC)交配,得到一只雌性帶陰道栓的ICR小鼠作養母小鼠。將雌性BDF-1小鼠(Nihon SLC)(因施用PEAMEX(5單位,Sankyo Zoki)和人絨毛膜促性腺激素(Pregnil)(5單位,organon)而過度排卵)與雄性BDF-1小鼠(Nihon SLC)交配,產生可用于獲得受精卵以導入“大鼠JTT-1抗原”基因的小鼠。支配后,切出雌性BDF-1小鼠的輸卵管,經透明質酸酶處理專門收獲受精卵并貯于培養基中。
            “大鼠JTT-1抗原”基因按常規方法顯微操作導入受精卵。該受精卵用維持針固定。含上述線性化的編碼“大鼠JTT-1抗原”的基因的溶液用Tris-EDTA緩沖液稀釋后,于37℃用DNA導入針顯微注射至受精卵的雄性前核中。
            基因導入后,只選擇保持正常狀態的受精卵且將如此選擇其中導入有“大鼠JTT-1抗原”基因的受精卵插入養母小鼠(白ICR小鼠)卵巢的卵巢傘。
            剪去養母小鼠所生子代小鼠的尾巴,從中收集基因組基因。經PCR證實“大鼠JTT-1抗原”基因確已整合入小鼠基因組。然后,將該建立者小鼠與正常小鼠支配產生高表達“大鼠JTT-1抗原”的雜種轉基因小鼠。使雜合小鼠互相間交配可得到純合轉基因小鼠。
            含“大鼠JTT-1抗原”基因的顯微注射構建體圖示于圖22。
            實施例18 制備其內源“小鼠JTT-1抗原”的編碼基因已被滅活的基因敲出小鼠(1)構建靶向載體經同源重組滅活(敲出)內源“小鼠JTT-1抗原”的編碼基因的靶向載體(Nikkei科學,52-62頁,1994年5月)按如下制備。
            將用PstI和HindIII消化實施例9-5克隆的含編碼“小鼠JTT-1抗原”的基因的小鼠基因組DNA克隆得到的PstI-HindIII片段“同源DNA(1)”亞克隆進pGEM-3(Promega)。然后,pGEM-3用XhoI線性化,經XhoI和SolI處理從pMCI-neo-polyA(Stratagene)中切出的新霉素抗性基因(“neo”)插入“同源DNA”(1)的上游并連接它們。上述小鼠基因組DNA克隆經XhoI和NotI消化切出位于上述“同源DNA(1)”上游的一段約5.5kb的基因(“同源DNA(2)”)。上述pGEM-3(插入了“neo-同源DNA(1))分別經XhoI和HindIII消化切出“neo-同源DNA(1)”。將如此獲得的“同源(DNA(2)”和“neo-同源DNA(1)”亞克隆進入經NotI和122HindIII線性化的pSEAP2-CONT(Clontech)。
            這一插入了“同源(2)-neo-同源(1)”的質粒經NruI消化并在“同源DNA(1)”的下游區線性化后,用PvuII消化pMCI-TK(Stratagen)所得胸腺嘧啶激酶基因(TK)被插入“同源DNA(1)”的下游以獲得靶向載體,該載體中插有“同源DNA(2)-neo-同源(1)”。
            (2)將靶向載體導入ES細胞培養于含15%FCS的DMEM培養基中的小鼠胚干細胞(自然,362卷,255-258頁(1993);自然,326卷,292-295(頁(1987))用胰酶處理成單細胞,洗細胞三次,再加磷酸緩沖液以調至1×107細胞/ml。將上述靶向載體(25μg/ml細胞懸液)加入該細胞懸液,傳送一次350v/cm(25μF)的電脈沖。然后將1×107ES細胞置于10cm盤并在在維持培養基中培養1天,并將培養基換成選擇培養基(含250μg/ml G418和2μm丙氧鳥苷)。用每兩天換一次的培養該細胞培養基,導入靶向載體后第10天,在顯微鏡下用微吸管獲得573個抗新霉素ES細胞克隆。將如此獲得的每個ES細胞克隆單獨培養于包被了飼養苷細胞的24孔板上以獲得768個抗新霉素ES細胞復制子。
            (3)篩選ES敲除細胞用PCR確證每個新霉素抗藥ES細胞中的內源的編碼“小鼠JTT-1抗原”的基因已通過同源重組被破壞(敲出)。
            對于PCR而言,所用引物(1)的設計和合成根據上述新霉素抗藥基因(“neo”)的序列5′-CGTGATATTGCTGAAGAGCTTGGCGGCGAATGGGC-3′,SEQ IDNO11)和引物(2)根據上述“同源DNA(1)”(5′-CATTCAAGTTTCAGGGAACTAGTCCATGCGTTTC-3′,SEQ ID NO12)。
            從每個抗新霉素ES細胞中抽提每個基因組DNA,并用該基因組DNA為模板,用上述引物進行PCR。PCR進行一個反應循環在94℃,3分鐘,30個反應循環在94℃ 1分鐘,60℃ 1分鐘,72℃ 3.5分鐘,1個反應循環在72℃ 10分鐘,所得產物存于4℃。當經此PCR擴增到一段小于約4kb的片段,就可判斷為內源的編碼“小鼠JTT-1抗原”的基因已通過同源重組在ES細胞克隆中被破壞(敲出)。
            從768個受檢ES細胞克隆的三個中獲得預期PCR產物。對此三個克隆進行基因組Southern印跡分析以進一步篩選和確證。抽提這三個克隆的基因組DNA,用BamHI酶切,產物進行瓊脂糖凝膠電泳。所得DNA再轉移至尼龍膜,用含“小鼠JTT-1”的基因組DNA序列制備的探針進行雜交。探針根據同源重組發生位點外圍序列而設計,可從正常型基因組中區分突變型基因組的大小。
            結果,在三個克隆中有一個發現相應于突變型和正常型的兩條帶。該ES細胞克隆被用于如下制備基因敲出小鼠。
            (4)制備基因敲出小鼠上述內源的“小鼠JTT-1抗原”編碼基因已經同源重組而被滅活(敲出)的ES細胞(15個ES細胞/個胚泡)顯微注射入C57BL6小鼠雌雄(NihonCharles River)交配產生的胚泡中。微注射后立即將該胚泡移植進假受孕處理2.5天的養母ICR小鼠(CLEA日本)子宮中(每側子宮約10個胚泡)。結果共獲得38只子代小鼠其中18只是所預期嵌合小鼠。嵌合小鼠的11只是毛色貢獻為80%或更多的嵌合小鼠。
            如此所得的嵌合小鼠再與正常C57BL6小鼠交配,產生的野灰色小鼠,其顏色來自ES細胞的毛色基因。
            實施例19 制備包含抗體的藥用組合物實施例1制備的抗“大鼠JTT-1抗原”的單抗(50-150μg/ml),“JTT-1抗體”和“JTT-1抗體”,實施例12制備的抗“人JTT-1抗原”的單抗,“SA 12”和“SG 430”的每種被加入注射用蒸餾水(10ml)中制備注射液。
            工業應用本發明中哺乳動物如人,小鼠和大鼠源的新型細胞表面分子(稱“JTT-1抗原”)特征如下(1)“JTT-1抗原”與“CD28”(淋巴細胞如T細胞的細胞表面分子,通過細胞粘附傳遞對T細胞活化十分重要的協同刺激信號),和“CTLA-4”(淋巴細胞如T細胞的細胞表面分子,協同該信號調節活化的淋巴細胞如活化T細胞的功能)有以下相似(i)20個或更多個氨基酸殘基(包括半胱胺酸殘基)高度保守;(ii)配體結合區必需的脯氨酸重復序列“Pro-Pro-Pro(PPP)”在胞外區中保守;(iii)信號傳遞區必需的“Tyr-Xaa-Xaa-Met(YxxM)”(Xaa和x代表任意氨基酸)在胞質區內保守;還有(iv)編碼“小鼠JTT-1抗原”的基因在小鼠染色體上基因座是“IC3”,象“CD28”和“CTLA-4”一樣。
            (2)“JTT-1抗原”可介導胸腺細胞,淋巴母細胞(絲裂原如ConA刺激的),淋巴瘤的細胞粘附,就象介導細胞粘附的“CD28”和“CTLA-4”一樣。
            (3)“JTT-1抗原”至少在胸腺細胞,絲裂原如ConA刺激的淋巴母細胞(如活化的T淋母細胞和活化的B淋母細胞,等等),外周血淋巴細胞,及胸腺瘤中強烈表達。
            (4)抗“JTT-1抗原”的抗體顯著增殖人外周血淋巴細胞,并且在有抗CD3單抗存在時更促進這種增殖(該CD3組成T細胞表面TCR/CD3復合物,從抗原呈遞細胞接受T細胞活化必需的初級信號)。
            (5)給予抗“JTT-1抗原”的抗體顯著抑制實驗性過敏性腦脊髓炎(EAE)的癥狀。
            (6)給予抗“JTT-1抗原”的抗體至腎小球基底膜(GBM)腎炎的模型大鼠顯著抑制該病的癥狀。
            本發明的“JTT-1抗原”被認為象“CD28”和“CTLA-4”一樣。是傳遞淋巴細胞如T細胞活化必需的第二信號(協同刺激信號),并與該信號一起調節活化淋巴細胞如活化的T細胞的功能的分子。
            因此,本發明的組成此細胞表面分子的多肽,其多肽片段,其融合多肽,其對應抗體可提供特別有用的藥物,用于治療或預防各種自身免疫病,過敏性疾病,或炎癥性疾病,特別是,類風濕性關節炎,多發性硬化癥,自身免疫性甲狀腺炎,過敏接觸性皮炎,慢性炎癥性皮膚病如扁平苔癬,系統性紅斑狼瘡,胰島素依賴型糖尿病,和牛皮癬,這些由淋巴細胞如T細胞活化及活化淋巴細胞功能調節的異常所引起的疾病。
            相似的,本發明的多肽或多肽片段的編碼基因不僅可用于基因治療上述各種疾病,還可用于制備反義藥物。
            本發明的多種抗體中,人類單克隆抗體及其藥物組合物作為抗體藥物具有顯著增加的藥用價值,因為它們對人無抗原性,而抗原性已成為含非人源抗體如小鼠源抗體的抗體藥物的嚴重問題(副作用)。
            本發明的基因(DNA),多肽,多肽片段和抗體不僅用作藥物,還用作尋找與本發明的細胞表面分子相互作用的分子(配體),澄清該配體的功能,并開發靶向這些配體的藥物的試劑。
            而且,本發明的轉基因小鼠不僅作為研究本發明的細胞表面分子“JTT-1抗原”的生理功能的模型動物十分有用,而且作為篩選工具篩選具有調節(抑制,壓抑,活化,刺激等)“JTT-1抗原”的功能的各種藥物(低分子量化合物,抗體,反義物質,多肽等)十分有用。特別是,這些試驗物質可給藥于轉基因小鼠以測量和分析該小鼠產生的各種生理學,生物學,或藥物學參數,從而評估所給試驗物質的活性。
            此外,本發明的基因敲除小鼠可通過從各種不同角度(生理學,生物學,藥物學,病理學和遺傳角度)分析該小鼠的特點而弄清本發明的細胞表面分子的功能。
            本發明中所涉及的保藏的微生物分別為于1996年10月11日保藏于國家生命科學和人類技術研究所工業科技機構(日本)的保藏號為FERMBP-5707的分類名為PBJT-CL-7的微生物;于1996年10月11日保藏于國家生命科學和人類技術研究所工業科技機構(日本)的保藏號為FERMBP-5708的分類名為PBJT-CL-8的微生物;以及于1996年10月25日保藏于國家生命科學和人類技術研究所工業科技機構(日本)的保藏號為FERMBP-5725的分類名為PBJT-BA-8的微生物。
            序列表(1)申請人姓名日本煙草公司(2)發明題目介導細胞粘附和信號傳遞的細胞表面分子(3)查詢號J1-802PCT(4)申請號(5)申請日(6)優先權申請遞交的國家和此申請的申請號日本,No.Hei 9-062290日本,1998年2月26日提交的專利申請(查詢號,J1-802DP1)(7)優先權日1997年2月27日(8)序列數12SEQ ID NO1序列長度600序列類型核酸拓樸構型線性分子類型cDNA至mRNA原始來源生物Homo sapiens特征名稱/關鍵詞CDS位置1..600鑒定方法E序列描述SEQ ID NO1ATG AAG TCA GGC CTC TGG TAT TTC TTT CTC 30Met Lys Ser Gly Leu Trp Tyr Phe Phe Leu1 5 10TTC TGC TTG CGC ATT AAA GTT TTA ACA GGA 60Phe Cys Leu Arg Ile Lys Val Leu Thr Gly15 20GAA ATC AAT GGT TCT GCC AAT TAT GAG ATG 90Glu Ile Asn Gly Ser Ala Asn Tyr Glu Met25 30
            TTT ATA TTT CAC AAC GGA GGT GTA CAA ATT 120Phe Ile Phe His Asn Gly Gly Val Gln Ile35 40TTA TGC AAA TAT CCT GAC ATT GTC CAG CAA 150Leu Cys Lys Tyr Pro Asp Ile Val Gln Gln45 50TTT AAA ATG CAG TTG CTG AAA GGG GGG CAA 180Phe Lys Met Gln Leu Leu Lys Gly Gly Gln55 60ATA CTC TGC GAT CTC ACT AAG ACA AAA GGA 210Ile Leu Cys Asp Leu Thr Lys Thr Lys Gly65 70AGT GGA AAC ACA GTG TCC ATT AAG AGT CTG 240Ser Gly Asn Thr Val Ser Ile Lys Ser Leu75 80AAA TTC TGC CAT TCT CAG TTA TCC AAC AAC 270Lys Phe Cys His Ser Gln Leu Ser Asn Asn85 90AGT GTC TCT TTT TTT CTA TAC AAC TTG GAC 300Ser Val Ser Phe Phe Leu Tyr Asn Leu Asp95 100CAT TCT CAT GCC AAC TAT TAC TTC TGC AAC 330His Ser His Ala Asn Tyr Tyr Phe Cys Asn105 110CTA TCA ATT TTT GAT CCT CCT CCT TTT AAA 360Leu Ser Ile Phe Asp Pro Pro Pro Phe Lys115 120GTA ACT CTT ACA GGA GGA TAT TTG CAT ATT 390Val Thr Leu Thr Gly Gly Tyr Leu His Ile125 130TAT GAA TCA CAA CTT TGT TGC CAG CTG AAG 420Tyr Glu Ser Gln Leu Cys Cys Gln Leu Lys135 140TTC TGG TTA CCC ATA GGA TGT GCA GCC TTT 450Phe Trp Leu Pro Ile Gly Cys Ala Ala Phe145 150
            GTT GTA GTC TGC ATT TTG GGA TGC ATA CTT480Val Val Val Cys Ile Leu Gly Cys Ile Leu155 160ATT TGT TGG CTT ACA AAA AAG AAG TAT TCA510Ile Cys Trp Leu Thr Lys Lys Lys Tyr Ser165 170TCC AGT GTG CAC GAC CCT AAC GGT GAA TAC540Ser Ser Val His Asp Pro Asn Gly Glu Tyr175 180ATG TTC ATG AGA GCA GTG AAC ACA GCC AAA570Met Phe Met Arg Ala Val Asn Thr Ala Lys185 190AAA TCT AGA CTC ACA GAT GTG ACC CTA TAA600Lys Ser Arg Leu Thr Asp Val Thr Leu195序列2序列長度199序列類型氨基酸拓樸構型線性分子類型蛋白質原始來源生物Homo sapiens序列描述SEQ ID NO21 5 10Phe Cys Leu Arg Ile Lys Val Leu Thr Gly15 20Glu Ile Asn Gly Ser Ala Asn Tyr Glu Met25 30Phe Ile Phe His Asn Gly Gly Val Gln Ile35 40
            Leu Cys Lys Tyr Pro Asp Ile Val Gln Gln45 50Phe Lys Met Gln Leu Leu Lys Gly Gly Gln55 60Ile Leu Cys Asp Leu Thr Lys Thr Lys Gly65 70Ser Gly Asn Thr Val Ser Ile Lys Ser Leu75 80Lys Phe Cys His Ser Gln Leu Ser Asn Asn85 90Ser Val Ser Phe Phe Leu Tyr Asn Leu Asp95 100His Ser His Ala Asn Tyr Tyr Phe Cys Asn105 110Leu Ser Ile Phe Asp Pro Pro Pro Phe Lys115 120Val Thr Leu Thr Gly Gly Tyr Leu His Ile125 130Tyr Glu Ser Gln Leu Cys Cys Gln Leu Lys135 140Phe Trp Leu Pro Ile Gly Cys Ala Ala Phe145 150Val Val Val Cys Ile Leu Gly Cys Ile Leu155 160Ile Cys Trp Leu Thr Lys Lys Lys Tyr Ser165 170Ser Ser Val His Asp Pro Asn Gly Glu Tyr175 180Met Phe Met Arg Ala Val Asn Thr Ala Lys185 190Lys Ser Arg Leu Thr Asp Val Thr Leu195SEQ ID NO3
            序列長度2610序列類型核酸拓樸構型線性分子類型其它核酸(含3′-和5′-非轉譯序列的cDNA)原始來源生物Homo sapiens特征名稱/關鍵詞CDS位置26..625鑒定方法E序列描述SEQ ID NO3GGACTGTTAA CTGTTTCTGG CAAAC25ATG AAG TCA GGC CTC TGG TAT TTC TTT CTC55Met Lys Ser Gly Leu Trp Tyr Phe Phe Leu5 10TTC TGC TTG CGC ATT AAA GTT TTA ACA GGA85Phe Cys Leu Arg Ile Lys Val Leu Thr Gly15 20GAA ATC AAT GGT TCT GCC AAT TAT GAG ATG115Glu Ile Asn Gly Ser Ala Asn Tyr Glu Met25 30TTT ATA TTT CAC GGC GGA GGT GTA CAA ATT145Phe Ile Phe His Asn Gly Gly Val Gln Ile35 40TTA TGC AAA TAT CCT GAC ATT GTC CAG CAA175Leu Cys Lys Tyr Pro Asp Ile Val Gln Gln45 50TTT AAA ATG CAG TTG CTG AAA GGG GGG CAA205Phe Lys Met Gln Leu Leu Lys Gly Gly Gln55 60ATA CTC TGC GAT CTC ACT AAG ACA AAA GGA235Ile Leu Cys Asp Leu Thr Lys Thr Lys Gly65 70AGT GGA AAC ACA GTG TCC ATT AAG AGT CTG265Ser Gly Asn Thr Val Ser Ile Lys Ser Leu75 80
            AAA TTC TGC CAT TCT CAG TTA TCC AAC AAC295Lys Phe Cys His Ser Gln Leu Ser Asn Asn85 90AGT GTC TCT TTT TTT CTA TAC AAC TTG GAC3Z5Ser Val Ser Phe Phe Leu Tyr Asn Leu Asp95 100CAT TCT CAT GCC AAC TAT TAC TTC TGC AAC355His Ser His Ala Asn Tyr Tyr Phe Cys Asn105 110CTA TCA ATT TTT GAT CCT CCT CCT TTT AAA385Leu Ser Ile Phe Asp Pro Pro Pro Phe Lys115 120GTA ACT CTT ACA GGA GGA TAT TTG CAT ATT415Val Thr Leu Thr Gly Gly Tyr Leu His Ile125 130TAT GAA TCA CAA CTT TGT TGC CAG CTG AAG445Tyr Glu Ser Gln Leu Cys Cys Gln Leu Lys135 140TTC TGG TTA CCC ATA GGA TGT GCA GCC TTT475Phe Trp Leu Pro Ile Gly Cys Ala Ala Phe145 150GTT GTA GTC TGC ATT TTG GGA TGC ATA CTT505Val Val Val Cys Ile Leu Gly Cys Ile Leu155 160ATT TGT TGG CTT ACA AAA AAG AAG TAT TCA535Ile Cys Trp Leu Thr Lys Lys Lys Tyr Ser165 170TCC AGT GTG CAC GAC CCT AAC GGT GAA TAC565Ser Ser Val His Asp Pro Asn Gly Glu Tyr175 180ATG TTC ATG AGA GCA GTG AAC ACA GCC AAA595Met Phe Met Arg Ala Val Asn Thr Ala Lys185 190AAA TCT AGA CTC ACA GAT GTG ACC CTA TAA625Lys Ser Arg Leu Thr Asp Val Thr Leu195TATGGAACTC TGGCACCCAG GCATGAAGCA CGTTGGCCAG TTTTCCTCAA 675CTTGAAGTGC AAGATTCTCT TATTTCCGGG ACCACGGAGA GTCTGACTTA 725ACTACATACA TCTTCTGCTG GTGTTTTGTT CAATCTGGAA GAATGACTGT 775
            ATCAGTCAAT GGGGATTTTA ACAGACTGCC TTGGTACTGC CGAGTCCTCT 825CAAAACAAAC ACCCTCTTGC AACCAGCTTT GGAGAAAGCC CAGCTCCTGT 875GTGCTCACTG GGAGTGGAAT CCCTGTCTCC ACATCTGCTC CTAGCAGTGC 925ATCAGCCAGT AAAACAAACA CATTTACAAG AAAAATGTTT TAAAGATGCC 975AGGGGTACTG AATCTGCAAA GCAAATGAGC AGCCAAGGAC CAGCATCTGT 1025CCGCATTTCA CTATCATACT ACCTCTTCTT TCTGTAGGGR TGAGAATTCC 1075TCTTTTAATC AGTCAAGGGA GATGCTTCAA AGCTGGRGCT ATTTTATTTC 1125TGAGATGTTG ATGTGAACTG TACATTAGTA CATACTCAGT ACTCTCCTTC 1175AATTGCTGAA CCCCAGTTGA CCATTTTACC AAGACTTTAG ATGCTTTCTT 1225GTGCCCTCAA TTTTCTTTTT AAAAATACTT CTACATGACT GCTTGACAGC 1275CCAACAGCCA CTCTCAATAG AGAGCTATGT CTTACATTCT TTCCTCTGCT 1325GCTCAATAGT TTTATATATC TATGCATACA TATATACACA CATATGTATA 1375TAAAATTCAT AATGAATATA TTTGCCTATA TTCTCCCTAC AAGAATATTT 1425TTGCTCCAGA AAGACATGTT CTTTTCTCAA ATTCAGTTAA AATGGTTTAC 1475TTTGTTCAAG TTAGTGGTAG GAAACATTGC CCGGAATTGA AAGCAAATTT 1525AWWTTATTAT CCTATTTTCT ACCATTATCT ATGTTTTCAT GGTGCTATTA 1575ATTACAAGTT TAGTTCTTTT TGTAGATCAT ATTAAAATTG CAAACAAAAT 1625CATCTTTAAT GGGCCAGCAT TCTCATGGGG TAGAGCAGAA TATTCATTTA 1675GCCTGAAAGC TGCAGTTACT ATAGGTTGCT GTCAGACTAT ACCCATGGTG 1725CCTCTGGGCT TGACAGGTCA AAATGGTCCC CATCAGCCTG GAGCAGCCCT 1775CCAGACCTGG GTGGAATTCC AGGGTTGAGA GACTCCCCTG AGCCAGAGGC 1825CACTAGGTAT TCTTGCTCCC AGAGGCTGAA GTCACCCTGG GAATCACAGT 1875GGTCTACCTG CATTCATAAT TCCAGGATCT GTGAAGAGCA CATATGTGTC 1925AGGGCACAAT TCCCTCTCAT AAAAACCACA CAGCCTGGAA ATTGGCCCTG 1975GCCCTTCAAG ATAGCCTTCT TTAGAATATG ATTTGGCTAG AAAGATTCTT 2025AAATATGTGG AATATGATTA TTCTTAGCTG GAATATTTTC TCTACTTCCT 2075GTCTGCATGC CCAAGGCTTC TGAAGCAGCC AATGTCGATG CAACAACATT 2125TGTAACTTTA GGTAAACTGG GATTATGTTG TAGTTTAACA TTTTGTAACT 2175GTGTGCTTAT AGTTTACAAG TGAGACCCGA TATGTCATTA TGCATACTTA 2225TATTATCTTA AGCATGTGTA ATGCTGGATG TGTACAGTAC AGTACWTAAC 2275TTGTAATTTG AATCTAGTAT GGTGTTCTGT TTTCAGCTGA CTTGGACAAC 2325CTGACTGGCT TTGCACAGGT GTTCCCTGAG TTGTTTGCAG GTTTCTGTGT 2375GTGGGGTGGG GTATGGGGAG GAGAACCTTC ATGGTGGCCC ACCTGGCCTG 2425GTTGTCCAAG CTGTGCCTCG ACACATCCTC ATCCCAAGCA TGGGACACCT 2475CAAGATGAAT AATAATTCAC AAAATTTCTG TGAAATCAAA TCCAGTTTTA 2525AGAGGAGCCA CTTATCAAAG AGATTTTAAC AGTAGTAAGA AGGCAAAGAA 2575TAAACATTTG ATATTCAGCA ACTGAAAAAA AAAAA 2610
            SEQ ID NO4序列長度2072序列類型核酸拓樸構型線性分子類型其它核酸(含3′-和5′-非轉譯序列的cDNA)原始來源生物特征Rattus名稱/關鍵詞CDS位置35-637鑒定方法E序列描述SEQ ID NO4CTGGAGGGGA AGAGTGCAGC TGTTCCTGGC AGAC 34ATG AAG CCC TAC TTC TCG TGC GTC TTT GTC64Met Lys Pro Tyr Phe Ser Cys Val Phe Val1 5 10TTC TGC TTC CTA ATC AAA CTT TTA ACA GGA94Phe Cys Phe Leu Ile Lys Leu Leu Thr Gly15 20GAA CTC AAT GAC TTG GCC AAT CAC AGG ATG124Glu Leu Asn Asp Leu Ala Asn His Arg Met25 30TTT TCG TTT CAC GAT GGA GGT GTA CAG ATT154Phe Ser Phe His Asp Gly Gly Val Gln Ile35 40TCT TGT AAC TAC CCT GAG ACT GTC CAG CAG184Ser Cys Asn Tyr Pro Glu Thr Val Gln Gln45 50TTA AAA ATG CAG TTG TTC AAA GAC AGA GAA214Leu Lys Met Gln Leu Phe Lys Asp Arg Glu55 60GTC CTC TGC GAC CTC ACC AAG ACC AAG GGA244Val Leu Cys Asp Leu Thr Lys Thr Lys Gly65 70AGC GGA AAC ACC GTG TCC ATC AAG AAT CCG274
            Ser Gly Asn Thr Val Ser Ile Lys Asn Pro75 80ATG TCC TGT CCA TAT CAG CTG TCC AAC AAC304Met Ser Cys Pro Tyr Gln Leu Ser Asn Asn85 90AGT GTC TCT TTT TTC CTA GAC AAC GCA GAC334Ser Val Ser Phe Phe Leu Asp Asn Ala Asp95 100AGC TCC CAG GGC AGC TAC TTT TTA TGC AGC364Ser Ser Gln Gly Ser Tyr Phe Leu Cys Ser105 110CTG TCG ATT TTC GAC CCA CCC CCT TTT CAA394Leu Ser Ile Phe Asp Pro Pro Pro Phe Gln115 120GAA AAG AAC CTT AGT GGA GGA TAT TTG CTT424Glu Lys Asn Leu Ser Gly Gly Tyr Leu Leu125 130ATT TAT GAA TCC CAG CTT TGT TGC CAG CTG454Ile Tyr Glu Ser Gln Leu Cys Cys Gln Leu135 140AAG CTT TGG TTA CCC GTA GGG TGT GCA GCT484Lys Leu Trp Leu Pro Val Gly Cys Ala Ala145 150TTT GTG GCA GCG CTC CTT TTT GGA TGC ATA514Phe Val Ala Ala Leu Leu Phe Gly Cys Ile155 160TTT ATC GTC TGG TTT GCA AAA AAG AAG TAC544Phe Ile Val Trp Phe Ala Lys Lys Lys Tyr165 170AGA TCC AGT GTG CAC GAC CCT AAT AGC GAG574Arg Ser Ser Val His Asp Pro Asn Ser Glu175 180TAC ATG TTC ATG GCG GCA GTC AAC ACA AAC604Tyr Met Phe Met Ala Ala Val Asn Thr Asn185 190AAA AAG TCC AGA CTT GCA GGT ATG ACC TCA634
            Lys Lys Ser Arg Leu Ala Gly Met Thr Ser195 200TAA 637TCTGGAACAC GGGAACCCAT GGAGGAACTA CACTGTCTAG TTCCCCTGAA 687ACTTGAATGG AGAAAGTCTT CTATTTTCTG GACCACAGGG CATCTGACTT 737GATTAACTAC TGATACCTCC TTTTGGKGTT TTGTTTGTCT GGATCAGTGA 787CTATCAGTCA CTCGGAATTT CAGCAGACTG CCCTGGGTTT GCTGAGTCCT 837TTTAAGGCAA ACCCCTTCTT ATAGAAGACC CGGCTCATAT GTATTCAACA 887AACAGACCTC ACTGGGATAC AATCCCCTCT TTCTGCGCCT GCTTCTAGCT 937ATGCACCGGC CAGCAAGACA AACATATCTC CAGCATTTTT ACAAAAATGC 987CAGGGTATGA ATCTGTAAAG TACACAGGCA GCCATTGACC ACCGTCTGTC 1037CTCGTTTTTT CAGATTCTAT TTTTTTCCAT AGAGATCAGC ATTCCTTCTA 1087GAATCAGACA GTAGAGGGAG ATGCTTCACA ACAGAAGCTC TTATGTTTCT 1137GAGATGTTGA TGAATTCATG CTTTAGTACC ACCATGTTCT CTAACAACTT 1187CTATATTCCA GCTGATCACT GCTTCAGGGC TTAGATGCCT GCTTTTGCCT 1237TCAAGTCTCC CCTTAAAGAT ACTCCCACAG GTCTACTTGG TGGCCTGCAG 1287CCACTCTGAA TAGGAAGTTT GGTCTACAAT TTCCCCCCTC TGCTGCTCAA 1337AAAAAAAAAT TAGTAGATAT GATTTTCCCA TATTCTCCCT GCCAAAGTAA 1387TTTTTTCCAG CAAAGACATC TAAATTCAGT TAATATGGTT TACTGTGTTG 1437ATATTAGTGG CAGTAAACAT TTCTCAGAAT CAAAAGCAAA TTAATTTTGC 1487GGTGGTGTTT TTCTACCATT ATCTTGGGTT TCCATGGTGC TATTACTCAC 1537AAGTTTAGCT ATTTTTTTAT GCATCATATT AAAGTTGCAA GCAAGCAGAG 1587CAACCCTCGG TTAATGGGCA AACATTCTCC TGGGGTAGAA TGAATTGTCT 1637ATTTAGCCCG AAAACTGCAG TTTCTGTGGG TGGCTGCCAG ACTACAGCCG 1687TGCTTTGCTC TGGCTTTGAC AGGTTGAAAT AGYCCCCATG ASCSTGGAAC 1737AGWACTCCAG ACTGTGCTGG AGTCCCAAAG TTAGGAGGGC CATGGAGCCT 1787GGGACAGGCT GCTGCTTTGG TCTTTAGGAT CTAGGAARAA TTACAGAGGG 1837GCCAAGACAG AGTTCCCTCC CCTAGAAACT GTGCAGCCTG GAAGTCAGCC 1887CTGGCACTTT AAGATAGCCT TCTTTAGAAC ATGAGTTAGT TGGTAGTATT 1937CTGACGTGTA AACAGCCTAT KGTTGCTCGG AGCTGGACCA TTTTCTCCAC 1987TTCCCTGTCT GCATGCCTAA GACTTCTAGA GCAGCCAACG TATATGCAAC 2037ATTAAAGAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAA 2072
            SEQ ID NO5序列長度603序列類型核酸拓樸構型線性分子類型cDNA至mRNA原始來源生物Mus特征名稱/關鍵詞CDS位置1..603鑒定方法E序列描述SEQ ID NO5ATG AAG CCG TAC TTC TGC CAT GTC TTT GTC30Met Lys Pro Tyr Phe Cys His Val Phe Val1 5 10TTC TGC TTC CTA ATC AGA CTT TTA ACA GGA60Phe Cys Phe Leu Ile Arg Leu Leu Thr Gly15 20GAA ATC AAT GGC TCG GCC GAT CAT AGG ATG90Glu Ile Asn Gly Ser Ala Asp His Arg Met25 30TTT TCA TTT CAC AAT GGA GGT GTA CAG ATT120Phe Ser Phe His Asn Gly Gly Val Gln Ile35 40TCT TGT AAA TAC CCT GAG ACT GTC CAG CAG150Ser Cys Lys Tyr Pro Glu Thr Val Gln Gln45 50TTA AAA ATG CGA TTG TTC AGA GAG AGA GAA180Leu Lys Met Arg Leu Phe Arg Glu Arg Glu55 60GTC CTC TGC GAA CTC ACC AAG ACC AAG GGA210Val Leu Cys Glu Leu Thr Lys Thr Lys Gly65 70AGC GGA AAT GCG GTG TCC ATC AAG AAT CCA240Ser Gly Asn Ala Val Ser Ile Lys Asn Pro75 80
            ATG CTC TGT CTA TAT CAT CTG TCA AAC AAC270Met Leu Cys Leu Tyr His Leu Ser Asn Asn85 90AGC GTC TCT TTT TTC CTA AAC AAC CCA GAC300Ser Val Ser Phe Phe Leu Asn Asn Pro Asp95 100AGC TCC CAG GGA AGC TAT TAC TTC TGC AGC330Ser Ser Gln Gly Ser Tyr Tyr Phe Cys Ser105 110CTG TCC ATT TTT GAC CCA CCT CCT TTT CAA360Leu Ser Ile Phe Asp Pro Pro Pro Phe Gln115 120GAA AGG AAC CTT AGT GGA GGA TAT TTG CAT390Glu Arg Asn Leu Ser Gly Gly Tyr Leu His125 130ATT TAT GAA TCC CAG CTC TGC TGC CAG CTG420Ile Tyr Glu Ser Gln Leu Cys Cys Gln Leu135 140AAG CTC TGG CTA CCC GTA GGG TTG CCA GCT450Lys Leu Trp Leu Pro Val Gly Leu Pro Ala145 150TTC GTT GTG GTA CTC CTT TTT GGA TGC ATA480Phe Val Val Val Leu Leu Phe Gly Cys Ile155 160CTT ATC ATC TGG TTT TCA AAA AAG AAA TAC510Leu Ile Ile Trp Phe Ser Lys Lys Lys Tyr165 170GGA TCC AGT GTG CAT GAC CCT AAT AGT GAA540Gly Ser Ser Val His Asp Pro Asn Ser Glu175 180TAC ATG TTC ATG GCG GCA GTC AAC ACA AAC570Tyr Met Phe Met Ala Ala Val Asn Thr Asn185 190AAA AAG TCT AGA CTT GCA GGT GTG ACC TCA600Lys Lys Ser Arg Leu Ala Gly Val Thr Ser195 200TAA603
            SEQ ID NO6序列長度836序列類型核酸拓樸構型線性分子類型其它核酸(含3′-和5′-非轉譯序列的cDNA)原始來源生物Rattus特征名稱/關鍵詞CDS位置35..685鑒定方法E序列描述SEQ ID NO6CTGGAGGGGA AGAGTGCAGC TGTTCCTGGC AGAC 34ATG AAG CCC TAC TTC TCG TGC GTC TTT GTC64Met Lys Pro Tyr Phe Ser Cys Val Phe Val1 5 10TTC TGC TTC CTA ATC AAA CTT TTA ACA GGA94Phe Cys Phe Leu Ile Lys Leu Leu The Gly15 20GAA CTC AAT GAC TTG GCC AAT CAC AGG ATG124Glu Leu Asn Asp Leu Ala Asn His Arg Met25 30TTT TCG TTT CAC GAT GGA GGT GTA CAG ATT154Phe Ser Phe His Asp Gly Gly Val Gln Ile35 40TCT TGT AAC TAC CCT GAG ACT GTC CAG CAG184Ser Cys Asn Tyr Pro Glu Thr Val Gln Gln45 50TTA AAA ATG CAG TTG TTC AAA GAC AGA GAA214Leu Lys Met Gln Leu Phe Lys Asp Arg Glu55 60GTC CTC TGC GAC CTC ACC AAG ACC AAG GGA244Val Leu Cys Asp Leu Thr Lys Thr Lys Gly65 70
            AGC GGA AAC ACC GTG TCC ATC AAG AAT CCG274Ser Gly Asn Thr Val Ser Ile Lys Asn Pro75 80ATG TCC TGT CCA TAT CAG CTG TCC AAC AAC304Met Ser Cys Pro Tyr Gln Leu Ser Asn Asn85 90AGT GTC TCT TTT TTC CTA GAC AAC GCA GAC334Ser Val Ser Phe Phe Leu Asp Asn Ala Asp95 100AGC TCC CAG GGC AGC TAC TTT TTA TGC AGC364Ser Ser Gln Gly Ser Tyr Phe Leu Cys Ser105 110CTG TCG ATT TTC GAC CCA CCC CCT TTT CAA394Leu Ser Ile Phe Asp Pro Pro Pro Phe Gln115 120GAA AAG AAC CTT AGT GGA GGA TAT TTG CTT424Glu Lys Asn Leu Ser Gly Gly Tyr Leu Leu125 130ATT TAT GAA TCC CAG CTT TGT TGC CAG CTG454Ile Tyr Glu Ser Gln Leu Cys Cys Gln Leu135 140AAG CTT TGG TTA CCC GTA GGG TGT GCA GCT484Lys Leu Trp Leu Pro Val Gly Cys Ala Ala145 150TTT GTG GCA GCG CTC CTT TTT GGA TGC ATA514Phe Val Ala Ala Leu Leu Phe Gly Cys Ile155 160TTT ATC GTC TGG TTT GCA AAA AAG AAG TAC544Phe Ile Val Trp Phe Ala Lys Lys Lys Tyr165 170AGA TCC AGT GTG CAC GAC CCT AAT AGC GAG574Arg Ser Ser Val His Asp Pro Asn Ser Glu175 180TAC ATG TTC ATG GCG GCA GTC AAC ACA AAC604Tyr Met Phe Met Ala Ala Val Asn Thr Asn185 190AAA AAG TCC AGA CTT GCA GGT ACA GCA CCC634Lys Lys Ser Arg Leu Ala Gly Thr Ala Pro
            195 200CTT AGG GCT TTG GGG AGA GGA GAA CAC TCT664Leu Arg Ala Leu Gly Arg Gly Glu His Ser205 210TCA TGT CAA GAC CGG AAT TAA685Ser Cys Gln Asp Arg Asn215TTTGTTTATT TCTATTTTAA AAGAAAGACA TTTTTTCCCC TAAAGATAAT 735TTTTGTATTT TTATGTGAAA GTCTGAATCT TCATTTTAAC TCGACTTATA 785TACTCTGTGG TATATTAAAA ATAATGTTTG TGAAAAAAAA AAAAAAAAAA 835A836SEQ ID NO7序列長度27序列類型核酸拓樸構型線性分子類型其他核酸(合成DNA)特征名稱/關鍵詞引物結合位置1..27鑒定方法E序列描述SEQ ID NO7CTGCTCGAGA TGAAGCCCTA CTTCTCG 27SEQ ID NO8序列長度32序列類型核酸拓樸構型線性分子類型其他核酸(合成DNA)
            特征名稱/關鍵詞引物結合位置1..32鑒定方法E序列描述SEQ ID NO8ACCCTACGGG TAACGGATCC TTCAGCTGGC AA32SEQ ID NO9序列長度30序列類型核酸拓樸構型線性分子類型其他核酸(合成DNA)特征名稱/關鍵詞引物結合位置1..30鑒定方法E序列描述SEQ ID NO9TAACTGTTTC TCGAGAACAT GAAGTCAGGC 30SEQ ID NO10序列長度30序列類型核酸拓樸構型線性分子類型其它核酸(合成DNA)特征名稱/關鍵詞引物結合位置1..30鑒定方法E序列描述SEQ ID NO10ATCCTATGGG TAACGGATCC TTCAGCTGGC 30
            SEQ ID NO11序列長度35序列類型核酸拓樸構型線性分子類型其它核酸(合成DNA)特征名稱/關鍵詞引物結合位置1..35鑒定方法E序列描述SEQ ID NO11CGTGATATTG CTGAAGAGCT TGGCGGCGAA TGGGC 35SEQ ID NO12序列長度34序列類型核酸拓樸構型線性分子類型其它核酸(合成DNA)特征名稱/關鍵詞引物結合位置1..34鑒定方法E序列描述SEQ ID NO12CATTCAAGTT TCAGGGAACT AGTCCATGCG TTTC 3權利要求
            1.由選自下組的氨基酸序列組成的多肽a)由對應于SEQ ID NO4中核苷酸殘基35-634的核苷酸序列編碼的氨基酸序列;b)由對應于SEQ ID NO5中核苷酸殘基1-600的核苷酸序列編碼的氨基酸序列;或c)由對應于SEQ ID NO6中核苷酸殘基35-682的核苷酸序列編碼的氨基酸序列。
            2.一種多肽片段,其由權利要求1的多肽的胞外區組成。
            3.一種編碼權利要求2的多肽片段的DNA。
            4.一種含兩個多肽片段的同二聚體分子,其中所述兩個片段為權利要求2的多肽片段,且這兩個多肽片段通過二硫鍵彼此橋連。
            5.一種融合多肽,包含權利要求1的多肽的胞外區和人免疫球蛋白(Ig)重鏈的恒定區或該恒定區的一部分。
            6.權利要求5的融合多肽,其中該免疫球蛋白為IgG。
            7.權利要求5的融合多肽,其中恒定區的一部分包含IgG的絞鏈區,C2區和C3區。
            8.一種同二聚體分子,包含兩個根據權利要求5至7中任一項所述的融合多肽,其中這兩個多肽經二硫鍵彼此橋聯。
            9.一種非-倉鼠或非小鼠抗體或其部分,可與權利要求1的多肽,或與權利要求2的多肽片段,或與權利要求4的同二聚體分子,或與由所述多肽組成的細胞表面分子反應,其中所述部分選自F(ab′)2,Fab′,Fab,Fv,sFv,dsFv,或dAb。
            10.權利要求9的抗體或其部分,其中該抗體為單克隆抗體。
            11.一種非-倉鼠或非小鼠單克隆抗體或其部分,可與權利要求1的多肽,或與權利要求2的多肽片段,或與權利要求4的同二聚體分子,或與由所述多肽組成的細胞表面分子反應,其中所述部分選自F(ab′)2,Fab′,Fab,Fv,sFv,dsFv,或dAb。
            12.權利要求11的單克隆抗體或其部分,其中該單克隆抗體對絲裂原刺激的淋巴母細胞的作用,實質上等同于國際保藏號FERM BP-5707或FERM BP-5708所限定的雜交瘤產生的單克隆抗體對絲裂原刺激的大鼠淋巴母細胞的作用。
            13.一種抗體生成細胞,它產生權利要求10至12中任一個的單克隆抗體。
            14.一種用于制備基因敲出小鼠的胚胎干細胞,其編碼小鼠多肽的內源基因被滅活,從而不產生該小鼠多肽,其中所述小鼠多肽含有由對應于SEQ ID NO5中核苷酸殘基1-600的核苷酸序列所編碼的氨基酸序列。
            15.一種治療炎癥或預防該病癥狀的藥物組合物,其包含選自如下的任一物質a)一種多肽片段,其由具有氨基酸序列SEQ ID NO2的多肽的胞外區組成;b)一種含兩個上述(a)的多肽片段的同二聚體分子,其中所述兩個多肽片段通過二硫鍵彼此橋連;c)一種融合多肽,包含具有氨基酸序列SEQ ID NO2的多肽的胞外區和人免疫球蛋白(Ig)重鏈的恒定區或該恒定區的一部分;d)一種二聚體分子,包含兩個上述(c)的融合多肽,其中所述兩個多肽通過二硫鍵彼此橋連;e)一種非-倉鼠單克隆抗體或其部分,可與具有氨基酸序列SEQ IDNO2的多肽,或與上述(a)的多肽片段,或與上述(b)的同二聚體分子,或與由所述多肽組成的人源的細胞表面分子反應,其中所述部分選自F(ab′)2,Fab′,Fab,Fv,sFv,dsFv,或dAb,以及可藥用載體。
            全文摘要
            分離和鑒定了一種新的由單克隆抗體識別的細胞表面分子,其特異性表達在胸腺細胞,ConA刺激活化的淋巴細胞和外周血淋巴細胞中,由抗對自身免疫病和過敏性疾病有十分重要作用的淋巴細胞的細胞表面分子的單克隆抗體所發現。更進一步,還分析了該分子的功能。而且發現抗該分子的抗體顯著改善了自身免疫病和過敏性疾病的狀況。
            文檔編號A61K39/395GK1908012SQ20061010066
            公開日2007年2月7日 申請日期1998年2月27日 優先權日1997年2月27日
            發明者玉谷卓也, 手塚克成 申請人:日本煙草產業株式會社
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