沉默巨噬細胞游走抑制因子表達的小干擾rna序列的制作方法

專利名稱：：沉默巨噬細胞游走抑制因子表達的小干擾rna序列的制作方法沉默巨噬細胞游走抑制因子表達的小干擾RNA序列
技術領域：
：本發明涉及一種沉默巨噬細胞游走抑制因子表達的小干擾RNA序列。
背景技術：
：目前惡性腫瘤治療常采用手術、化療、放療、生物反應調節劑治療相結合的綜合治療，但總體療效仍不令人滿意。因此，人們在不斷尋找新的治療方法。隨著新理論的確立和新技術的不斷涌現，為惡性腫瘤新療法的出現打下基礎。巨噬細胞游走抑制因子(Macrophagemigrationinhibitoryfactor,以下簡稱MIF)在包括胃癌、月市癌、月干癌、乳腺癌、結腸癌、前列腺癌、卵巢癌等多種腫瘤中都高表達，MIF能促進惡性腫瘤增殖和血管生成、抑制惡性腫瘤凋亡，因而對惡性腫瘤的發生和發展起重要作用。
發明內容本發明的目的在于提供一種沉默巨噬細胞游走抑制因子(MIF)表達的小干擾RNA序列。本發明由兩對沉默巨噬細胞游走抑制因子(MIF)表達的小干擾RNA序列所組成。兩對沉默MIF表達的小干擾RNA(siRNA)(將它們分別命名為MIFsi-l和MIFsi-2)的序列分別為MIFsi-1:正義5，-ACAUCAACUAUUACGACAUGAACGCGGdTdT-3'，反義5，-CCGCGUUCAUGUCGUAAUAGUUGAUGUdTdT墨3，。MIFsi-2:正義5，-CAUCAUGCCGAUGUUCAUCGUAAACACdTdT陽3，，反義5，-GUGUUUACGAUGAACAUCGGCAUGAUGdTdT-3'。本發明具有沉默MIF表達效率高，對惡性腫瘤有抑制作用，因而對多種惡性腫瘤有潛在治療作用。沉默MIF表達的siRNA對胃癌細胞增殖的抑制作用研究1細胞培養及轉染1.1細胞培養細胞培養箱設置為37°C，5%C02，飽和濕度條件下，人胃癌AGS細胞在含10%胎牛血清的RPMI-1640培養液中傳代養。1.2MIFsiRNA的設計針對人類MIF基因mRNA序列，設計MIFsiRNA和陰性對照(NC)siRNA如下(siRNA寡核苷酸序列均由27堿基構成)。MIFsi-1:正義5，-ACAUCAACUAUUACGACAUGAACGCGGdTdT-3，，反義5，-CCGCGUUCAUGUCGUAAUAGUUGAUGUdTdT-3，。MIFsi-2:正義5，-CAUCAUGCCGAUGUUCAUCGUAAACACdTdT-3，，反義5,-GUGUUUACGAUGAACAUCGGCAUGAUGdTdT-3，。:正義5，-GUUGCGCCCGCGAAUGAUAUUUAUAAUdTdT-3'，反義5，-AUUAUAAAUAUCAUUCGCGGGCGCAACdTdT-3，。1.3細胞轉染1.3.1轉染前一天，將處于對數生長期的1.5X1(^個AGS細胞接種在6孔板上，1.5ml含10%FBS的RPMI-1640培養基培養，24h細胞密度達到30-50%。1.3.2200pmolMIFsi-l用無血清Opti-MEM細胞培養基稀釋成終體積185ul，輕輕混勻。1.3.3在24ul的無血清Opti-MEM細胞培養基中加入脂質體Oligofectamine6ul，輕輕混勻室溫下放置5min。1.3.4將稀釋好的MIFsi-l和Oligofectamine試劑混合，輕輕混勻室溫放置20min，以便形成復合物。1.3.5將215ul的復合物加入800ul無血清Opti-MEM細胞培養基的6孔板中，總體積為1015ul，siRNA的終濃度為100pmol/ml，37°C,5%C02的培養箱內繼續培養4-6h。1.3.64-6h后吸凈6孔板內舊培養液，加入2ml含10%FBS的RPMI-1640新鮮培養基，37°C，5%(302的培養箱，繼續培養，分別于24h、48h、72h提RNA或蛋白。1.3.7MIFsi-2和陰性對照組轉染NC操作同上，終濃度為100pmol/ml;空白對照組Mock組加1ml無血清Opti-MEM細胞培養基(含6ulOligofectamine),4-6h后換成2ml10%FBS的RPMI-1640新鮮培養基。2.細胞的RNA抽提采用Trizol試劑一歩法提取胃癌細胞RNA。3.RT-PCR檢測MIF基因表達實驗步驟3.1逆轉錄反應3丄1取薄壁離心管(RNasefree)加入如下反應體系，7(TC變性5分鐘(min)，立即4。C冷卻。模板RNA(totalRNA)2ugOligo(dT)(0.1ug/ul)0.5ugdNTPmix(各2.5mM)0.5ul加H20(DEPC處理)至總體積5ul3丄2按反應體系下面順序依次加入各試劑，37'C反應5min5Xbuffer2ulRTase0.5ulRibonucleaseinhibitor0.25ul加H20(DEPC處理)至總體積10ul3.1.3在PCR儀上進行逆轉錄反應，42。C溫育60min，70°C15min終止反應，《C冷卻。逆轉錄的cDNA于-2(TC貯存備用。3.2PCR擴增反應3.2.1根據Genbank人類的MIF的cDNA序列(GeneID:4282)，應用引物設計軟件Primers設計引物，并由Invitrogen公司合成。由于OligoDNA呈很輕的膜狀附在管壁上，在使用前先瞬時離心，再輕輕打開管蓋，用去離子水溶解為10pmol/ul后，貯存-2(TC備用。各引物序列如下表2:PCR各引物序列及片段大小基因序列長度(bp)GAPDHsense5'-TTTGGTATCGTGGAAGGAC-3'Antisense5'-AAAGGTGGAGGAGTGGGT-3'410MIFsense5，-CAGTGGTGTCCGAGAAGTCAG-3'440antisense5'-TAGGCGAAGGTGGAGTTGTT陽3'3.2.2取出已擴增的cDNA在冰上溶解，因為內參GAPDH和目的條帶MIF的長度相近，所以要分別進行PCR反應。3.2.3PCR反應體系如下TemplatecDNA1ulPremixTaq酶12.5ulPrimerMIF/GAPDH(sense+antisense)_1ul加H20(DEPC處理)至總體積25ul3.2.4PCR擴增程序94°C5min熱啟動，94°C30sec,57°C35sec,72°C45sec，擴增35個循環。72。C延伸7min，后-2(TC存儲。3.2.5DNA電泳取10ulPCR擴增產物加入含EB的1.5%瓊脂糖凝膠中，以100v/cm電壓電泳約30min，在紫外線照射下可見相應長度的人MIF擴增條帶，用凝膠電泳成像分析系統掃描分析電泳圖像。4.細胞樣品的蛋白提取將細胞培養基棄去后，用PBS液清洗三次后，每1-5乂105個細胞重懸于50ul裂解液中，吹打均勻，冰浴下用細胞刮，刮后將細胞液移至EP管中，冰上靜置30min，于4。C離心，20000gX30min，收集上清，經Bradford法測定蛋白含量，貯存-8(TC備用。5.蛋白質含量測定(Bradford法)75.1蛋白質標準曲線的制備分別取濃度為1ug/ul的小牛血清蛋白(BSA)0,5ul,10ul，15ul,20ul和25ul置試管中，分別加水100ul,95ul,90ul,85ul,80ul,75ul，再于每只試管分別加入Bradford工作液lml，混勻后放置2min，以含BSAOug/ul的溶液為空白對照，lh內測定各管在595nm處吸收值，做標準曲線。5.2樣本蛋白質含量測定取1ul蛋白樣本溶液，加99ulddH20和1mlBradfordl工作液混勻，放置2min，以含BSAOug/ul的溶液為空白對照，測定595nm處吸收值。將吸收值帶入步驟6.1所得到的標準曲線，計算樣本蛋白質含量。5.3蛋白樣品的變性按h1比例混合樣品和5XSDS-PAGE樣品緩沖液，煮沸5min，室溫冷卻5min。6.免疫印跡(Westernblot)檢測MIF的表達6.1SDS-PAGE電泳6丄1分離膠/濃縮膠的灌制按照表1配制丙烯酰胺分離膠溶液，將所配溶液灌入玻璃板后，覆蓋水壓平液面，室溫聚合，棄去覆蓋液。表312%聚丙烯酰胺分離膠配方分離膠(12%)mlddH201.651.25Acr/Bis(30%)210%SDS0.0510%APS0.05TEMED0.003Total5按照表4配制丙烯酰胺濃縮膠液，將所配溶液立即加在聚合好的分離膠上，插入梳子，室溫聚合。表45%聚丙烯酰胺濃縮膠配方濃縮膠(5%)mlddH201.021.5mol/LTris-HCL(pH6.8)0.1875Acr/Bis(30%)0.2510%SDS0.01510%APS0.015TEMED0.003Total1.56.1.2SDS-PAG蛋白質電泳蛋白質樣品上樣:調整樣品蛋白質濃度，使每個泳道上樣的蛋白質為20ug。以蛋白Marker作為分子量對照。電泳在Bio-Rad電泳槽中進行，樣品在濃縮膠中運行電壓為60v，到達分離膠界面時，電壓調升至80v，繼續電泳直至溴酚蘭到分離膠底部。6.2電轉移6.2.1切除棄去濃縮膠。在分離膠右下切角作標記，在轉移緩沖液中平衡15min。剪取與分離膠大小相同并做好標記的PVDF膜和兩塊3mm濾紙。PVDF膜先在甲醇中浸透約15sec，然后轉入ddH20中平衡5min，取出后浸入轉移緩沖液5-10min。濾紙亦在轉移緩沖液中浸5-10min。自下而上依次疊放濾紙、膜、凝膠、另外一張濾紙，疊放時每一歩都要注意趕除氣泡。6.2.2放置在Bio-Rad半干電轉儀陽極板上，蓋上帶陰極板的上蓋。設置恒電壓10v，45min-lh。6.2.3轉移結束后，將PVDF膜浸入甲醇10sec，后轉入ddH20中平衡5min。6.3免疫檢測及EC.L化學發光6.3.1用封閉液(5%脫脂奶粉和0.5%Tween的TBST)室溫下封閉轉移后的PVDF膜lh。6.3.2根據蛋白Marker指示的MIF，a-Tubulin的位置將PVDF膜剪開，然后分別放入用塑料薄膜手套自制的雜交袋中，分別加入用封閉液1:200稀釋的兔抗人MIF多克隆抗體，1:1000稀釋的小鼠抗人a扁Tubulin單克隆抗體，趕除氣泡后封袋口，4。C搖床過夜。6.3.3TBST洗滌PVDF膜3次，每次10min。6.3.4分別加入相應的用封閉液1:5000稀釋的HRP標記的山羊抗鼠和山羊抗兔抗體，室溫反應lh。6.3.5TBST洗滌PVDF膜3次，每次10min。6.3.6ECL化學發光檢測等量混合ECL中的A液和B液(按照0.1ml反應膠/cm2PVDF的量配置)平鋪于封口膜上，然后將PVDF膜的蛋白印跡面向下蓋于其上，輕輕趕走氣泡，室溫孵育反應3-5min。6.3.7瀝干PVDF膜上多余的ECL試劑，將PVDF膜置于兩層保鮮膜間，小心趕去氣泡，膜的蛋白印跡面向上放入暗盒。于暗室內壓X底片曝光，顯影、定影，水洗膠片晾千后保存。7.噻唑藍(MTT)法檢測細胞增殖7.1實驗步驟7丄1接種細胞用含10%胎小牛血清得RPMI-1640培養液配成單個細胞懸液，以每孔3.5乂103個細胞接種到96孔板，每孔體積100ul，每個樣品設三個復孔。7丄2培養細胞及轉染次日細胞處于對數生長期，分別取100nmol/L濃度MIFsi畫l，MIFsi-2，NC轉染胃癌AGS細胞。7丄3呈色轉染培養于24h,48h,72h后，每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS，pH值7.4)20ul。在37。CC02培養箱繼續孵育4h，終止培養，小心吸棄孔內培養上清液，對于懸浮細胞需要離心后再吸棄孔內培養上清液。每孔加100ulDMSO，振蕩5min，使結晶物充分融解。7丄4比色:選擇492nm波長，在酶聯免疫監測儀上測定各孔光吸收值(A)，記錄結果，以時間為橫坐標，吸光值為縱坐標繪制細胞生長曲線。8.細胞克隆形成實驗實驗步驟8.1首先進行6孔板細胞轉染，具體操作同方法1.3，于轉染48h后終止培養，PBS洗兩次，加適量的0.25%胰蛋白酶消化液消化1-2min，注入1.5ml左右的培養液中止消化，吸管吹打至呈單細胞狀態。8.2用細胞計數板計數后，按500個細胞/孔接種于6孔培養板中，補足2ml培養液，置37"C,5y。C02培養箱中培養。8.3培養13天后棄去培養液，用PBS洗滌2次，加甲醇3ml左右固定15min，棄去固定液，姬姆薩染色40min，ddH20緩慢洗去染色液，空氣干燥，將6孔板倒置并輕微劃上網格線，普通光學顯微鏡下計數克隆數。9.統計學處理應用SPSS13.0統計軟件進行分析，計量資料以均數土標準差表示，組間比較采用單因素方差分析(one-wayANOVA)，兩因素間的差異比較及相關性分析采用\2檢驗；尸<0.05為有統計學意義。結果提示AGS細胞轉染MIFsi-l、MIFsi-2和NC比較，24h、48h、72h的MIFmRNA抑制率分別為為MIFsi-l62.83%、67.28%和76.91%，MIFsi陽256.65%、65.78%和73.86%;MIF蛋白抑制率為MIFsi-l71.00%、72.73%和76.51%，MIFsi-262.94%、66.21%和73.55%。用RNA干擾沉默MIF基因后，MTT實驗結果顯示MIFsi-l和MIFsi-2在轉染4天后細胞數分別為原來2.55±0.13倍和2.62±0.15倍，倍增時間分別為2.58±0.14天和2.42±0.17天，而NC組和Mock組細胞數則為原來的4.21±0.32倍和4.33±0.48倍，倍增時間為1.25±0.06天和1.08士0.14天。平板克隆實驗結果顯示經MIFsi-l和MIFsi-2沉默MIF基因IO天后，AGS細胞集落形成數為33.15士4.12個和43.25士2.63個，顯著低于陰性對照組的103.27土2.80個和未轉染組(Mock組)的112.50士2.10個(均尸O.OOl)。同時，MIF沉默后，PCNA表達下調。表明沉默MIF表達對胃癌AGS細胞增殖有抑制作用。沉默MIF表達的siRNA對卵巢癌細胞增殖和侵襲力的抑制作用研究方法瞬時轉染小干擾RNA(smallinterferingRNA，siRNA)革巴向敲除MIF基因，以RT-PCR和Westernblot檢測MIF在mRNA和蛋白水平的表達，通過體外遷移、侵襲實驗和噻唑藍比色法(MTT)分析MIF對HO-8910和OVCAR-3細胞遷移、侵襲和增殖能力的影響。結果顯示與陰性對照組細胞比較，瞬時轉染MIFsiRNA的HO-8910和OVCAR-3細胞中MIF基因表達水平明顯降低。MTT結果顯示，轉染MIFsiRNA的兩株卵巢癌細胞增殖率顯著低于陰性對照組(尸<0.05)。轉染MIFsiRNA的HO-8910細胞穿膜細胞數(MIFsi-l:48.0±7.3,MIFsi-2:38.0±3.6)與陰性對照組(78.0土8.5)比較差異有統計學意義CP0.05)，其穿過鋪了Matrigel膜的細胞數(MIF-sil:35.0±5.0，MIF-si2:30.0±5.6)也顯著少于陰性對照組(尸<0.05)。同樣，轉染了MIFsiRNA的OVCAR-3細胞穿膜細胞數(MIFsi-l:40.0±4.5，MIFsi-2:42.0±3.0)與陰性對照組(65±2.1)比較，差異也有統計學意義(尸<0.05)，其穿過鋪了Matrigel膜的細胞數(MIFsi-l:25.0±3.0,MIFsi-2:27.0±3.4)也明顯低于陰性對照組(尸<0.05)。表明沉默MIF表達對卵巢癌細胞增殖和侵襲力有抑制作用。本發明具有如下優點沉默MIF表達效率高，對惡性腫瘤有抑制作用，因而對多種惡性腫瘤有潛在治療作用。具體實施方式下面結合實例對本發明做詳細描述一、實驗材料1細胞系及培養條件人胃癌AGS細胞株購自中國科學院上海生物細胞研究所，在37°C、5%C02、飽和濕度條件下，培養于含10%胎牛血清的RPMI-1640培養液，0.25%胰蛋白酶(含0.02。/。EDTA)消化傳代。2主要試劑Trizol為美國Invitrogen公司產品。M-MulV逆轉錄酶、01igo(dT)(0.5ug/ul)、10mmol/LdNTP、RNA酶抑制劑(Ribonucleaseinhibitor)、10XPCRbufferwith(NH4)2S04、25mmol/LMgCl2、TaqDNA聚合酶(1U/ul)、6Xloadingbuffer均為MBIFermentas公司產品。瓊脂糖為加拿大BBI公司產品；5XTAE為上海捷瑞生物工程有限公司產品。十二烷基磺酸鈉(SDS)、過硫酸按溶液(APS)、甘氨酸、Trisbase、EDTA、MTT、DMSO、DEPC、TritonX等均為Ameresco公司產品。蛋白質預染Marker為美國MBIFermentas公司產品。考馬斯亮藍、硫脲為美國Sigma公司產品，CHAPS、DTT、Pharmlyte試劑為美國AmershamBioSciences公司產品。兔抗人MIF多克隆抗體為美國SantaCruz公司產品。RT-PCR試劑購自大連TaKaRa公司。RPMI-1640為美國Gibco公司產品；胎牛血清為美國Hyclone公司產品；胰蛋白酶為美國Difco公司產品。丙烯酰胺(Aerylamide，Acr)、N，N，甲叉雙丙烯酰胺(Bis)為美國Sigma公司產品。PVDF膜(聚偏二氟乙烯膜)為美國Piecee公司產品。ECL化學發光試劑(SupersignalwestPicoluminol/Enhancersolution,supersignalwestPicostablePeroxidesolution)為美國Piecee生物技術公司產品。二氨基聯苯胺(DAB)顯色試劑由美國DAKO公司提供。柯達(Kodak)醫用X射線膠片為科達(中國)股份有限公司產品。沉默MIF基因的siRNA和陰性對照siRNA均為大連TaKaRa公司合成，其中陰性對照siRNA為一對無任何靶基因的雙鏈RNA。轉染試劑Oligofectamine為美國Invitrogen公司產品。姬姆薩粉、RNaseA、碘化丙啶(propidineiodide,PI)為Sigma公司產品。鼠抗人PCNA單克隆抗體為武漢博士德公司產品。3%多聚甲醛為廣州威家科技公司。3主要設備超速低溫離心機德國西門子公司。恒溫離心機美國Eppendorf公司。Ultrospec3000紫外分光光度度計英國Pharmacia生物技術公司。多通道PCR儀(MJPT-220):美國Bio-Rad公司。酶標儀Multisranspectrum:美國Thermo公司。凝膠電泳成像分析系統美國Bio-Rad公司，GelDoc-2000型。穩壓穩流電泳儀及水平電泳槽美國Bio-Rad公司。垂直電泳槽、電泳儀、Trans-BlotSD半干電轉儀美國Bio-Rad。大型多功能分光光度計美國MBIFermentas公15司。OLYMPUS光學顯微鏡日本Olympus公司。酸度計意大利Hanna公司，PHZn型。Imagescanner掃描儀美國AmershamBiosciences公司。TS-1型脫色搖床江蘇海門市麒麟醫用儀器廠。C02細胞培養箱美國MBIFermentas公司。超凈工作臺上海匯龍電子儀表有限公司。恒溫水浴箱上海精宏實驗設備有限公司，DK-522型。倒置相差熒光顯微鏡德國Leica公司，ZeissAxiovert200型。各型移液槍、槍頭、細胞培養板、培養瓶德國ComingCostar公司廣口no二、實驗方法i細胞培養及轉染i.i細胞培養細胞培養箱設置為37°C，5%C02，飽和濕度條件下，人胃癌AGS細胞在含10%胎牛血清的RPMI-1640培養液中傳代養。1.2MIFsiRNA的設計針對人類MIF基因mRNA序列，設計MIFsiRNA和陰性對照(NC)siRNA如下(siRNA寡核苷酸序列均由27堿基構成)。MIFsi-1:正義5，匿ACAUCAACUAUUACGACAUGAACGCGGdTdT-3，，反義5，-CCGCGUUCAUGUCGUAAUAGUUGAUGUdTdT墨3，。MIFsi-2:正義5，-CAUCAUGCCGAUGUUCAUCGUAAACACdTdT墨3，，反義5，-GUGUUUACGAUGAACAUCGGCAUGAUGdTdT-3，。:正義5，-GUUGCGCCCGCGAAUGAUAUUUAUAAUdTdT-3'，反義5，-AUUAUAAAUAUCAUUCGCGGGCGCAACdTdT陽3，。1.3細胞轉染1.3.1轉染前一天，將處于對數生長期的1.5Xl(f個AGS細胞接種在6孔板上，1.5ml含10%FBS的RPMI-1640培養基培養，24h細胞密度達到30-50%。1.3.2200pmolMIFsi-l用無血清Opti-MEM細胞培養基稀釋成終體積185ul，輕輕混勻。1.3.3在24ul的無血清Opti-MEM細胞培養基中加入脂質體01igofectamineTM6ul，輕輕混勻室溫下放置5min。1.3.4將稀釋好的MIFsi-l和Oligofectamine試劑混合，輕輕混勻室溫放置20min，以便形成復合物。1.3.5將215ul的復合物加入800ul無血清Opti-MEM細胞培養基的6孔板中，總體積為1015ul,siRNA的終濃度為100pmol/ml，37°C,5%C02的培養箱內繼續培養4-6h。1.3.64-6h后吸凈6孔板內舊培養液，加入2ml含10%FBS的RPMI-1640新鮮培養基，37°C，5%(302的培養箱，繼續培養，分別于24h、48h、72h提RNA或蛋白。1.3.7MIFsi-2和陰性對照組轉染NC操作同上，終濃度為100pmol/ml;空白對照組Mock組加lml無血清Opti-MEM細胞培養基(含6ulOligofectamine),4-6h后換成2ml10%FBS的RPMI-1640新鮮培養基。2.細胞的RNA抽提采用Trizol試劑一步法提取胃癌細胞RNA。3.RT-PCR檢測MIF基因表達實驗步驟3.1逆轉錄反應3丄1取薄壁離心管(RNasefree)加入如下反應體系，7(TC變性5min，立即4。C冷卻。模板RNA(totalRNA)2ugOligo(dT)(0.1ug/ul)0.5ugdNTPmix(各2.5mM)0.5ul加H20(DEPC處理)至總體積5ul3丄2按反應體系下面順序依次加入各試劑，37。C反應5min5Xbuffer2ulRTase0.5ulRibonucleaseinhibitor0.25ul加H20(DEPC處理)至總體積10ul3.1.3在PCR儀上進行逆轉錄反應，42。C溫育60min，70°C15min終止反應，4'C冷卻。逆轉錄的cDNA于-2(TC貯存備用。3.2PCR擴增反應3.2.1根據Genbank人類的MIF的cDNA序列(GeneID:4282)，應用引物設計軟件Primers設計引物，并由Invitrogen公司合成。由于OligoDNA呈很輕的膜狀附在管壁上，在使用前先瞬時離心，再輕輕打開管蓋，用去離子水溶解為10pmol/ul后，貯存-2(TC備用。各引物序列如下表2:PCR各引物序列及片段大小基因序列長度(bp)GAPDHsense5'-TTTGGTATCGTGGAAGGAC-3'410Antisense5'陽AAAGGTGGAGGAGTGGGT-3'MIFsense5，-CAGTGGTGTCCGAGAAGTCAG-3'440antisense5'墨TAGGCGAAGGTGGAGTTGTT-33.2.2取出已擴增的cDNA在冰上溶解，因為內參GAPDH和目的條帶MIF的長度相近，所以要分別進行PCR反應。3.2.3PCR反應體系如下TemplatecDNA1ulPremixTaq酶12.5ulPrimerMIF/GAPDH(sense+antisense)_1ul加H20(DEPC處理)至總體積25ul3.2.4PCR擴增程序94°C5min熱啟動，94。C30sec,57°C35sec,72°C45sec，擴增35個循環。72。C延伸7min，后-2(TC存儲。3.2.5DNA電泳取10ulPCR擴增產物加入含EB的1.5%瓊脂糖凝膠中，以100v/cm電壓電泳約30min，在紫外線照射下可見相應長度的人MIF擴增條帶，用凝膠電泳成像分析系統掃描分析電泳圖像。4.細胞樣品的蛋白提取將細胞培養基棄去后，用PBS液清洗三次后，每1-5乂105個細胞重懸于50ul裂解液中，吹打均勻，冰浴下用細胞刮，刮后將細胞液移至EP管中，冰上靜置30min，于4。C離心，20000gX30min，收集上清，經Bradford法測定蛋白含量，貯存-8(TC備用。5屋白質含量測定(Bradford法)5.1蛋白質標準曲線的制備分別取濃度為1ug/ul的小牛血清蛋白(BSA)0，5ul,10ul，15ul,20ul和25ul置試管中，分別加水100ul,95ul,90ul,85ul,80ul,75ul，再于每只試管分別加入Bradford工作液lml，混勻后放置2min，以含BSAOug/ul的溶液為空白對照，lh內測定各管在595nm處吸收值，做標準曲線。5.2樣本蛋白質含量測定取lul蛋白樣本溶液，加99ulddH20和1mlBradford工作液混勻，放置2min，以含BSAOug/ul的溶液為空白對照，測定595nm處吸收值。將吸收值帶入步驟6.1所得到的標準曲線，計算樣本蛋白質含量。5.3蛋白樣品的變性按1:1比例混合樣品和5XSDS-PAGE樣品緩沖液，煮沸5min，室溫冷卻5min。6.免疫印跡(Westernblot)檢測MIF的表達6.1SDS-PAGE電泳6丄1分離膠/濃縮膠的灌制按照表1配制丙烯酰胺分離膠溶液，將所配溶液灌入玻璃板后，覆蓋水壓平液面，室溫聚合，棄去覆蓋液。表312%聚丙烯酰胺分離膠配方分離膠(12%)mlddH201.651.5mol/LTris-HCL(pH8.8)1.25Acr/Bis(30%)210%SDS0.0510%APS0.05TEMED0.003Total5按照表4配制丙烯酰胺濃縮膠液，將所配溶液立即加在聚合好的分離膠上，插入梳子，室溫聚合。表45%聚丙烯酰胺濃縮膠配方濃縮膠(5%)mlddH201.021.5mol/LTris-HCL(pH6.8)0.1875Acr/Bis(30%)0.2510%SDS0.01510%APS0.015TEMED0.003Total1.56.1.2SDS-PAG蛋白質電泳蛋白質樣品上樣調整樣品蛋白質濃度，使每個泳道上樣的蛋白質為20ug。以蛋白Marker作為分子量對照。電泳在Bio-Rad電泳槽中進行，樣品在濃縮膠中運行電壓為60v，到達分離膠界面時，電壓調升至80v，繼續電泳直至溴酚蘭到分離膠底部。6.2電轉移6.2.1切除棄去濃縮膠。在分離膠右下切角作標記，在轉移緩沖液中平衡15min。剪取與分離膠大小相同并做好標記的PVDF膜和兩塊3mm濾紙。PVDF膜先在甲醇中浸透約15sec，然后轉入ddH;zO中平衡5min，取出后浸入轉移緩沖液5-10min。濾紙亦在轉移緩沖液中浸5-10min。。自下而上依次疊放濾紙、膜、凝膠、另外一張濾紙，疊放時每一步都要注意趕除氣泡。6.2.2放置在BioRad半干電轉儀陽極板上，蓋上帶陰極板的上蓋。設置恒電壓10v，45min陽lh。6.2.3轉移結束后，將PVDF膜浸入甲醇10sec，后轉入ddH20中平衡5min。6.3免疫檢測及ECL化學發光6.3.1用封閉液(5%脫脂奶粉和0.5%Tween的TBST)室溫下封閉轉移后的PVDF膜1h。6.3.2根據蛋白Marker指示的MIF,a-Tubulin的位置將PVDF膜剪開，然后分別放入用塑料薄膜手套自制的雜交袋中，分別加入用封閉液1:200稀釋的兔抗人MIF多克隆抗體，1:1000稀釋的小鼠抗人a-Tubulin單克隆抗體，趕除氣泡后封袋口，4"C搖床過夜。6.3.3TBST洗滌PVDF膜3次，每次10min。6.3.4分別加入相應的用封閉液1:5000稀釋的HRP標記的山羊抗鼠和山羊抗兔抗體，室溫反應lh。6.3.5TBST洗滌PVDF膜3次，每次10min。6.3.6ECL化學發光檢測等量混合ECL中的A液和B液(按照0.1ml反應膠/cm2PVDF的量配置)平鋪于封口膜上，然后將PVDF膜的蛋白印跡面向下蓋于其上，輕輕趕走氣泡，室溫孵育反應3-5min。6.3.7瀝干PVDF膜上多余的ECL試劑，將PVDF膜置于兩層保鮮膜間，小心趕去氣泡，膜的蛋白印跡面向上放入暗盒。于暗室內壓X底片曝光，顯影、定影，水洗膠片晾千后保存。7.噻唑藍(MTT)法檢測細胞增殖7.1實驗步驟7丄1接種細胞用含10%胎小牛血清得RPMI-1640培養液配成單個細胞懸液，以每孔3.5X1()S個細胞接種到96孔板，每孔體積100ul，每個樣品設三個復孔。7丄2培養細胞及轉染次日細胞處于對數生長期，分別取10Onmol/L濃度MIFsi-l，MIFsi-2，NC轉染胃癌AGS細胞。7丄3呈色:轉染培養于24h,48h，72h后，每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS，pH值7.4)20ul。在37。CC02培養箱繼續孵育4h，終止培養，小心吸棄孔內培養上清液，對于懸浮細胞需要離心后再吸棄孔內培養上清液。每孔加100ulDMSO，振蕩5min，使結晶物充分融解。7丄4比色選擇492nm波長，在酶聯免疫監測儀上測定各孔光吸收值(A)，記錄結果，以時間為橫坐標，吸光值為縱坐標繪制細胞生長曲線。8.細胞克隆形成實驗實驗步驟8.1首先進行6孔板細胞轉染，具體操作同方法1.3，于轉染48h后終止培養，PBS洗兩次，加適量的0.25%胰蛋白酶消化液消化1-2min，注入1.5ml左右的培養液中止消化，吸管吹打至呈單細胞狀態。8.2用細胞計數板計數后，按500個細胞/孔接種于6孔培養板中，補足2ml培養液，置37"C，5y。C02培養箱中培養。8.3培養13天后棄去培養液，用PBS洗滌2次，加甲醇3ml左右固定15min，棄去固定液，姬姆薩染色40min，ddH20緩慢洗去染色液，空氣干燥，將6孔板倒置并輕微劃上網格線，普通光學顯微鏡下計數克隆數。9.統計學處理應用SPSS13.0統計軟件進行分析，計量資料以均數士標準差表示，組間比較采用單因素方差分析(one-wayANOVA)，兩因素間的差異比較及相關性分析采用^2檢驗；尸<0.05為有統計學意義。三、結果顯示AGS細胞轉染MIFsi-l、MIFsi-2和NC比較，24h、48h、72h的MIFmRNA抑制率分別為為MIFsi-l62.83%、67.28%和76.91%，MIFsi-256.65%、65.78%和73.86%;MIF蛋白抑制率為MIFsi隱l71.00%、72.73%和76.51%,MIFsi-262.94%、66.21%和73.55%。用RNA干擾沉默MIF基因后，MTT實驗結果顯示MIFsi-l和MIFsi-2在轉染4天后細胞數分別為原來2.55±0.13倍和2.62±0.15倍，倍增時間分別為2.58±0.14天和2.42±0.17天，而NC組和Mock組細胞數則為原來的4.21±0.32倍和4.33±0.48倍，倍增時間為1.25±0.06天和1.08±0.14天。平板克隆實驗結果顯示經MIFsi-1和MIFsi-2沉默MIF基因IO天后，AGS細胞集落形成數為33.15士4.12個和43.25土2.63個，顯著低于陰性對照組的103.27土2.80個和未轉染組(Mock組)的112.50士2.10個(均尸O駕)。同時，MIF沉默后，PCNA表達下調。上述結果表明用siRNA沉默MIF表達對胃癌細胞增殖有抑制作用。<110〉中山大學附屬第一醫院朱，森林<120〉沉默巨噬細胞游走抑制因子表達的小干擾RNA序列<130><160>2<170〉Patentlnversion3.4<210>1〈211〉58<212>RNA<213〉人工序列<400〉1acaucaacuauuacgacaugaacgcggddccgcguucaugucguaauaguugaugudd58<210〉2<211〉58<212>RNA〈213>人工序列〈400〉2caucaugccgauguucaucgimaacacddguguuuacgaugaacaucggcaugaugdd58權利要求1、一種沉默巨噬細胞游走抑制因子表達的小干擾RNA序列，其有兩對，將它們分別命名為巨噬細胞游走抑制因子(Macrophagemigrationinhibitoryfactor，MIF)si-1和巨噬細胞游走抑制因子(Macrophagemigrationinhibitoryfactor，MIF)si-2，其特征在于它們的序列分別為MIFsi-1正義5’-ACAUCAACUAUUACGACAUGAACGCGGdTdT-3’，反義5’-CCGCGUUCAUGUCGUAAUAGUUGAUGUdTdT-3’；MIFsi-2正義5’-CAUCAUGCCGAUGUUCAUCGUAAACACdTdT-3’，反義5’-GUGUUUACGAUGAACAUCGGCAUGAUGdTdT-3’。全文摘要本發明涉及一種沉默巨噬細胞游走抑制因子(Macrophagemigrationinhibitoryfactor，MIF)表達的小干擾RNA，將它們分別命名為MIFsi-1和MIFsi-2。它們的序列分別為MIFsi-1正義5’-ACAUCAACUAUUACGACAUGAACGCGGdTdT-3’，反義5’-CCGCGUUCAUGUCGUAAUAGUUGAUGUdTdT-3’。MIFsi-2正義5’-CAUCAUGCCGAUGUUCAUCGUAAACACdTdT-3’，反義5’-GUGUUUACGAUGAACAUCGGCAUGAUGdTdT-3’。本發明具有沉默巨噬細胞游走抑制因子表達效率高，對多種惡性腫瘤有潛在治療作用。文檔編號C12N15/11GK101591656SQ20091004045公開日2009年12月2日申請日期2009年6月23日優先權日2009年6月23日公開號200910040454.0發明者孔祥復,朱森林,胡品津,丹謝,賀龍君申請人:中山大學附屬第一醫院;朱森林